易夢秋, 余 旻, 王 鵬
(宜昌市第一人民醫(yī)院ICU, 湖北 宜昌 443000)
目前認(rèn)為,多器官功能障礙綜合征(multiple organ dysfunction syndrome,MODS)的本質(zhì)是機(jī)體炎癥反應(yīng)失控所導(dǎo)致的多器官功能序貫損傷,血管內(nèi)皮襯托于血管表面,最先感應(yīng)各種理化因素的刺激,是啟動(dòng)和放大炎癥反應(yīng)的關(guān)鍵。血管內(nèi)皮包括內(nèi)皮細(xì)胞及細(xì)胞外基質(zhì)(extracellular matrix,ECM)?;|(zhì)金屬蛋白酶9(matrix metalloproteinase-9,MMP-9)作為靶向ECM主要成分IV型膠原(collagen type IV,IV-C)的水解酶,在調(diào)節(jié)細(xì)胞外基質(zhì)的動(dòng)態(tài)平衡中發(fā)揮極其重要的作用[1];金屬蛋白酶組織抑制物1(tissue inhibitor of metalloproteinase-1,TIMP-1)為MMP-9的內(nèi)源性抑制劑,可特異性結(jié)合MMP-9催化活性中心的鋅離子,抑制MMP-9水解蛋白的活性,進(jìn)而促進(jìn)ECM的沉積并抑制其降解[2]。在全身炎癥反應(yīng)失控而導(dǎo)致MODS發(fā)生的病理生理過程中,肺臟是最容易受損的靶器官,本實(shí)驗(yàn)通過觀察MODS大鼠模型肺組織中MMP-9、TIMP-1及IV-C的表達(dá)變化,研究它們與細(xì)胞外基質(zhì)損傷之間的關(guān)系,探討MODS肺損傷的發(fā)生機(jī)制。
40只健康成年SD大鼠(SPF級,雄性,180~200 g,No. 42010200000481),由三峽大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,符合國家實(shí)驗(yàn)動(dòng)物使用標(biāo)準(zhǔn),許可證號為SCXK(鄂)2011-0012。所有大鼠于代謝籠中在濕度(60±5)%、溫度(20±2)℃和12 h光照/ 12 h黑暗周期的標(biāo)準(zhǔn)條件下自由攝食和飲水,喂養(yǎng)1周后進(jìn)行實(shí)驗(yàn),實(shí)驗(yàn)前禁食12 h,禁水4 h。
ELISA 試劑盒購自武漢博士德試劑公司;RNA提取試劑(Trizol)購自Invitrogen;PrimeScript RT Reagent Kit with gDNA Erase購自TaKaRa;DNA Ladder購自北京索萊寶科技有限公司;抗MMP-9、TIMP-1和IV-C抗體購自Abcam; II 抗、BSA、DAB試劑盒、DAPI染色試劑和蛋白裂解液購自谷歌生物;BCA蛋白濃度測定試劑盒和蛋白marker購自Thermo。引物由上海生物工程有限公司合成,MMP-9的上游引物序列為5’-CCACCGAGCTATCCACTCAT-3’,下游引物序列為5’-GTCCGGTTTCAGCATGTTTT-3’;TIMP-1的上游引物序列為5’-TCCCCAGAAATCATCGAGAC-3’,下游引物序列為5’-ATGGCTGAACAGGGAAACAC-3’;β-actin的上游引物序列為5’-GCCATGTACGTAGCCATCCA-3’,下游引物序列為5’-GAACCGCTCATTGCCGATAG-3’。
