• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看

      ?

      腫瘤相關(guān)間充質(zhì)干細胞及其靶向治療的研究進展

      2018-01-17 02:24:15
      關(guān)鍵詞:趨化因子充質(zhì)干細胞

      間充質(zhì)干細胞(mesenchymal stem cells,MSCs)與腫瘤發(fā)生發(fā)展關(guān)系密切,MSCs可以作為載體在腫瘤治療中發(fā)揮作用,并且其在特定的條件下可轉(zhuǎn)化為腫瘤相關(guān)間充質(zhì)干細胞(tumour-associated MSCs,TA-MSCs)。TA-MSCs可以通過抑制免疫應(yīng)答支持腫瘤生長,也可以分泌一些生長因子影響腫瘤生長等多個惡性進程,還可以通過調(diào)節(jié)腫瘤微環(huán)境的免疫狀態(tài)間接促進腫瘤發(fā)展,因而TA-MSCs可以作為腫瘤治療的新興靶點。

      一、MSCs的特點

      多能間充質(zhì)干細胞又稱為MSCs,是一組具有異質(zhì)性的祖細胞群體,具有組織重建的重要功能。19世紀60年代第一次在骨髓中被發(fā)現(xiàn)并認為是克隆形成的纖維單元[1]。隨后在很多組織中相繼被發(fā)現(xiàn)。他們具有獨特的表面標(biāo)志物,所以很容易在許多組織中被分離,比如:骨髓、脂肪與臍帶[2-3]。MSCs具有自我更新與分化為各種細胞類型的能力。所以該細胞具有修復(fù)重建各種組織的潛能。更有趣的是MSCs也會調(diào)控免疫系統(tǒng)。在2004年第一次被成功用于治療異種移植抗宿主疾病(graft-versus-host disease,GVHD)[2-4]。MSCs可有效的治療慢性炎癥與創(chuàng)傷,比如:全身系統(tǒng)性的紅斑狼瘡、肝損傷與糖尿病足[5-6]。在clinical trail上注冊的有超過700個臨床研究是以MSCs為基礎(chǔ)的。這些臨床研究集中在炎癥疾病與器官損傷方面。除此以外有4個研究是以MSCs為基礎(chǔ)研究癌癥的。

      二、TA-MSCs的形成

      MSCs可以改變局部炎性微環(huán)境,并通過產(chǎn)生免疫調(diào)節(jié)因子、生長因子和趨化因子來幫助傷口修復(fù)與組織內(nèi)干細胞活性[2,7]。然而,MSCs并不是經(jīng)常處于正向調(diào)節(jié)狀態(tài),其性質(zhì)可以根據(jù)其所在組織的病理生理狀態(tài)而改變[3,8]。MSCs與其所處環(huán)境之間的細胞學(xué)與分子學(xué)作用、組織損傷程度和所處環(huán)境的炎癥強度有關(guān)聯(lián)。此外,已經(jīng)發(fā)現(xiàn)MSCs會遷移到腫瘤部位并演變成TA-MSCs和癌相關(guān)成纖維細胞(cancer associated fibroblasts,CAFs)[9-10]。癌癥細胞與其周圍環(huán)境的雙向溝通決定了癌癥細胞的生長、遷移。癌癥被認為是一個永遠不能愈合的創(chuàng)傷,所以炎癥細胞與修補用的MSCs會遷移到癌癥部位啟動創(chuàng)傷相關(guān)的信號通路[10]。當(dāng)TA-MSCs與癌癥細胞共同注射到小鼠體內(nèi)后發(fā)現(xiàn)淋巴瘤、黑色素瘤與乳腺癌細胞的體內(nèi)成瘤被促進[10]。用于TA-MSCs表征和鑒定的各種研究提高了研究人員對腫瘤細胞與其微環(huán)境之間相互作用的理解。例如,發(fā)現(xiàn)腫瘤不僅由具有不同遺傳突變的腫瘤細胞組成,而且在其微環(huán)境中的細胞組成和性質(zhì)(包括TA-MSCs)中也顯示出異質(zhì)性。TA-MSCs會不斷地改變腫瘤細胞的微環(huán)境,因此促進腫瘤的生長與遷移[9,11]。

