熊 丹，宋 麗，陶 靜，鄭慧娟，周子皓，潘志明，焦新安

DOI：10.3969/j.issn.1002-2694.2017.09.001

沙門菌tcpS基因的血清型分布及其在特定血清型鑒定中的應(yīng)用

熊 丹，宋 麗，陶 靜，鄭慧娟，周子皓，潘志明，焦新安

目的建立基于tcpS基因的PCR鑒定方法，同時(shí)篩選腸炎沙門菌、雞白痢/傷寒沙門菌和都柏林沙門菌，為流行病學(xué)調(diào)查提供方便快速的實(shí)驗(yàn)室技術(shù)支持，并為PCR鑒定沙門菌方法的發(fā)展提供新的基因候選。方法利用生物信息學(xué)的方法分析沙門菌tcpS基因的血清型分布特點(diǎn)，選擇27種不同血清型沙門菌以及10株非沙門菌菌株，對(duì)所建立PCR體系的特異性和靈敏性進(jìn)行檢測，并將該方法應(yīng)用于江蘇省分離的48株豬場分離株、22株雞場分離株和11株牛場分離株的檢測。結(jié)果生物信息學(xué)分析表明tcpS基因僅存在于腸炎沙門菌、雞白痢/傷寒沙門菌和都柏林沙門菌中，該P(yáng)CR方法具有高度特異性和靈敏性，可準(zhǔn)確快速地從臨床樣本中篩選這3種血清型沙門菌，且對(duì)實(shí)際樣本檢測符合率達(dá)100%。結(jié)論基于tcpS的PCR檢測方法可準(zhǔn)確篩選腸炎沙門菌、雞白痢/傷寒沙門菌和都柏林沙門菌，能作為傳統(tǒng)血清學(xué)分型的輔助方法，為沙門菌PCR鑒定方法的發(fā)展提供了優(yōu)良的基因候選。

沙門菌；tcpS基因；PCR；血清型

沙門菌病是公共衛(wèi)生學(xué)上有重要意義的人獸共患病之一，其病原沙門菌屬于腸桿菌科，蛋、家畜和肉制品是主要傳播媒介，它不但可引起多種畜禽疾病，造成全身性敗血癥和腸炎，還可以作為食源性疾病的病原體，引起人類胃腸炎和食物中毒[1-2]。在我國細(xì)菌性食物中毒中，約有70%～80%是由沙門菌引起的[3]。

根據(jù)Kauffman-White血清型分型方法，依據(jù)沙門菌菌體抗原及鞭毛抗原的不同，沙門菌目前的血清型有2 600種以上[4]，中國已報(bào)道了292種不同的血清型，分屬于35個(gè)O群[5]。大多數(shù)的動(dòng)物感染是由幾種主要的血清型沙門菌引起的，其中含有腸炎沙門菌、雞白痢/傷寒沙門菌和都柏林沙門菌[6-8]。腸炎沙門菌是人感染食源性病原菌的主要致病菌，并且是農(nóng)產(chǎn)品和感染動(dòng)物中最主要的沙門菌血清型[9]。雞白痢/傷寒沙門菌能特異性地感染家禽，可分別引起白痢和禽傷寒，且雞傷寒垂直傳播所帶來的危害已引起廣泛的重視[10]。都柏林沙門菌可增加奶牛的流產(chǎn)、發(fā)病率和致死率，并且降低牛奶的產(chǎn)量，引起奶牛業(yè)的重大經(jīng)濟(jì)損失，已引起世界范圍內(nèi)的高度關(guān)注[11-12]。因此，快速檢測這三種重要的血清型沙門菌顯得尤為重要。