3.1動(dòng)物分組與模型制備 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物稱重后按隨機(jī)數(shù)字表達(dá)法將大鼠分為假手術(shù)(sham)對照組和盲腸結(jié)扎穿孔(cecal ligation and puncture,CLP)模型組,其中,CLP組又根據(jù)造模后不同時(shí)相分為 MODS 6 h組、 MODS 12 h組、 MODS 24 h組和MODS 48 h組,每組各8只。采用改良的CLP法[3]構(gòu)建MODS大鼠模型:用3%戊巴比妥鈉以30 mg/kg腹腔注射麻醉后,大鼠常規(guī)備皮消毒,沿腹中線作長約1.0 cm的手術(shù)切口,輕輕分離出盲腸,避免損傷腸系膜血管,輕輕擠壓盲腸上端的糞便,使盲腸末端充盈,分離腸系膜血管,用無菌4號絲線在距盲腸游離端約1.5 cm處結(jié)扎,并用21號無菌針頭在結(jié)扎部位與盲腸頂端的中點(diǎn)處貫通刺穿腸壁,形成盲腸漏,并擠少許糞便至腹腔,后將盲腸還納,關(guān)閉腹腔逐層縫合切口并消毒,待麻醉蘇醒后自由飲水和攝食。Sham組大鼠僅做剖腹探查術(shù)。
3.2標(biāo)本采集 取腹主動(dòng)脈血1 mL,用血?dú)夥治鰞x進(jìn)行血?dú)夥治?,?jì)算氧合指數(shù)(oxigenation index,OI), OI=PaO2/FiO2(FiO2=0.21),其中PaO2為動(dòng)脈氧分壓,F(xiàn)iO2為吸入氧濃度百分比;另取腹主動(dòng)脈血5 mL,室溫靜置4 h后,3 000 r/min離心15 min,取上清用于血液生化及ELISA檢測相關(guān)指標(biāo)含量。采血后迅速取肺組織,分成3份:(1)按肺組織制片要求取厚5~7 mm組織,置于4 %多聚甲醛溶液中固定24 h后,脫水、包埋、切片,用于HE染色和免疫組織化學(xué)(immunohistochemistry,IHC)分析;(2)切取厚2 cm的組織塊迅速用錫箔紙輕輕包住并標(biāo)記,放入液氮中保存,制備冰凍切片,用于免疫熒光(immunofluorescence,IF)分析;(3)將組織切成小塊,用1.5 mL離心管分裝并標(biāo)記,-80 ℃保存,盡早提取總RNA和蛋白質(zhì)。制片的組織盡量取材于相同部位。
3.3肝、腎和肺功能檢測 采用全自動(dòng)生化分析儀檢測血清中丙氨酸轉(zhuǎn)氨酶(alanine aminotransferase,ALT)、 天冬氨酸轉(zhuǎn)氨酶(aspartate aminotransferase,AST)、膽紅素(bilirubin,BIL)、血清肌酐(serum creatinine,SCr)和血尿素氮(blood urea nitrogen,BUN)的水平。同時(shí),采用血?dú)夥治鰞x進(jìn)行血?dú)夥治?,并?jì)算分析氧合指數(shù)。
3.4病理學(xué)檢查 將肺組織浸泡在4 %多聚甲醛溶液中固定24 h后,梯度乙醇脫水,石蠟包埋,做厚度4 μm的連續(xù)切片,貼于防脫載玻片,再經(jīng)60 ℃烤箱烘烤4 h后,4 ℃保存。取出行HE染色。光鏡下觀察并取圖。
3.5ELISA檢測血清中腫瘤壞死因子α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)、白細(xì)胞介素1β(interleukin-1β,IL-1β)、MMP-9及TIMP-1的水平 按照ELISA試劑盒說明書進(jìn)行操作。
3.6RT-PCR檢測肺組織MMP-9及TIMP-1的mRNA表達(dá) 采用Trizol試劑提取肺組織總RNA,微量核酸蛋白檢測儀測定RNA的純度和濃度。取1 μg RNA按照說明書合成cDNA,然后以25 μL反應(yīng)體系進(jìn)行擴(kuò)增。MMP-9的擴(kuò)增條件為: 94 ℃預(yù)變性5 min; 94 ℃變性30 s, 56 ℃退火30 s, 72 ℃延伸30 s,循環(huán)35次; 72 ℃ 再延伸10 min,擴(kuò)增產(chǎn)物片段為161 bp。TIMP-1的擴(kuò)增條件為: 94 ℃預(yù)變性5 min; 94 ℃變性45 s, 58 ℃退火35 s, 72 ℃延伸45 s,循環(huán)35次; 72 ℃再延伸10 min,擴(kuò)增產(chǎn)物片段為329 bp。β-actin的擴(kuò)增條件為: 94 ℃預(yù)變性5 min; 94 ℃變性35 s, 59 ℃退火35 s, 72 ℃延伸35 s,循環(huán)35次; 72 ℃再延伸10 min,擴(kuò)增產(chǎn)物片段為375 bp。取20 μL擴(kuò)增產(chǎn)物行2%瓊脂糖凝膠電泳,最后在凝膠成像系統(tǒng)下觀察取圖并分析結(jié)果。
