代玉芳 向詩非 何三山 盛嬌娥 張巍瓊 趙小丹 武清超 向 陽 蘇林沖
(湖北民族學(xué)院附屬民大醫(yī)院風(fēng)濕科風(fēng)濕性疾病發(fā)生與干預(yù)湖北省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,恩施 445000)
系統(tǒng)性紅斑狼瘡(Systemic lupus erythematosus,SLE)是慢性自身免疫性疾病,病情進(jìn)展迅速,多臟器受累,生活質(zhì)量差,病死率高,嚴(yán)重危害患者健康[1]。目前還沒有治愈方法,多為激素聯(lián)用免疫抑制劑。羥氯喹(Hydroxychloroquine,HCQ)目前是臨床治療SLE的一線用藥,應(yīng)用廣泛,作用于免疫系統(tǒng)能夠抑制巨噬細(xì)胞抗原呈遞,抑制淋巴細(xì)胞增殖、免疫復(fù)合物的形成、炎性因子分泌、機(jī)體的免疫應(yīng)答,對(duì)SLE臨床療效較好,但其具體治療機(jī)制仍不確切[2]。
研究報(bào)道顯示,SLE患者存在自身淋巴細(xì)胞失衡,T淋巴細(xì)胞過度活化,引起多克隆B細(xì)胞激活分化增加,且機(jī)體對(duì)過多的免疫細(xì)胞清除能力下降,機(jī)體免疫系統(tǒng)失去平衡,大量自身抗體產(chǎn)生,多器官受累,引起一系列臨床癥狀[3,4]。研究發(fā)現(xiàn),系統(tǒng)性紅斑狼瘡患者外周血淋巴細(xì)胞凋亡率增高,并且與患者疾病的活動(dòng)程度呈現(xiàn)為正相關(guān)關(guān)系[5,6]。因此,在此項(xiàng)研究中,我們以SLE患者外周血單個(gè)核細(xì)胞(Peripheral blood mononuclear cells,PBMCs)為研究對(duì)象,觀察HCQ對(duì)SLE患者PBMCs凋亡的作用,并研究其相關(guān)機(jī)制?,F(xiàn)報(bào)道如下。
1.1材料
1.1.1研究對(duì)象 選取2014年1月至2016年12月我院診斷SLE患者共30例,平均年齡(32±8)歲,女性26例,男性4例。所有患者符合ACR1997的SLE分類標(biāo)準(zhǔn),所有患者均處于活動(dòng)期,均為初發(fā)SLE,未使用免疫抑制劑治療。另外選取我院體檢中心健康患者15例,女性13例,男性2例,近期未出現(xiàn)感染及無免疫相關(guān)病史。本研究經(jīng)我院倫理委員會(huì)批準(zhǔn),并簽署知情同意書。
1.1.2主要試劑和儀器 硫酸羥氯喹片購自賽諾菲公司;MTT、LY294002購自美國Sigma公司;RPMI1640培養(yǎng)基、胎牛血清、胰酶購于美國Gibco公司;Annexin V- FITC/PI雙染流式細(xì)胞檢測(cè)試劑盒購于美國Invitrogen公司;Gallios流式細(xì)胞儀(美國 Beckman公司);SDS- 聚丙烯酰胺、PBST溶液、垂直電泳儀及GIS- 2020D凝膠圖像分析系統(tǒng)購于Sigma公司;bcl- 2、bax、PI3K、pAKt及mTOR抗體購于美國Abcam公司;二抗購自中杉金橋公司。
1.2方法
1.2.1PBMCs的分離培養(yǎng) 晨起空腹采SLE患者和對(duì)照組的靜脈血10 ml,肝素抗凝,加入淋巴細(xì)胞分離液,2 000 r/min離心20 min,收集中間層細(xì)胞,分離PBMCs,5倍體積生理鹽水洗滌, 2 000 r/min離心10 min×2次。獲取PBMCs后加入細(xì)胞培養(yǎng)瓶,用含10%胎牛血清的RPMI1640培養(yǎng)基進(jìn)行培養(yǎng),細(xì)胞濃度為1×106ml-1。
1.2.2MTT法檢測(cè)HCQ對(duì)SLE患者PBMCs細(xì)胞生長抑制的影響 取SLE患者PBMCs細(xì)胞100 μl/孔接種于96孔板,培養(yǎng)過夜后加入不同濃度的羥氯喹進(jìn)行處理。SLE組PBMCs細(xì)胞中HCQ終濃度分別為0、5、25 mg/L,作用于細(xì)胞24、48、72 h,另設(shè)置正常對(duì)照組,加入5 mg/ml MTT每孔20 μl,4 h后棄上清,加入150 μl的DMSO,振蕩后570 nm測(cè)吸光度值。每組6個(gè)復(fù)孔,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