傳統(tǒng)的檢測方法即非選擇性和選擇性增菌、生化特性及血清學(xué)鑒定，傳統(tǒng)方法費(fèi)力耗時(shí)，需4～7 d才能完成，其它如抗體檢測法，雖然快速，但其高假陽性使之不適于常規(guī)檢測。此外，低水平的病原菌污染，食品加工后導(dǎo)致沙門菌的“致傷”及食品其它成分的干擾等因素，使得沙門菌的檢測受到一些限制。因此，急需一些快速、特異、靈敏的檢測方法，以及時(shí)發(fā)現(xiàn)致病菌，控制污染及其可能對(duì)人體健康產(chǎn)生的危害[13]。分子生物學(xué)技術(shù)的發(fā)展使得許多食品微生物學(xué)者尋求方便的方法如PCR技術(shù)來檢測病原菌，以期增加敏感性同時(shí)減少檢測時(shí)間。

聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(Polymerase chain reaction, PCR)是一種體外核酸擴(kuò)增技術(shù)，具有敏感性強(qiáng)、特異性高、快速、簡便等優(yōu)點(diǎn)，在醫(yī)學(xué)、生物學(xué)等領(lǐng)域中得到了廣泛應(yīng)用。由于該方法快速、特異、敏感等優(yōu)點(diǎn)，使之在沙門菌的檢測中已得到廣泛的應(yīng)用[14]。PCR方法尤其適用于大樣本沙門菌的血清型快速判斷，可大大縮短檢測時(shí)間。如果樣本不屬于特定血清型沙門菌，也可根據(jù)PCR結(jié)果，選擇性的使用多價(jià)抗血清進(jìn)行進(jìn)一步判斷，可節(jié)約血清分型的時(shí)間以及血清的使用[15]。

沙門菌tcpS基因全長882 bp，目前關(guān)于其功能還未有研究報(bào)道，NCBI數(shù)據(jù)庫注釋其為一種假定蛋白，結(jié)構(gòu)預(yù)測表明其4-36位氨基酸能夠形成coiled-coil結(jié)構(gòu)域。本研究通過生物信息學(xué)方法首次發(fā)現(xiàn)tcpS基因僅存在于腸炎、雞白痢/傷寒和都柏林這3種血清型沙門菌中，以特異性引物通過PCR技術(shù)驗(yàn)證了tcpS基因在不同血清型沙門菌及其它細(xì)菌中的分布。該P(yáng)CR體系能快速準(zhǔn)確鑒定腸炎、雞白痢/傷寒和都柏林血清型沙門菌，可作為沙門菌傳統(tǒng)血清學(xué)分型的輔助方法，并為這3種特定血清型沙門菌的監(jiān)測與實(shí)驗(yàn)室診斷提供了一種簡單快速、重復(fù)性好的新方法。

1 材料和方法

1.1 材料

1.1.1 菌株 評(píng)價(jià)PCR方法特異性和靈敏性的沙門菌和非沙門菌菌株信息見表1。

1.1.2 主要試劑 沙門菌診斷血清購自寧波天潤生物藥業(yè)有限公司，Taq DNA 聚合酶、dNTPs、DL2000 DNA Marker購自大連寶生物工程有限公司，瓊脂糖購自西班牙Biowest公司。

1.1.3 主要儀器 PCR擴(kuò)增儀、電泳儀TY2795、凝膠成像系統(tǒng)GelDoc XR+購自Bio-RAD公司，離心機(jī)、biophotometer分光光度計(jì)購自德國Eppendorf公司。

1.2 方法

1.2.1 生物信息學(xué)分析tcpS基因的血清型分布 在NCBI中使用Blastn在線比對(duì)軟件(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)在全基因組數(shù)據(jù)庫中搜索tcpS基因序列(GenBank accession number KM408432)，初步分析tcpS基因的血清型分布特點(diǎn)。

表1 評(píng)價(jià)建立的PCR方法特異性和靈敏性的沙門菌和非沙門菌菌株
Tab. 1 Salmonella and non-Salmonella strains used to evaluate the specificity and sensitivity of the developed PCR method