3.7免疫組織化學(xué)法檢測肺組織MMP-9及TIMP-1的蛋白表達(dá) 取上述制備的切片脫蠟,檸檬酸鈉高壓鍋修復(fù)抗原,PBS沖洗,3%雙氧水消除過氧化物酶,PBS沖洗,5% BSA室溫封閉30 min,按適當(dāng)比例加入 I 抗(MMP-9 1∶100,TIMP-1 1∶200),4 ℃孵育過夜,PBS沖洗,加入II 抗(1∶100),室溫孵育1 h,DAB顯色,流水沖洗,蘇木精染核,中性樹脂封片,顯微鏡下觀察出現(xiàn)棕黃色顆粒為陽性表達(dá)分布,隨機(jī)選取5個(gè)視野用Image-Pro Plus軟件進(jìn)行平均吸光度分析。
3.8免疫熒光檢測肺組織IV-C的表達(dá) 從液氮中取出肺組織,置于恒冷箱式冰凍切片機(jī)內(nèi)平衡20 min,作厚度6 μm的冰凍切片,貼于防脫載玻片上,室溫放置30 min,丙酮固定10 min,室溫晾干。0.3 % Triton X-100溶液處理切片20 min,PBS沖洗,5 % BSA室溫封閉30 min,甩干,按適當(dāng)比例加入 I 抗(1∶500),4 ℃孵育過夜,PBS沖洗,加入熒光 II 抗(1∶1 000)避光孵育1 h,PBS沖洗,DAPI避光染核10 min,PBS沖洗,抗熒光猝滅劑封片,熒光顯微鏡下觀察取圖并用Image-Pro Plus軟件分析平均吸光度。
3.9Western blot檢測肺組織IV-C蛋白的表達(dá) 采用蛋白裂解液提取肺組織總蛋白,參照BCA試劑盒說明書測定蛋白濃度,計(jì)算50 μg蛋白的上樣體積,制樣,經(jīng)SDS-PAGE轉(zhuǎn)移至PVDF膜上,5 %脫脂奶粉室溫封閉1 h,加適當(dāng)比例 I抗[MMP-9 (1∶1 000)、TIMP-1 (1∶500)和β-actin (1∶3 000)],4 ℃過夜,TBST洗3次,每次10 min,加適當(dāng)比例 II 抗(1∶3 000)室溫孵育1 h,然后TBST洗3次,每次10 min。用吸水紙吸凈PVDF膜上的液體,滴加等比例混合的A、B顯影液,在凝膠成像系統(tǒng)下取圖并分析實(shí)驗(yàn)結(jié)果。
用SPSS 23.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理和統(tǒng)計(jì)分析。所有實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示,計(jì)量資料采用完全隨機(jī)設(shè)計(jì)的方差分析,并用LSD法做多樣本均數(shù)間的兩兩比較,方差不齊時(shí)先進(jìn)行變量轉(zhuǎn)換,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
麻醉蘇醒后,sham組大鼠的精神、活動(dòng)、飲水及攝食量較假手術(shù)前稍減弱,6 h后逐漸恢復(fù)至術(shù)前狀態(tài),全程無死亡。與sham組大鼠比較,各模型組大鼠復(fù)蘇延遲,精神差,反應(yīng)遲鈍,毛豎、色黃無光澤,眼鼻分泌物增多,縮背少動(dòng),飲水及攝食量明顯減少,體重減輕,其中,12 h組和24 h組各死亡1只,48 h組死亡2只。
與sham組比較,各模型組均出現(xiàn)不同程度的肝、腎和肺功能損傷,血清中ALT、AST、BIL、SCr和BUN的水平呈進(jìn)行性升高,OI呈明顯下降趨勢(P<0.05或P<0.01),見表1。
表1 生化及血?dú)夥治鼋Y(jié)果
*P<0.05,**P<0.01vssham group.