      (一)腫瘤細胞招募MSCs

      在幾種動物模型中已經(jīng)證實MSCs會向腫瘤主動遷移。在監(jiān)測攜帶同基因或異種基因乳腺癌小鼠中表達熒光素酶的MSCs動力學(xué)研究中,證明了這些MSC會遷移到腫瘤部位[12]。值得注意的是,在人膠質(zhì)瘤的異種移植小鼠模型中,人BM-MSCs和人正常成纖維細胞系(C29)的功能特征比較顯示,與成纖維細胞不同,BM-MSCs可顯示腫瘤趨向性[13]。腫瘤相關(guān)炎癥激活這些細胞分泌募集巨噬細胞的趨化因子,隨后促進腫瘤生長。在患有嚴重外傷的患者血液循環(huán)中發(fā)現(xiàn)了MSCs,并被認為其參與了促進了傷口愈合,而在終末期腎病與肺損傷中并沒有檢測到MSCs[14]?,F(xiàn)在已知的MSCs趨向腫瘤的決定性因子有CCL2,CCL5,CXCL2與CXCL6,這些均由腫瘤細胞、免疫細胞與腫瘤間充質(zhì)細胞產(chǎn)生并參與整個癌癥發(fā)生過程[15-17]。

      (二)將MSCs轉(zhuǎn)化為TA-MSCs

      居住在組織中MSCs的性質(zhì)是由所處組織決定的[18]。TA-MSCs 與BM-MSCs是不同的,TA-MSCs在人類的卵巢癌中被發(fā)現(xiàn)并分泌許多骨形態(tài)的蛋白(BMPs)[19],他會控制惡性腫瘤中干細胞的分化與增殖,比脂肪來源的MSCs與健康供體來源的BM-MSCs都多[20]。很多研究均表明:癌癥微環(huán)境可以導(dǎo)致BM-MSCs永久性轉(zhuǎn)化為TA-MSCs。BMMSCs與AT-MSCs共同培養(yǎng)后會獲得與TA-MSCs相似的促腫瘤生長能力[10]。這就指出TA-MSCs在腫瘤中可能會使新進入的BM-MSCs轉(zhuǎn)化為TA-MSCs,會進一步擴增他們自身群體數(shù)量,雖然機制現(xiàn)在還不是很清楚,但是一些體外研究已經(jīng)發(fā)現(xiàn):腫瘤條件性的培養(yǎng)基會賦予BM-MSCs一些腫瘤促進的功能,揭示出一些旁分泌因子會使BM-MSCs轉(zhuǎn)變?yōu)門A-MSCs[10,21-22]。最近研究發(fā)現(xiàn)腫瘤分泌的外泌體會更有效的使BM-MSCs轉(zhuǎn)化為TA-MSCs[21]。這些結(jié)果表明腫瘤細胞,免疫細胞和其他基質(zhì)細胞存在于腫瘤微環(huán)境中,通過細胞與細胞接觸或者通過旁分泌的互相作用“訓(xùn)化”新入的MSCs轉(zhuǎn)化進化成TA-MSCs[21]。

      三、TA-MSCs促進腫瘤生長的機制

      (一)TA-MSCs與腫瘤生長

      TA-MSCs和MSCs會分泌生長因子、炎癥趨化因子與細胞因子類,并且在腫瘤發(fā)生與發(fā)展過程中會給予腫瘤細胞有利的生長環(huán)境[23-24]。如在移植瘤模型中VEGF與神經(jīng)調(diào)節(jié)蛋白1均表現(xiàn)出腫瘤促進作用[23];在瘤內(nèi)注射BM-MSCs條件性培養(yǎng)基,結(jié)腸癌細胞在裸鼠體內(nèi)的成瘤速度加快,其原因歸功于BM-MSCs分泌的生長因子神經(jīng)調(diào)節(jié)蛋白1。同時,敲除神經(jīng)調(diào)節(jié)蛋白1的表達能中和這種作用。神經(jīng)調(diào)節(jié)蛋白1會聯(lián)合EGFR來調(diào)節(jié)各種細胞的生長和分化[25]。體外實驗表明,在結(jié)腸癌細胞中BM-MSCs分泌神經(jīng)調(diào)節(jié)蛋白1后會激活HER2/HER3所在的PI3K-AKT信號通路[24]。臨床研究發(fā)現(xiàn),TA-MSCs相關(guān)的預(yù)后不好的結(jié)腸癌患者均有神經(jīng)調(diào)節(jié)蛋白1的高表達。