StrainSerovar/speciesSourcePCRresult(882bp)SalmonellaC50041EnteritidisLaboratorystock+C50336EnteritidisLaboratorystock+S06004PullorumLaboratorystock+6508PullorumIsolatefromchicken+SG9GallinarumGiftfromBarrow[16]+SL5928DublinLaboratorystock+T3UgandaLaboratorystock-T9MeleagridisLaboratorystock-T8AnatisLaboratorystock-G2LondonLaboratorystock-ZXRissenLaboratorystock-Y7DerbyLaboratorystock-Y8TyphimuriumLaboratorystock-C500CholeraesuisLaboratorystock-ZH65IndianaLaboratorystock-ZH5SinstorfLaboratorystock-ZH10NewlandsIsolatefromcattle-ZH24MuensterLaboratorystock-ZH82YorubaIsolatefrompig-G449DumfriesLaboratorystock-G241KentuckyLaboratorystock-G382AgonaLaboratorystock-ZH35ThompsonLaboratorystock-P192SenftenbergLaboratorystock-G439BlockleyLaboratorystock-G86InchparkLaboratorystock-P122VirchowLaboratorystock-P74FarstaLaboratorystock-G85DabouLaboratorystock-Non-SalmonellaH37RvMycobacteriumtuberculosisATCC27294-11168CampylobacterjejuniATCC700819-110CampylobacterjejuniIsolatefromchicken-S19BrucellaabortusLaboratorystock-EGDeListeriamonocytogenesATCCBAA-679-JS15ListeriamonocytogenesIsolatefromsheep-1314EscherichiacoliIsolatefromchicken-1352EscherichiacoliIsolatefromchicken-25922EscherichiacoliATCC25922-J53EscherichiacoliLaboratorystock-

1.2.2 引物設(shè)計(jì)與合成 以tcpS基因?yàn)槟０澹O(shè)計(jì)并分析引物，上游引物tcpS-F：ATGTCTATAAGCACCACAATG，下游引物tcpS-R：TCATTTCAATAATGATTCAAGC，引物由南京金斯瑞生物科技有限公司合成。

1.2.3 模板制備 取過夜培養(yǎng)的菌液，PBS洗3遍，采用煮沸法進(jìn)行細(xì)菌DNA的提取，100°C，10 min，12 000 r/min離心5 min，取上清液作為DNA模板，4 ℃?zhèn)溆谩?/p>

1.2.4 PCR反應(yīng) PCR反應(yīng)體系為(25 μL)：ddH2O 16.25 μL，dNTP 2 μL，10×PCR buffer 2.5 μL，tcpS-F 1 μL，tcpS-R 1 μL，模板2 μL，rTaq酶0.25 μL。PCR程序?yàn)?4 ℃ 5 min；94 ℃ 45 s，59 ℃ 45 s，72 ℃ 1 min，30個(gè)循環(huán)；72 ℃ 10 min。PCR產(chǎn)物進(jìn)行1%瓊脂糖凝膠電泳。

1.2.5 特異性評(píng)價(jià) 用已建立的PCR方法分別對(duì)27種不同血清型的沙門菌和10株非沙門菌菌株進(jìn)行檢測(表1)，驗(yàn)證該方法的特異性。

1.2.6 靈敏性評(píng)價(jià) 將沙門菌C50041菌株的基因組和菌液分別倍比稀釋，用已建立的PCR方法分別對(duì)不同稀釋度進(jìn)行檢測，以分析該方法的檢測靈敏性。

1.2.7 臨床樣本檢測 將所建立的PCR 方法應(yīng)用于本實(shí)驗(yàn)室在江蘇省某豬場、雞場和牛場分離的待檢沙門菌，與傳統(tǒng)血清型鑒定方法進(jìn)行比較。

2 結(jié) 果

2.1 生物信息學(xué)鑒定tcpS基因的分布 Blastn結(jié)果表明tcpS基因僅存在于腸炎沙門菌、雞白痢/傷寒沙門菌和都柏林沙門菌中，且核苷酸序列相似性為100%，而沙門菌其它血清型和其它物種均沒有這個(gè)基因。