Sham組大鼠肺組織結(jié)構(gòu)正常,肺泡腔及間質(zhì)內(nèi)無滲出;各模型組大鼠肺組織損傷嚴(yán)重,造模后6 h可見肺泡壁毛細(xì)血管充血,肺泡腔內(nèi)有大量漿液及少量紅細(xì)胞和中性粒細(xì)胞浸潤,造模后12~24 h血管顯著擴(kuò)張伴出血,肺間質(zhì)增厚,肺泡腔內(nèi)充滿大量紅細(xì)胞和中性粒細(xì)胞,48 h滲出減少,間質(zhì)增厚,部分肺泡腔閉陷,見圖1。
Figure 1. The pathologic changes of the lung tissues in control group and MODS model groups (×400). A: sham group; B: MODS 6 h group; C: MODS 12 h group; D: MODS 24 h group; E: MODS 48 h group.
圖1各組大鼠肺組織形態(tài)學(xué)的變化
與sham組比較,各模型組血清中TNF-α、IL-1β、MMP-9及TIMP-1的含量均明顯升高,于造模后12~24 h達(dá)高峰(P<0.01),48 h有所降低,但仍高于sham組(P<0.05或P<0.01);MODS 6 h和12 h組MMP-9/TIMP-1比值明顯高于sham組(P<0.05或P<0.01),而24 h和48 h組MMP-9/TIMP-1比值明顯低于sham組(P<0.05或P<0.01),見圖2、表2。
Figure 2. The serum levels of TNF-α, IL-1β, MMP-9 and TIMP-1 in control group and MODS model groups. Mean±SD.n=3.*P<0.05,**P<0.01vssham group.
圖2各組大鼠血清中TNF-α、IL-1β、MMP-9及TIMP-1水平的變化
與sham組比較,各模型組肺組織MMP-9及TIMP-1的mRNA表達(dá)量明顯升高(P<0.05或P<0.01),于造模后12~24 h達(dá)高峰(P<0.01),48 h有所下降,但仍高于sham組(P<0.05或P<0.01),見圖3、表3。
與sham組比較,各模型組肺組織MMP-9和TIMP-1蛋白表達(dá)量明顯升高(P<0.01),于造模后12~24 h達(dá)高峰(P<0.01),48 h有所下降,但仍高于sham組(P<0.01),見圖4、5及表3。
表2 各組大鼠血清TNF-ɑ、IL-1β、MMP-9和TIMP-1含量及MMP-9/TIMP-1比值
*P<0.05,**P<0.01vssham group.
Figure 3. The results of RT-PCR for detecting the mRNA expression of MMP-9 and TIMP-1 in control group and MODS model groups. 1: sham group; 2: MODS 6 h group; 3: MODS 12 h group; 4: MODS 24 h group; 5: MODS 48 h group.
圖3各組大鼠肺組織MMP-9和TIMP-1的mRNA表達(dá)
表3 各組大鼠肺組織MMP-9及TIMP-1的mRNA和蛋白表達(dá)的變化
*P<0.05,**P<0.01vssham group.