      在小鼠模型中臍帶MSCs與乳腺癌細胞系MDAMB-231之間互相作用會促進乳腺癌細胞在體內(nèi)的增殖,雖然其分子機制現(xiàn)在還不是很清楚。更加有趣的是,與BMMSCs或者健康供體脂肪來源的MSCs相比較,從卵巢或者多發(fā)性黑色素瘤患者中分離TA-MSCs均發(fā)現(xiàn)可以改變促進腫瘤生長的特異性因子分泌物[26]。盡管許多數(shù)據(jù)仍有待研究,但現(xiàn)有數(shù)據(jù)表明TA-MSCs在促進腫瘤生長中起重要作用。

      (二)TA-MSCs與癌癥的血管生成

      超過一定體積的腫瘤需要新生血管形成維持其持續(xù)生長的能量[27]。MSCs在血管形成過程中扮演著重要的角色。在大鼠的局部缺血損傷組織中,BM-MSCs會極大限度的增加血管生成。在癌癥中已經(jīng)顯示出TA-MSCs通過分泌VEGF,轉(zhuǎn)分化為內(nèi)皮細胞與招募內(nèi)皮祖細胞促進血管生成[28-30]。例如,在胰腺癌的原位腫瘤模型中,發(fā)現(xiàn)與腫瘤細胞共注射的BM-MSCs會分泌VEGF,從而支持腫瘤血管生成。MSCs中的VEGF敲低后可降低其促血管生成能力[23]。

      最近的調(diào)查也揭示了MSCs和周細胞之間的聯(lián)系。周細胞表達許多表達標(biāo)志物,也可以在MSCs上發(fā)現(xiàn),并且具有類似于MSCs的多能分化潛能[31]。在大鼠神經(jīng)膠質(zhì)瘤模型中,腫瘤內(nèi)注射的BM-MSCs被發(fā)現(xiàn)附著于腫瘤中的血管,在那里開始表達周邊細胞標(biāo)志物,例如NG2,αSMA和PDGFRβ,但不表達內(nèi)皮細胞標(biāo)志物,表明在腫瘤中移植的MSCs可以作為血管周細胞[32]。這些發(fā)現(xiàn)意味著MSCs可以直接增強腫瘤新生血管形成和通過促血管生成因子的分泌,從而促進腫瘤生長。

      (三)TA-MSCs與癌癥轉(zhuǎn)移

      癌癥轉(zhuǎn)移是一個復(fù)雜過程,涉及局部入侵、運輸、循環(huán)中的存活、外滲和定殖[33]。TA-MSCs對于創(chuàng)造腫瘤細胞轉(zhuǎn)移的有利微環(huán)境是不可或缺的[34]。癌癥細胞的遷移與轉(zhuǎn)移會被炎癥趨化因子與其受體調(diào)控。比如,乳腺癌細胞中TAMSCs分泌的CXCR4與CXCR7會導(dǎo)致腫瘤細胞遷移到其他器官的能力增強。如果敲除CXCR4的表達,就會使乳腺癌細胞的轉(zhuǎn)移被抑制[35]。

      各種抗癌策略,包括化學(xué)治療,靶向治療,放射治療和免疫治療,都可能導(dǎo)致腫瘤縮小甚至治愈。然而也存在一些腫瘤細胞可以發(fā)展為治療抗性。腫瘤干細胞(CSCs),也被稱為腫瘤起始細胞,是腫瘤中存在的一種少量的側(cè)群細胞,它們會真正的抵抗放療與化療,可能歸功于它們的休眠狀態(tài)。此外,腫瘤基質(zhì)的細胞多樣性以及基質(zhì)細胞如TA-MSCs的遺傳突變可能有助于化療和放療患者潛在的復(fù)發(fā)性腫瘤生長。最近一些誘發(fā)性的臨床實驗表明腫瘤間充質(zhì)細胞在腫瘤中所占有的比例是患者預(yù)后差與發(fā)生化療抵抗的一個重要指針。而且,腫瘤間充質(zhì)細胞的比例與腫瘤生長與侵襲之間存在著很強的正相關(guān)。各種體內(nèi)外研究均表明MSCs與CAFs可以使得腫瘤細胞抵抗化療與放療作用。