2.2 PCR檢測方法的特異性分析 PCR電泳結(jié)果表明僅在以腸炎、雞白痢/傷寒和都柏林沙門菌基因組為模板的泳道中有目的條帶(圖1)，膠回收后測序結(jié)果表明所有的tcpS基因的核苷酸序列相似性均為100%。

2.3 PCR檢測方法的靈敏性分析 以不同濃度的腸炎沙門菌C50041基因組和菌液為模板分別進(jìn)行PCR檢測，電泳結(jié)果顯示該P(yáng)CR方法可最低檢測到4.35 pg/μL的基因組DNA和10 CFU的沙門菌(圖2)。

圖1 PCR方法檢測腸炎、雞白痢/傷寒和都柏林沙門菌的特異性分析Fig.1 Specificity of the PCR method for detection of Salmonella serovars Enteritidis, Pullorum/Gallinarum, and Dublin

圖2 PCR方法檢測腸炎沙門菌C50041基因組DNA(A)和細(xì)菌數(shù)(B)的靈敏性分析Fig. 2 Sensitivity of the PCR method for detection of genomic DNA (A) and cells (B) from S. Enteritidis (strain C50041)

2.4 PCR檢測臨床樣本 用建立的PCR方法對(duì)江蘇省某豬場(48株)、雞場(22株)和牛場(11株)分離的沙門菌進(jìn)行檢測，以驗(yàn)證所建立方法的準(zhǔn)確性。PCR結(jié)果顯示，48株豬場分離的沙門菌、22株雞場分離的沙門菌和11株牛場分離的沙門菌完全符合其相應(yīng)的傳統(tǒng)血清學(xué)分型結(jié)果(表2)。

3 討 論

血清型鑒定作為沙門菌分型的分類方法已有80多年歷史，至今仍然是國際微生物檢測機(jī)構(gòu)認(rèn)定的進(jìn)行微生物學(xué)初篩的標(biāo)準(zhǔn)方法，對(duì)病原微生物研究的首要步驟也是血清學(xué)鑒定[17]。

表2 臨床樣本中傳統(tǒng)血清學(xué)分型方法與建立的基于tcpS的PCR方法的比較
Tab. 2 Comparison between traditional serotyping method and the developed tcpS-based PCR method on clinical Salmonella isolates

SourceSalmonellaserovarsTraditionalserotypingO:H1:H2IsolatenumberNo.ofstrainspositivefortcpSPigfarmEnteritidis9,12:g,m1212Derby4,12:f,g30Typhimurium4,12:i:2120Rissen6,7:f,g70Indiana4,12:z:1,730Chester4,12:e,h:x40London3:l,v:1,670ChickenfarmPullorum9,12:-:-1010Enteritidis9,12:g,m22Indiana4,12:z:770Thompson6,7:k:1,530CattlefarmDublin9,12:g,p11Newlands3:e,h:e,n,x80Muenster3:e,h:1,520

沙門菌可分為2 000多種血清型，鑒定時(shí)需質(zhì)量保證且種類齊全的上百種血清，同時(shí)，也要求具備一定的經(jīng)驗(yàn)及準(zhǔn)確判斷能力的實(shí)驗(yàn)者。傳統(tǒng)血清型鑒定需購買特定的沙門菌血清型鑒定試劑盒，價(jià)格昂貴，步驟繁瑣，有效期短，包含的血清型也不齊全，且貨源緊缺，尤其在大樣本中分離特定的血清型沙門菌(如腸炎沙門菌、雞白痢/傷寒沙門菌或者都柏林沙門菌)時(shí)，需耗費(fèi)數(shù)天時(shí)間，且工作量龐大，其結(jié)果是由肉眼進(jìn)行判斷，因而可能存在人為誤差。目前，一些基于DNA和抗原的檢測方法已經(jīng)應(yīng)用在沙門菌的檢測上，如PCR和ELISA[18-19]。本文建立的基于tcpS基因的PCR檢測方法操作簡單，成本非常低，在3 h內(nèi)即可完成對(duì)這3種血清型沙門菌的篩選，且準(zhǔn)確率達(dá)到100%。