與sham組比較,造模后6 h肺組織IV-C降低不明顯,12~48 h肺組織IV-C表達(dá)量下降(P<0.05),于造模后24 h降至最低(P<0.01),48 h有所升高,但仍低于sham組(P<0.05),見圖6、表4。
與sham組比較,造模后6 h肺組織IV-C降低不明顯,12~48 h肺組織IV-C蛋白表達(dá)量明顯降低(P<0.05或P<0.01),于造模后24 h降至最低(P<0.01),48 h有所升高,但仍低于sham組(P<0.01),見圖7、表4。
MODS是一種由多種病因引起的臨床表現(xiàn)復(fù)雜、治療難度大且死亡率極高的臨床綜合征,常并發(fā)于重癥感染、胰腺炎及心肺復(fù)蘇等重大打擊后,是危重病醫(yī)學(xué)研究的熱點(diǎn)及難點(diǎn)。MODS發(fā)病機(jī)制復(fù)雜,確切機(jī)制至今尚未完全闡明,主要有缺血再灌注損傷假說、內(nèi)毒素假說、胃腸道假說、炎癥失控假說、二次打擊學(xué)說和炎癥失衡學(xué)說等等[4-5]。然而,無論是何種機(jī)制導(dǎo)致的MODS發(fā)生,持續(xù)失控的炎癥反應(yīng)導(dǎo)致內(nèi)皮功能障礙是MODS的“必經(jīng)之路”。目前國內(nèi)外學(xué)者對內(nèi)皮細(xì)胞損傷學(xué)說研究較多,認(rèn)為內(nèi)皮細(xì)胞的激活和損傷可啟動(dòng)并放大炎癥反應(yīng),促進(jìn)凝血過程,強(qiáng)化免疫細(xì)胞的相互作用,最終導(dǎo)致微循環(huán)閉塞,引起組織低灌注及缺氧,進(jìn)而導(dǎo)致器官功能的損害[6-8]。血管內(nèi)皮包括內(nèi)皮細(xì)胞及細(xì)胞外基質(zhì),而ECM作為血管內(nèi)皮的重要組成部分是炎癥反應(yīng)的靶器官之一,如能證明ECM的損傷也參與MODS的發(fā)生與發(fā)展,將完善MODS的發(fā)病機(jī)制,為臨床上MODS的防治提供新的思路。
Figure 4. Comparison of lung tissue MMP-9 positive staining in control group and MODS model groups (×400). A: sham group; B: MODS 6 h group; C: MODS 12 h group; D: MODS 24 h group; E: MODS 48 h group.
圖4各組大鼠肺組織MMP-9陽性表達(dá)的變化
Figure 5. Comparison of lung tissue TIMP-1 positive staining in control group and MODS model groups (×400). A: sham group; B: MODS 6 h group; C: MODS 12 h group; D: MODS 24 h group; E: MODS 48 h group.
圖5各組大鼠肺組織TIMP-1陽性表達(dá)變化
Figure 6. Comparison of lung tissue IV-C positive staining in control group and MODS model groups (×400). A: sham group; B: MODS 6 h group; C: MODS 12 h group; D: MODS 24 h group; E: MODS 48 h group.
圖6各組大鼠肺組織IV-C陽性表達(dá)變化
Figure 7. The protein expression of IV-C in the lung tissues of the rats with MODS for different times determined by Western blot.
圖7各組大鼠肺組織IV-C蛋白表達(dá)的變化
表4各組大鼠肺組織IV-C的蛋白表達(dá)水平比較
Table 4. The protein expression of IV-C in the lung tissues of each group determined by immunofluorescence and Western blot (Mean±SD.n=3)
GroupIFWestesrnblotSham0.28±0.072.25±0.13MODS6h0.25±0.061.93±0.11MODS12h0.17±0.05*1.22±0.19*MODS24h0.14±0.05**0.53±0.13**MODS48h0.17±0.03*0.80±0.18**
*P<0.05,**P<0.01vssham group.