      四、靶向TA-MSCs的腫瘤治療策略

      (一)使用MSCs進行腫瘤靶向治療

      MSCs用于抗癌治療的另一個重要方面是其對腫瘤部位傾向性特征。已經(jīng)證明,體外擴增的人骨髓基質(zhì)細胞(BM-MSCs)注射到小鼠中時,首先進入肺部,隨后移動到肝臟和脾臟,最后隨著時間逐漸減少[12]。在實驗研究發(fā)現(xiàn)MSCs向傷口部位歸巢,移植的MSCs僅在損傷部位可檢測到。重要的是,在攜帶任何各種同基因或異種腫瘤的小鼠中,注射的人BM-MSCs在腫瘤位點處表現(xiàn)出持久和特異性定位。MSCs的這種性質(zhì)以及容易獲得并且具有廣泛的組織損傷臨床應(yīng)用的事實使得這些細胞成為藥物遞送載體的候選者。

      (二)TA-MSCs作為癌癥治療上游或者下游的靶點

      直接使用TA-MSCs治療癌癥是很困難的,因為其沒有特異性的細胞表面標(biāo)志物?,F(xiàn)在已經(jīng)明確的是,在腫瘤進展期間TA-MSCs的上游和下游調(diào)節(jié)劑具有作為新的抗癌藥物靶標(biāo)的潛力。這些治療途徑主要包括:抑制腫瘤招募MSCs所需的趨化因子[36-37];抑制TA-MSCs產(chǎn)生的促進腫瘤血管生成以及惡性細胞的存活和增殖的生長因子;抑制TAMSCs協(xié)助腫瘤細胞轉(zhuǎn)移的趨化因子;抑制腫瘤細胞耐藥的分子或因子;并以促進抗腫瘤免疫治療的方式調(diào)節(jié)由TAMSCs產(chǎn)生的趨化因子和免疫抑制因子。

      五、結(jié)論

      隨著不斷破譯MSCs在各種病理生理條件下的作用,它可能用來治療癌癥和其他疾病。由于MSCs可以促進和損害腫瘤生長,所以固有可塑性必須通過遺傳操作或通過IFNα的離體處理或調(diào)節(jié)其免疫調(diào)節(jié)活性的化學(xué)試劑來適當(dāng)?shù)匾龑?dǎo)達到期望的效果。以這種方式,可以操縱MSCs以增強抗腫瘤免疫應(yīng)答或特異性遞送抗腫瘤信號,并且可以用作將細胞毒劑直接遞送至腫瘤部位的媒介物。

      然而,必須解決許多未解決的問題,例如基于MSCs或被編輯的MSCs治療對患者生存的影響,以及長期安全性和有效性,體外篩選平臺以及原位和“原位轉(zhuǎn)移”異種移植小鼠模型已經(jīng)提供了MSCs抗癌的潛在治療功效,還需要進一步研究不同類型癌癥和癌癥進展的不同階段AT-MSCs的功能,并優(yōu)化MSCs以更有效和安全的用于癌癥治療。

      1 Friedenstein AJ, Chailakhjan RK, Lalykina KS. The development of fibroblast colonies in monolayer cultures of guinea-pig bone marrow and spleen cells[J]. Cell Tissue Kinet, 1970, 3(4):393-403.

      2 Uccelli A, Moretta L, Pistoia V. Mesenchymal stem cells in health and disease[J]. Nat Rev Immunol, 2008, 8(9):726-736.

      3 Shi Y, Su J, Roberts AI, et al. How mesenchymal stem cells interact with tissue immune responses[J]. Trends Immunol, 2012, 33(3):136-143.

      4 Zhou BO, Yue R, Murphy MM, et al. Leptin-receptor-expressing mesenchymal stromal cells represent the main source of bone formed by adult bone marrow[J]. Cell Stem Cell, 2014, 15(2):154-168.

      5 Sun L, Wang D, Liang J, et al. Umbilical cord mesenchymal stem cell transplantation in severe and refractory systemic lupus erythematosus[J]. Arthritis Rheum, 2010, 62(8):2467-2475.