本研究所建立的PCR方法作為傳統(tǒng)血清學(xué)方法的一種補(bǔ)充，可用于大樣本中腸炎沙門菌、雞白痢/傷寒沙門菌和都柏林沙門菌的快速判斷，可大大縮短檢測時(shí)間。如果樣本不屬于這3種血清型，也可根據(jù)PCR結(jié)果，選擇性的使用多價(jià)抗血清進(jìn)行進(jìn)一步判斷，可節(jié)約血清分型的時(shí)間以及血清的使用。本研究為PCR鑒定沙門菌方法的發(fā)展提供新的基因候選，然而，更多的血清型特異性基因仍需探索，這些基因和tcpS的聯(lián)合使用將有助于沙門菌血清型鑒定方法的進(jìn)一步發(fā)展。

本研究首次發(fā)現(xiàn)tcpS基因僅存在于腸炎、雞白痢/傷寒和都柏林這3種血清型沙門菌中，以特異性引物通過PCR技術(shù)驗(yàn)證了tcpS基因在不同沙門菌血清型及其它細(xì)菌中的分布?；趖cpS的PCR方法能快速高通量篩選腸炎、雞白痢/傷寒和都柏林血清型沙門菌，可作為沙門菌傳統(tǒng)血清學(xué)分型的輔助方法，并為這3種特定血清型沙門菌的監(jiān)測與實(shí)驗(yàn)室診斷提供了一種簡單快速、重復(fù)性好的新方法。

[1] Nesbitt A, Ravel A, Murray R, et al. Integrated surveillance and potential sources ofSalmonellaenteritidisin human cases in Canada from 2003 to 2009[J]. Epidemiol Infect, 2012, 140(10): 1757-1772. DOI:10.1017/S0950268811002548

[2] Severi E, Booth L, Johnson S, et al. Large outbreak ofSalmonellaenteritidisPT8 in Portsmouth, UK, associated with a restaurant[J]. Epidemiol Infect, 2012, 140(10): 1748-1756. DOI: 10.1017/S0950268811002615

[3] Zhan L, Ye JL, Mei LL, et al. Development of a multiplex PCR assay for the identification ofSalmonellaentericaserovarenteritidis[J]. Chin J Zoonoses, 2012, 28(3): 244-247. (in Chinese)

占利, 葉菊蓮, 梅玲玲, 等. 腸炎血清型沙門菌多重PCR檢測方法的建立及應(yīng)用[J]. 中國人獸共患病學(xué)報(bào), 2012, 28(3): 244-247.

[4] Ranieri ML, Shi C, Moreno Switt AI, et al. Comparison of typing methods with a new procedure based on sequence characterization forSalmonellaserovar prediction[J]. J Clin Microbiol, 2013, 51(6): 1786-1797. DOI: 10.1128/JCM.03201-12

[5] Sun HL, Jiang Y, Li SC, et al. Analysis of serotype, biofilm-forming ability and antimicrobial resistance ofSalmonellastrains isolated from animals[J]. Chin J Anim Vet Sci, 2012, 43(10): 1630-1638. (in Chinese)

孫化露, 姜逸, 李樹純, 等. 動(dòng)物源性沙門菌的血清型、生物被膜形成能力和耐藥性分析[J]. 畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào), 2012, 43(10): 1630-1638.