MMPs家族是自然界中高度保守的一類酶,幾乎能降解ECM的所有成分,現(xiàn)已發(fā)現(xiàn)26種,它們由酶原激活,主要受基因轉(zhuǎn)錄、酶原活化和抑制劑抑制3個(gè)水平上的調(diào)控,參與組織損傷、炎癥反應(yīng)和細(xì)胞凋亡等[9]。MMP-9與MMPs家族的其它成員一樣,是鋅離子依賴性蛋白水解酶,具有廣泛的底物特異性,它主要以明膠和IV-C為底物,因此又稱明膠酶或IV-C酶。MMP-9在正常組織中極少表達(dá),當(dāng)機(jī)體遭受嚴(yán)重感染等打擊后,細(xì)菌釋放的內(nèi)毒素結(jié)合細(xì)胞表面的特異性蛋白形成復(fù)合物,激活單核/巨噬細(xì)胞、淋巴細(xì)胞、中性粒細(xì)胞等炎癥細(xì)胞,合成并釋放大量的炎癥介質(zhì)如TNF-ɑ、IL-1β和IL-6等,從而上調(diào)MMP-9的表達(dá)[10-11]。本實(shí)驗(yàn)采用CLP法建立MODS大鼠模型,造模后各項(xiàng)生化、血?dú)饧把装Y指標(biāo)的改變都提示模型組大鼠發(fā)生明顯的多器官功能損害。本實(shí)驗(yàn)著重研究MODS時(shí)的肺損傷情況,肺組織形態(tài)學(xué)改變也顯示模型組大鼠肺損傷較重。MMP-9的水平可以反映肺基底膜膠原蛋白尤其是IV-C的代謝情況,隨著膠原蛋白合成增加和降解減少,血清中MMP-9的水平會(huì)相應(yīng)升高或降低。在本研究中,模型組血清及肺組織中MMP-9的表達(dá)均明顯高于對照組,提示在MODS肺損傷早期存在IV-C代謝異常。肺是炎癥介質(zhì)的靶器官之一,在各種炎癥介質(zhì)損傷血管內(nèi)皮的過程中,伴隨著細(xì)胞外骨架蛋白IV-C的破壞,從而影響肺組織的結(jié)構(gòu)及功能[12]。本實(shí)驗(yàn)中各模型組肺組織IV-C的含量隨著病情進(jìn)展呈下降趨勢,造模后6 h IV-C的改變不顯著,12~48 h可見其明顯下降,且于24 h降至最低,48 h有所升高,但仍低于對照組。我們考慮,在肺損傷早期基質(zhì)破壞而機(jī)體來不及代償,隨著病情加重機(jī)體防御性修復(fù)機(jī)制使細(xì)胞合成IV-C增加,降解減少,這可能是48 h組肺組織IV-C回升的因素之一。
TIMP-1為MMP-9的內(nèi)源性抑制劑,常由分泌MMP-9的同一細(xì)胞合成。研究發(fā)現(xiàn),TIMP-1不僅可抑制MMP-9酶原活化并使已活化的MMP-9失活,它還作為一種轉(zhuǎn)錄抑制劑通過抑制MMPs基因的轉(zhuǎn)錄,導(dǎo)致基質(zhì)成分合成和降解失衡,引起組織結(jié)構(gòu)重塑[13]。本實(shí)驗(yàn)中,各模型組血清及肺組織中TIMP-1的表達(dá)均明顯升高,在造模后24 h達(dá)高峰,48 h有所下降,但仍高于對照組。提示在MODS肺損傷早期,不僅存在MMP-9的高表達(dá),TIMP-1的升高也可能在MODS發(fā)生與發(fā)展過程中發(fā)揮重要作用,TIMP-1與MMP-9可共同作為MODS早期診斷和預(yù)測預(yù)后的良好指標(biāo)。
綜上所述,我們推測炎癥反應(yīng)可通過誘導(dǎo)血管內(nèi)皮細(xì)胞外基質(zhì)中MMP-9的過表達(dá)而放大血管內(nèi)皮中的炎癥反應(yīng),加重血管內(nèi)皮損傷,造成組織低灌注和缺血缺氧,進(jìn)而導(dǎo)致MODS發(fā)生;MODS條件下TIMP-1應(yīng)激性表達(dá)上調(diào)可能通過抑制MMP-9的活性而減輕MODS的嚴(yán)重程度。靶向抑制血管內(nèi)皮中MMP-9活性或上調(diào)TIMP-1水平可能成為新的MODS有效治療途徑。
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