1.2.3Annexin V- FITC/PI流式細(xì)胞儀檢測(cè)HCQ對(duì)SLE患者PBMCs細(xì)胞凋亡率的影響 PBMCs細(xì)胞接種于6孔板,SLE組加入HCQ,終濃度為0 mmol/L及25 mg/L,另取正常對(duì)照組,放入培養(yǎng)箱培養(yǎng)48 h后收集細(xì)胞,按1×106ml-1密度加入結(jié)合緩沖液重懸,按照Annexin V- FITC/PI雙染試劑盒說明進(jìn)行操作,加入5 μl Annexin V- FITC,避光10 min后離心,棄上清再次加入緩沖液重懸,加入10 μl PI染色液,混勻后4℃避光染色15 min,30 min內(nèi)進(jìn)行上機(jī)檢測(cè)。每組3個(gè)復(fù)孔,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
1.2.4Western blot方法檢測(cè)HCQ對(duì)SLE患者PBMCs細(xì)胞BAX、BCL- 2、PI3K、pAKt及mTOR等相關(guān)蛋白的表達(dá)影響 PBMCs細(xì)胞接種于細(xì)胞培養(yǎng)瓶,SLE組加入HCQ,終濃度為0 mmol/L及25 mg/L,另取正常對(duì)照組,放入培養(yǎng)箱培養(yǎng)48 h后收集細(xì)胞,取相同量的樣品,進(jìn)行12%凝膠電泳(SDS- PAGE),轉(zhuǎn)移到PVDF膜上,然后用5%脫脂奶粉過夜,封閉阻斷抗體,一抗稀釋溶液為0.5%BSA溶液,和印跡膜在室溫下孵育2 h,取出用TBST洗膜10 min重復(fù)3次,二抗稀釋溶液為0.5%BSA溶液,印跡膜在室溫下孵育2 h后洗滌液TBST 15 min重復(fù)3次,加入ECL試劑,凝膠成像儀觀測(cè)和統(tǒng)計(jì)分析。
1.2.5PI3K/AKT通路抑制劑 LY294002對(duì)PBMCs生長抑制和凋亡率的影響 為觀察PI3K/AKT通路抑制劑對(duì)HCQ作用的影響,采用SLE組、HCQ 25 mg/L,HCQ 25 mg/L+LY294002 20 μmol/L,加入藥物作用細(xì)胞48 h,再次進(jìn)行MTT實(shí)驗(yàn)及Annexin V- FITC/PI流式細(xì)胞儀實(shí)驗(yàn),檢測(cè)PBMCs生長抑制和凋亡率。實(shí)驗(yàn)方法同前。
2.1HCQ對(duì)體外SLE患者PBMCs細(xì)胞生長抑制作用 采用MTT實(shí)驗(yàn)檢測(cè)各組PBMCs細(xì)胞生長抑制的作用,SLE組比正常對(duì)照組生長抑制率升高,存活率下降(P<0.05);與SLE組相比,HCQ 5和25 mg/L組的生長抑制率顯著增加,存活率明顯降低,具有濃度和時(shí)間依賴性趨勢(shì),見表1、圖1(P<0.05)。
2.2HCQ對(duì)SLE患者的PBMCs細(xì)胞凋亡率的影響 如圖2所示,右上象限為晚期凋亡細(xì)胞,右下象限為早期凋亡細(xì)胞。在正常對(duì)照組外周血單個(gè)核細(xì)胞凋亡率為(2.7±0.4)%,SLE組患者PBMCs細(xì)胞凋亡率為(6.2±1.7)%,HCQ 5 mg/L時(shí)凋亡率為(18.2±1.8)%,HCQ 25 mg/L時(shí)凋亡率(23.5±2.1)%,SLE組、HCQ組與正常對(duì)照組相比PBMCs細(xì)胞凋亡率均有顯著升高,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);HCQ組與SLE組相比PBMCs細(xì)胞凋亡率明顯升高,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);HCQ 25 mg/L 時(shí)凋亡率顯著高于5 mg/L組,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),詳見圖2、3。