[6] Saeki EK, Alves J, Bonfante RC, et al. Multiplex PCR (mPCR) for the detection ofSalmonellaspp. and the differentiation of the Typhimurium and Enteritidis serovars in chicken meat[J]. J Food Safety, 2013, 33(1): 25-29. DOI: 10.1111/jfs.12019

[7] Nielsen LR. Review of pathogenesis and diagnostic methods of immediate relevance for epidemiology and control ofSalmonellaDublin in cattle[J]. Vet Microbiol, 2013, 162(1): 1-9. DOI: 10.1016/j.vetmic.2012.08.003

[8] Zhu C, Yue M, Rankin S, et al. One-step identification of five prominent chickenSalmonellaserovars and biotypes[J]. J Clin Microbiol, 2015, 53(12): 3881-3883. DOI: 10.1128/JCM.01976-15

[9] Pai?o FG, Arisitides LG, Murate LS, et al. Detection ofSalmonellaspp.SalmonellaEnteritidis and Typhimurium in naturally infected broiler chickens by a multiplex PCR-based assay[J]. Braz J Microbiol, 2013, 44(1): 37-41. DOI: 10.1590/S1517-83822013005000002

[10] Soria MC, Soria MA, Bueno DJ. Comparison of 2 culture methods and PCR assays forSalmonelladetection in poultry feces[J]. Poult Sci, 2012, 91(3): 616-626. DOI: 10.3382/ps.2011-01831

[11] Carrique-Mas JJ, Willmington JA, Papadopoulou C, et al.Salmonellainfection in cattle in Great Britain, 2003 to 2008[J]. Vet Rec, 2010, 167(15): 560-565. DOI: 10.1136/vr.c4943

[12] Nielsen LR, Dohoo I. Time-to-event analysis of predictors for recovery fromSalmonellaDublin infection in Danish dairy herds between 2002 and 2012[J]. Prev Vet Med, 2013, 110(3-4): 370-378. DOI: 10.1016/j.prevetmed.2013.02.014

[13] Kumar A, Arora V, Bashamboo A, et al. Detection ofSalmonellatyphi by polymerase chain reaction: implications in diagnosis of typhoid fever[J]. Infect Genet Evol, 2002, 2(2): 107-110. DOI: 10.1016/S1567-1348(02)00090-4

[14] Qing LT, Qu XL. Application of nuclear acid probe and PCR techniques in food detection[J]. Prog Vet Med, 2000, 21(1): 22-24. DOI: 10.16437/j.cnki.1007-5038.2000.01.006. (in Chinese)

卿柳庭, 屈小玲. 核酸探針和PCR技術(shù)在食品檢驗(yàn)中的應(yīng)用[J]. 動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展, 2000, 21(1): 22-24.

[15] Herrera-León S, Ramiro R, Arroyo M, et al. Blind comparison of traditional serotyping with three multiplex PCRs for the identification ofSalmonellaserotypes[J]. Res Microbiol, 2007, 158(2): 122-127. DOI: 10.1016/j.resmic.2006.09.009

[16] Wigley P, Hulme S, Powers C, et al. Oral infection with theSalmonellaentericaserovar Gallinarum 9R attenuated live vaccine as a model to characterise immunity to fowl typhoid in the chicken[J]. BMC Vet Res, 2005,1：2. DOI: 10.1186/1746-6148-1-2

[17] Wattiau P, Boland C, Bertrand S. Methodologies forSalmonellaentericasubsp.entericasubtyping: gold standards and alternatives[J]. Appl Environ Microbiol, 2011, 77(22): 7877-7885. DOI: 10.1128/AEM.05527-11

[18] Ricke SC, Khatiwara A, Kwon YM. Application of microarray analysis of foodborneSalmonellain poultry production: a review[J]. Poult Sci, 2013, 92(9): 2243-2250. DOI: 10.3382/ps.2012-02740

[19] Park SH, Aydin M, Khatiwara A, et al. Current and emerging technologies for rapid detection and characterization ofSalmonellain poultry and poultry products[J]. Food Microbiol, 2014, 38: 250-262. DOI: 10.1016/j.fm.2013.10.002