      6 Vojtassak J, Danisovic L, Kubes M, et al. Autologous biograft and mesenchymal stem cells in treatment of the diabetic foot[J]. Neuro Endocrinol Lett, 2006, 27 Suppl 2:134-137.

      7 Caplan AI, Correa D. The MSC: an injury drugstore[J]. Cell stem cell,2011, 9(1):11-15.

      8 Wang Y, Chen XD, Cao W, et al. Plasticity of mesenchymal stem cells in immunomodulation: pathological and therapeutic implications[J].Nat Immunol, 2014, 15(11):1009-1016.

      9 Quante M, Tu SP, Tomita H, et al. Bone marrow-derived myofibroblasts contribute to the mesenchymal stem cell niche and promote tumor growth[J]. Cancer Cell, 2011, 19(2):257-272.

      10 Ren G, Zhao X, Wang Y, et al. CCR2-dependent recruitment of macrophages by tumor-educated mesenchymal stromal cells promotes tumor development and is mimicked by TNFα[J]. Cell Stem Cell, 2012,11(6):812-824.

      11 Roodhart JM, Daenen LG, Stigter EC, et al. Mesenchymal stem cells induce resistance to chemotherapy through the release of platinuminduced fatty acids[J]. Cancer Cell, 2011, 20(3):370-383.

      12 Kidd S, Spaeth E, Dembinski JL, et al. Direct evidence of mesenchymal stem cell tropism for tumor and wounding microenvironments using in vivo bioluminescent imaging[J]. Stem Cells, 2009, 27(10):2614-2623.

      13 Nakamizo A, Marini F, Amano T, et al. Human bone marrow-derived mesenchymal stem cells in the treatment of gliomas[J]. Cancer Res,2005, 65(8):3307-3318.

      14 Hoogduijn MJ, Verstegen MM, Engela AU, et al. Evidence for circulating mesenchymal stem cells in patients with organ injury[J].Stem Cells Dev, 2014, 23(19):2328-2335.

      15 Stagg J. Mesenchymal stem cells in cancer[J]. Stem Cell Rev, 2008,4(2):119-124.

      16 Jung Y, Kim JK, Shiozawa Y, et al. Recruitment of mesenchymal stem cells into prostate tumours promotes metastasis[J]. Nat Commun, 2013,4:1795.

      17 Dwyer RM, Potter-Beirne SM, Harrington KA, et al. Monocyte chemotactic protein-1 secreted by primary breast tumors stimulates migration of mesenchymal stem cells[J]. Clin Cancer Res, 2007,13(17):5020-5027.

      18 Wagner W, Wein F, Seckinger A, et al. Comparative characteristics of mesenchymal stem cells from human bone marrow, adipose tissue, and umbilical cord blood[J]. Exp Hematol, 2005, 33(11):1402-1416.

      19 Waite KA, Eng C. From developmental disorder to heritable cancer: it's all in the BMP/TGF-beta family[J]. Nat Rev Genet, 2003, 4(10):763-773.

      20 Mclean K, Gong Y, Choi Y, et al. Human ovarian carcinoma-associated mesenchymal stem cells regulate cancer stem cells and tumorigenesis via altered BMP production[J]. J Clin Invest, 2011, 121(8):3206-3219.

      21 Ren G, Liu Y, Zhao X, et al. Tumor resident mesenchymal stromal cells endow na?ve stromal cells with tumor-promoting properties[J].Oncogene, 2014, 33(30):4016-4020.

      22 Lin LY, Du LM, Cao K, et al. Tumour cell-derived exosomes endow mesenchymal stromal cells with tumour-promotion capabilities[J].Oncogene, 2016, 35(46):6038-6042.

      23 Beckermann BM, Kallifatidis G, Groth A, et al. VEGF expression by mesenchymal stem cells contributes to angiogenesis in pancreatic carcinoma[J]. Br J Cancer, 2008, 99(4):622-631.

      24 De Boeck A, Pauwels P, Hensen K, et al. Bone marrow-derived mesenchymal stem cells promote colorectal cancer progression through paracrine neuregulin 1/HER3 signalling[J]. Gut, 2013, 62(4):550-560.