2.3HCQ對(duì)SLE患者PBMCs的 PI3K、pAKt、mTOR、BCL- 2、BAX、caspase- 3蛋白表達(dá)的影響 HCQ組、SLE組與正常對(duì)照組比較,PI3K、pAKt、mTOR、bcl- 2的表達(dá)明顯下降,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),bax和caspase- 3的表達(dá)明顯增加,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。HCQ組與SLE組比較,PI3K、pAKt、mTOR、bcl- 2的表達(dá)明顯下降,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),bax和caspase- 3的表達(dá)明顯上升,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),且具有濃度依賴性,見圖4。
表1各組PBMCs細(xì)胞生長抑制率的比較
Tab.1ComparisonofgrowthinhibitionratesofPBMCscellsineachgroup
Groups24h48h72hControl000SLE10.4±1.721)11.3±1.591)12.7±2.291)HCQ5mg/L17.7±3.142)23.6±2.982)28.1±3.382)HCQ25mg/L27.6±3.852)34.9±4.242)40.3±4.762)
Note:Compared with the normal control,1)P<0.01;compared with SLE group,2)P<0.01.
圖1 各組PBMCs細(xì)胞存活率的比較Fig.1 Comparison of cell survival rate of each group
2.4PI3K/AKT通路抑制劑 LY294002對(duì)HCQ導(dǎo)致PBMCs凋亡作用的影響 由圖5、6可知,HCQ組與SLE組相比,PBMCs細(xì)胞存活率下降,凋亡率升高,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);同時(shí)加入HCQ 25 mg/L及PI3K/AKT通路抑制劑 LY294002 20 μmol/L 對(duì)SLE患者PBMCs細(xì)胞作用48 h后,PBMCs細(xì)胞凋亡率及存活率與SLE組相比差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),說明PI3K/AKT通路抑制劑 LY294002對(duì)HCQ導(dǎo)致的SLE患者PBMCs細(xì)胞凋亡具有阻斷作用。
圖2 各組PBMCs細(xì)胞凋亡率的比較Fig.2 Comparison of apoptotic rate of PBMCs cells in each group detected by flow cytometry with Annexin V/PI double stainingNote: A.Control group;B.SLE group;C.HCQ 5 mg/L group;D.HCQ 25 mg/L group.
圖3 羥氯喹對(duì)SLE患者的PBMCs細(xì)胞凋亡率的影響Fig.3 Effects of HCQ on apoptotic rate in PBMCs of SLENote: Compared with HCQ group and SLE group,##.P<0.01;compared with the normal control,**.P<0.01.
圖4 羥氯喹對(duì)SLE患者的PBMCs細(xì)胞蛋白表達(dá)的影響Fig.4 Effects of HCQ on PI3K,pAKt,mTOR,Bcl- 2 protein expressions in PBMCs of SLE
圖5 MTT測(cè)LY294002及羥氯喹對(duì)SLE患者PBMCs細(xì)胞存活率的影響Fig.5 Effects of HCQ alone and HCQ combined with LY294002 on survival rate of PBMCs in SLE patiets detected by MTTNote: Compared with SLE group,**.P<0.01.
圖6 流式細(xì)胞儀測(cè)單用羥氯喹和羥氯喹聯(lián)用LY294002對(duì)SLE患者PBMCs細(xì)胞凋亡率的影響Fig.6 Effects of HCQ and HCQ combined with LY294002 on apoptotic rate of PBMCs in SLE detected by methods of flow cytometryNote: Compared with SLE group,**.P<0.01.