SerotypedistributionofSalmonellatcpSgeneanditsapplicationinidentificationofspecificserovars

XIONG Dan, SONG Li, TAO Jing, ZHENG Hui-juan, ZHOU Zi-hao, PAN Zhi-ming, JIAO Xin-an

(JiangsuKeyLaboratoryofZoonosis,JiangsuCo-innovationCenterforPreventionandControlofImportantAnimalInfectiousDiseasesandZoonoses,JointInternationalResearchLaboratoryofAgricultureandAgri-productSafetyoftheMinistryofEducation,KeyLaboratoryofPreventionandControlofBiologicalHazardFactors(AnimalOrigin)forAgrifoodSafetyandQuality,MinistryofAgricultureofChina,Yangzhou225009,China)

AtcpS-based PCR method was established to simultaneously screenSalmonellaentericaserovars Enteritidis, Pullorum/Gallinarum, and Dublin. The developed PCR method provides laboratorial support as a convenient and rapid approach for epidemiological investigation, andtcpScan be a potential candidate gene for the development of PCR-basedSalmonellaidentification. The serotype distribution ofSalmonellatcpSgene was analyzed by bioinformatic approach. The specificity and sensitivity of the PCR method were determined based on 27 differentSalmonellaserovars and 10 non-Salmonellastrains. The PCR method was applied to clinicalSalmonellaisolates from one pig farm (48 isolates), one chicken farm (22 isolates) and one cattle farm (11 isolates) from Jiangsu Province.Insilicoanalysis showed thattcpSexisted only inSalmonellaEnteritidis, Pullorum/Gallinarum, and Dublin. The developed PCR method had potent specificity and sensitivity, and could screen the three specificSalmonellaserovars accurately. The coincidence rate of the clinical sample detection was up to 100%. ThetcpS-based PCR detection method could screenSalmonellaEnteritidis, Pullorum/Gallinarum, and Dublin accurately, and could be an assistant method to the traditional serotyping method. Furthermore, the noveltcpSgene can be a potent gene candidate for the development of PCR method for the identification ofSalmonellaserovars.

Salmonella;tcpSgene; PCR; serotype

Pan Zhi-ming, Email: zmpan@yzu.edu.cn

國家重點(diǎn)研發(fā)計(jì)劃課題(2016YFD0501607)；公益性行業(yè)(農(nóng)業(yè))科研專項(xiàng)(201403054)；國家自然科學(xué)基金(31320103907, 31230070)；江蘇省重點(diǎn)研發(fā)項(xiàng)目(BE2015343)；江蘇省第9批“六大人才高峰”高層次人才項(xiàng)目(NY-028)；揚(yáng)州大學(xué)科技創(chuàng)新團(tuán)隊(duì)；江蘇省高校優(yōu)勢學(xué)科建設(shè)工程項(xiàng)目聯(lián)合資助

潘志明，Email: zmpan@yzu.edu.cn

江蘇省人獸共患病學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/江蘇省動(dòng)物重要疫病與人獸共患病防控協(xié)同創(chuàng)新中心/農(nóng)業(yè)與農(nóng)產(chǎn)品安全國際合作聯(lián)合實(shí)驗(yàn)室/農(nóng)業(yè)部農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量安全生物性危害因子(動(dòng)物源)控制重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，揚(yáng)州 225009

R378.2

：A

：1002-2694(2017)09-0757-06

2017-03-29編輯：劉岱偉

Funded by the National Key Research and Development Program Special Project (No. 2016YFD0501607), the Special Fund for Agroscientific Research in the Public Interest (No. 201403054), the National Natural Science Foundation of China (Nos. 31320103907 and 31230070), the Research and Development Program of Jiangsu (No. BE2015343), the “Six Talent Peaks Program” of Jiangsu Province (No. NY-028), the Yangzhou University Science and Technology Innovation Team, and the Priority Academic Program Development of Jiangsu Higher Education Institutions (PAPD)