      25 Crovello CS, Lai C, Cantley LC, et al. Differential signaling by the epidermal growth factor-like growth factors neuregulin-1 and neuregulin-2[J]. J Biol Chem, 1998, 273(41):26954-26961.

      26 Mandel K, Yang Y, Schambach A, et al. Mesenchymal stem cells directly interact with breast cancer cells and promote tumor cell growth in vitro and in vivo[J]. Stem Cells Dev, 2013, 22(23):3114-3127.

      27 Hanahan D, Weinberg RA. Hallmarks of cancer: the next Generation[J].Cell, 2011, 144(5):646-674.

      28 Rosová I, Dao M, Capoccia B, et al. Hypoxic preconditioning results in increased motility and improved therapeutic potential of human mesenchymal stem cells[J]. Stem Cells, 2008, 26(8):2173-2182.

      29 Wei L, Fraser JL, Lu ZY, et al. Transplantation of hypoxia preconditioned bone marrow mesenchymal stem cells enhances angiogenesis and neurogenesis after cerebral ischemia in rats[J].Neurobiol Dis, 2012, 46(3):635-645.

      30 Chen J, Park HC, Addabbo F, et al. Kidney-derived mesenchymal stem cells contribute to vasculogenesis, angiogenesis and endothelial repair[J]. Kidney Int, 2008, 74(7):879-889.

      31 Crisan M, Yap S, Casteilla L, et al. A perivascular origin for mesenchymal stem cells in multiple human organs[J]. Cell Stem Cell,2008, 3(3):301-313.

      32 Bexell D, Gunnarsson S, Tormin A, et al. Bone marrow multipotent mesenchymal stroma cells act as pericyte-like migratory vehicles in experimental gliomas[J]. Mol Ther, 2009, 17(1):183-190.

      33 Valastyan S, Weinberg RA. Tumor metastasis: molecular insights and evolving paradigms[J]. Cell, 2011, 147(2):275-292.

      34 Gupta GP, Massagué J. Cancer metastasis: building a framework[J].Cell, 2006, 127(4):679-695.

      35 Müller A, Homey B, Soto H, et al. Involvement of chemokine receptors in breast cancer metastasis[J]. Nature, 2001, 410(6824):50-56.

      36 Zhang Y, Yang P, Sun T, et al. miR-126 and miR-126* repress recruitment of mesenchymal stem cells and inflammatory monocytes to inhibit breast cancer metastasis[J]. Nat Cell Biol, 2013, 15(3):284-294.

      37 Ho IA, Yulyana Y, Sia KC, et al. Matrix metalloproteinase-1-mediated mesenchymal stem cell tumor tropism is dependent on crosstalk with stromal derived growth factor 1/C-X-C chemokine receptor 4 axis[J].FASEB J, 2014, 28(10):4359-4368.

      猜你喜歡
      趨化因子充質(zhì)干細胞
      干細胞:“小細胞”造就“大健康”
      miR-490-3p調(diào)控SW1990胰腺癌細胞上皮間充質(zhì)轉(zhuǎn)化
      間充質(zhì)干細胞外泌體在口腔組織再生中的研究進展
      間充質(zhì)干細胞治療老年衰弱研究進展
      三七總皂苷對A549細胞上皮-間充質(zhì)轉(zhuǎn)化的影響
      造血干細胞移植與捐獻
      干細胞產(chǎn)業(yè)的春天來了?
      趨化因子及其受體在腫瘤免疫中調(diào)節(jié)作用的新進展
      肝細胞癌患者血清趨化因子CXCR12和SA的表達及臨床意義
      干細胞治療有待規(guī)范
      灌云县| 门源| 钟山县| 伽师县| 台山市| 惠州市| 宿迁市| 察雅县| 岗巴县| 赤水市| 新沂市| 济宁市| 屏山县| 武川县| 时尚| 上饶县| 平武县| 三河市| 洪湖市| 沙湾县| 永清县| 扶风县| 柳河县| 房山区| 徐州市| 林芝县| 乌拉特中旗| 光山县| 双流县| 台江县| 和政县| 洛隆县| 宁国市| 博兴县| 博罗县| 潜江市| 岑溪市| 崇州市| 塔城市| 山西省| 行唐县|