SLE是一種彌漫性結(jié)締組織病,以免疫性炎癥為特異表現(xiàn),累及多臟器多器官,病程遷延,預(yù)后較差,發(fā)病機(jī)制仍不明確,可能是在各種環(huán)境、性激素、藥物、感染或其他因素的作用下,引發(fā)機(jī)體異常免疫反應(yīng),產(chǎn)生大量抗體及免疫復(fù)合物,引起機(jī)體組織受損[7,8]。研究發(fā)現(xiàn),SLE出現(xiàn)T淋巴細(xì)胞免疫應(yīng)答異常,導(dǎo)致B淋巴細(xì)胞介導(dǎo)的體液免疫出現(xiàn)過度活化,免疫系統(tǒng)失去平衡,產(chǎn)生大量抗原抗體復(fù)合物,引起多臟器受累[9,10]。多項(xiàng)研究報(bào)道,SLE患者體內(nèi)免疫細(xì)胞凋亡調(diào)控異常,淋巴細(xì)胞凋亡率升高,尤其以T淋巴細(xì)胞更為顯著,并且與SLE的活動(dòng)程度正相關(guān)[11- 15];本研究發(fā)現(xiàn),SLE患者PBMC細(xì)胞凋亡率較正常對(duì)照組明顯升高(P<0.05),與其他報(bào)道結(jié)果一致。
HCQ目前是自身免疫性疾病的一線用藥,廣泛用于SLE的治療,臨床效果較好[16]。HCQ可以在細(xì)胞溶酶體內(nèi)涵體高濃度積累,使酸性囊泡的pH值增加,抑制酸性蛋白酶的功能,抑制內(nèi)吞作用,阻止抗原抗體復(fù)合物的形成和轉(zhuǎn)運(yùn);抑制NK細(xì)胞活性,抑制外周血單個(gè)核細(xì)胞的活性和功能,阻斷抗原呈遞,減少細(xì)胞因子產(chǎn)生;降低免疫反應(yīng)[17,18]。本研究顯示,HCQ可以誘導(dǎo)SLE患者外周血單個(gè)核細(xì)胞的凋亡,且凋亡率隨著HCQ的濃度增加而增加,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。
PI3K/Akt信號(hào)通路參與多種生理過程,在細(xì)胞生長、發(fā)育、分化和凋亡中起重要作用。活化的P13K激活A(yù)kt,信號(hào)進(jìn)一步轉(zhuǎn)導(dǎo),Akt激酶能調(diào)控下游的mTOR、caspase、BAX/Bcl- 2等多條信號(hào)通路的活性,引起級(jí)聯(lián)反應(yīng),參與細(xì)胞的生理代謝過程[19]。BAX和BCL- 2是常見的促凋亡蛋白和抑制凋亡蛋白[12], caspase- 3是細(xì)胞凋亡級(jí)聯(lián)的關(guān)鍵酶,是細(xì)胞凋亡級(jí)聯(lián)的核心,caspase- 3酶的水解活性超細(xì)蛋白作用可直接誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡,并能損傷DNA加速凋亡[3,20]。本研究顯示,HCQ組、SLE組與正常對(duì)照組比較,PI3K、pAKt、mTOR、bcl- 2的表達(dá)明顯下降(P<0.05),bax和caspase- 3的表達(dá)明顯增加(P<0.05)。HCQ組與SLE組比較,PI3K、pAKt、mTOR、bcl- 2的表達(dá)明顯下降(P<0.05),bax和caspase- 3的表達(dá)明顯上升(P<0.05),提示HCQ能夠通過PI3K/Akt信號(hào)通路促進(jìn)SLE患者PBMCs細(xì)胞的凋亡。同時(shí)加入HCQ和PI3K/AKT通路抑制劑 LY294002,發(fā)現(xiàn)PBMCs細(xì)胞凋亡率及存活率與SLE組相比差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,說明LY294002能夠阻斷HCQ對(duì)SLE患者PBMCs的凋亡作用。這提示HCQ是通過PI3K/Akt信號(hào)通路促進(jìn)SLE患者PBMCs的凋亡。
綜上所述,HCQ能夠通過PI3K/Akt信號(hào)通路促進(jìn)SLE患者體外PBMCs的凋亡。
[1] Apariciosoto M,Sanchezhidalgo M,Cardeno AC,etal.The phenolic fraction of extra virgin olive oil modulates the activation and the inflammatory response of T cells from patients with systemic lupus erythematosus and healthy donors[J].Mol Nutr Food Res,2017,61(8):1080.
[2] Ponticelli C,Moroni G.Hydroxychloroquine in systemic lupus erythematosus (SLE)[J].Expert Opin Drug Saf,2017,16(3):411- 419.
[3] Cai X,Li X,Lin X,etal.Expression of regulatory B cells in peripheral blood of patients with systemic lupus erythematosus[J].Zhonghua Yi Xue Za Zhi,2015,95(17):1310- 1313.
[4] Mortezagholi S,Babaloo Z,Rahimzadeh P,etal.Evaluation of PBMC distribution and TLR9 expression in patients with systemic lupus erythematosus[J].Iran J Allergy Asthma Immunol,2016,15(3):229- 236.
[5] Mikolajczyk TP,Skiba D,Batko B,etal.Characterization of the impairment of the uptake of apoptotic polymorphonuclear cells by monocyte subpopulations in systemic lupus erythematosus[J].Lupus,2014,23(13):1358- 1369.
[6] Du Y,Wu X,Chen M,etal.Elevated semaphorin5A in systemic lupus erythematosus is in association with disease activity and lupus nephritis[J].Clin Exp Immunol,2017,188(2):234- 242.
[7] Chang Y,Sheng Y,Cheng Y,etal.Downregulated expression of LBH mRNA in peripheral blood mononuclear cells from patients with systemic lupus erythematosus[J].J Dermatol,2016,43(1):99- 102.
[8] El- Karaksy SM,Kholoussi NM,Shahin RM,etal.TRAIL mRNA expression in peripheral blood mononuclear cells of Egyptian SLE patients[J].Gene,2013,527(1):211- 214.
[9] Rastin M,Mahmoudi M,Hatef M,etal.T lymphocyte apoptosis in systemic lupus erythematosus patients[J].Iran J Basic Med Sci,2013,16(8):936- 941.
[10] Handono K,Firdausi SN,Pratama MZ,etal.Vitamin A improve Th17 and Treg regulation in systemic lupus erythematosus[J].Clin Rheumatol,2016,35(3):631- 638.
[11] Mikolajczyk TP,Skiba D,Batko B,etal.Characterization of the impairment of the uptake of apoptotic polymorphonuclear cells by monocyte subpopulations in systemic lupus erythematosus[J].Lupus,2014,23(13):1358- 1369.
[12] Zheng W,Wu Y,Huang W.Down- regulation of nectin- 4 inhibits apoptosis in systemic lupus erythematous (SLE)through targeting Bcl- 2/Bax pathway[J].Int J Clin Exp Pathol,2015,8(9):10915- 10921.
[13] Tabasi N,Rastin M,Mahmoudi M,etal.Influence of vitamin D on cell cycle,apoptosis,and some apoptosis related molecules in systemic lupus erythematosus[J].Iran J Basic Med Sci,2015,18(11):1107- 1111.
[14] Cai X,Liu X,Du S,etal.Overexpression of aiolos in peripheral blood mononuclear cell subsets from patients with systemic lupus erythematosus and rheumatoid arthritis[J].Biochem Genet,2016,54(1):73- 82.
[15] Pinna S,Pasella S,Deiana M,etal.Proteomic analysis of human plasma and peripheral blood mononuclear cells in Systemic Lupus Erythematosus patients[J].J Immunol Methods,2017,446:37- 46.
[16] Bajwa A,Khurana G,Kimpel D,etal.Incidental retinal vascular occlusions on hydroxychloroquine screening in patients with systemic lupus erythematosus[J].Int Med Case Rep J,2015,8:121- 126.
[17] Akhavan PS,Su J,Lou W,etal.The early protective effect of hydroxychloroquine on the risk of cumulative damage in patients with systemic lupus erythematosus[J].J Rheumatol,2013,40(6):831- 841.
[18] Rainsford KD,Parke AL,Clifford- Rashotte M,etal.Therapy and pharmacological properties of hydroxychloroquine and chloroquine in treatment of systemic lupus erythematosus,rheumatoid arthritis and related diseases[J].Inflammopharmacology,2015,23(5):231- 269.
[19] Chen Q,Xu T,Li D,etal.JNK/PI3K/Akt signaling pathway is involved in myocardial ischemia/reperfusion injury in diabetic rats:effects of salvianolic acid A intervention[J].Am J Transl Res,2016,8(6):2534- 2548.
[20] Snigdha S,Smith ED,Prieto GA,etal.Caspase- 3 activation as a bifurcation point between plasticity and cell death[J].Neurosci Bull,2012,28(1):14- 24.