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      動植物源蛋白體外消化產(chǎn)物結(jié)構(gòu)性質(zhì)及ACE抑制活性

      2018-02-09 00:54:20梁婷婷佟立濤蒲華寅王麗麗周閑容鞠志遠(yuǎn)周素梅黃峻榕
      食品科學(xué) 2018年4期
      關(guān)鍵詞:白肉紅肉水解

      梁婷婷,佟立濤,蒲華寅,王麗麗,周閑容,鞠志遠(yuǎn),周素梅,黃峻榕,*

      (1.陜西科技大學(xué)食品與生物工程學(xué)院,陜西 西安 710021;2.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品加工研究所,農(nóng)業(yè)部農(nóng)產(chǎn)品加工綜合性重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 100193)

      近年來有研究指出,過多的攝入動物性蛋白(尤其是紅肉)與較高的死亡率相關(guān),然而多攝入植物性蛋白則與死亡風(fēng)險的降低相關(guān)[1]。王金芯[2]和杜春紅[3]報道稱蛋白質(zhì)代謝可引起血壓波動,應(yīng)限制動物蛋白。因此,人們應(yīng)選優(yōu)質(zhì)蛋白,其中植物蛋白質(zhì)可占50%,動物蛋白選用魚肉、雞肉等白肉蛋白。前期研究表明,食物中的蛋白經(jīng)降解成為小分子多肽,且可以直接被人體消化吸收[4],這些小分子多肽具有降血脂、增強(qiáng)免疫力、改善心血管功能和預(yù)防心血管疾病等功效。高血壓是一種常見的心血管疾病,它不僅患病率高,而且常引起嚴(yán)重的心、腦、腎等其他疾病[5]。因此,研究生產(chǎn)高效安全的降血壓肽已經(jīng)成為國內(nèi)外科學(xué)家積極探索的一項(xiàng)重要課題。血管緊張素轉(zhuǎn)化酶(angiotensin conversion enzyme,ACE)在激肽釋放酶-激肽系統(tǒng)中能使舒緩激肽失活,使激肽釋放酶-激肽系統(tǒng)處于抑制狀態(tài),從而導(dǎo)致血管收縮,血壓升高,因此抑制ACE的活性是改善高血壓,從而抑制動脈粥樣硬化等心血管疾病的重要途徑之一。

      自從Ferreira等[6]首次從南美洲蛇毒中發(fā)現(xiàn)天然ACE抑制肽以來,研究學(xué)者們又開始從更多的蛋白源中獲取ACE抑制肽,包括植物蛋白來源,如谷類蛋白:大米蛋白[7]、燕麥蛋白[8]、小麥蛋白[9]和玉米蛋白[10];豆類蛋白:大豆蛋白[11]、豌豆蛋白[12]、綠豆蛋白[13],肉類蛋白來源,如雞肉蛋白[14-15]、豬肉蛋白[16-17]、牛肉蛋白、魚肉蛋白[18]、蠶蛹蛋白[19],乳制品蛋白來源[20],如牛奶中的酪蛋白[21]以及其他蛋白來源。這些蛋白的ACE抑制肽功能活性雖然已有眾多報道,但是關(guān)于動植物源蛋白肽的橫向比較研究以及借此探究不同蛋白來源的ACE抑制肽對于血壓影響的差異尚需明確。

      盡管ACE抑制肽的體外活性研究較多,但是功能肽在進(jìn)入人體后經(jīng)胃腸道消化酶消化,使得肽的空間結(jié)構(gòu)、氨基酸序列、分子質(zhì)量等發(fā)生改變。因此,ACE抑制肽經(jīng)過胃腸道消化酶的作用后其降血壓活性發(fā)生怎樣的變化亦受到研究者關(guān)注。并且,多肽能否穿過小腸壁,能否最后到達(dá)靶器官等都影響著其活性的發(fā)揮。因此,應(yīng)用模擬體外消化模型來評價多肽的ACE抑制活性對于功能肽的開發(fā)更具有現(xiàn)實(shí)意義。Wendy等[22]發(fā)現(xiàn)大豆分離蛋白經(jīng)模擬消化后能直接產(chǎn)生ACE抑制肽。因此,應(yīng)用模擬體外消化模型來評價多肽的ACE抑制活性有著重要的意義。

      本研究采用植物蛋白(大米蛋白、燕麥蛋白、大豆蛋白、豌豆蛋白)、紅肉蛋白(豬肉蛋白、牛肉蛋白)、白肉蛋白(雞肉蛋白),3 類不同來源的蛋白作為原料。在模擬胃腸道消化環(huán)境的基礎(chǔ)上,研究3 類蛋白在消化過程中ACE抑制肽活性變化以及與水解度、分子質(zhì)量分布和氨基酸組成的相互關(guān)系,以探討植物蛋白、紅肉蛋白和白肉蛋白在血壓調(diào)節(jié)功能上的差異以及形成的原因,為蛋白資源的深度開發(fā)、保健食品、降壓藥品的開發(fā)和人們在日常膳食中對蛋白來源的選擇提供科學(xué)的理論依據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1 材料與試劑

      大米蛋白 安徽陸榮生物技術(shù)有限公司;燕麥粉河北石家莊凌峰農(nóng)副產(chǎn)品開發(fā)公司;大豆蛋白、豌豆蛋白 煙臺東方蛋白科技有限公司;雞肉蛋白、豬肉蛋白、牛肉蛋白 山東青島德潤隆食品有限公司;胃蛋白酶、胰蛋白酶 北京索萊寶科技有限公司;ACE、馬尿酰組氨酰亮氨酸(Hip-His-Leu,HHL) 美國Sigma公司;高分子質(zhì)量蛋白質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)品(10~200 kDa)英國GE Healthcare公司;其他試劑均為國產(chǎn)分析純。燕麥蛋白采用堿溶酸沉自制。

      1.2 儀器與設(shè)備

      DGG-9203A電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱 上海森新實(shí)驗(yàn)儀器有限公司;Kieltec Analysister全自動凱氏定氮儀 瑞典FOSS儀器有限公司;U-3010紫外-可見分光光度計(jì)日本日立公司;UB-7 pH計(jì) 美國丹佛儀器公司;TGL-16臺式高速冷凍離心機(jī) 湖南湘一實(shí)驗(yàn)室儀器開發(fā)有限公司;WE-2恒溫水浴振蕩器 天津市歐諾儀器儀表有限公司;DF-101S集熱式恒溫加熱磁力攪拌器鞏義市予華儀器有限責(zé)任公司;LGJ-25C型冷凍干燥機(jī)北京四環(huán)科學(xué)儀器廠有限公司;Mini-Protean電泳儀美國Bio-Rad公司;FluorChem FC2凝膠成像系統(tǒng) 美國Alpha公司;1200高效液相色譜儀 美國安捷倫公司。

      1.3 方法

      1.3.1 原料蛋白基本成分的測定

      采用GB 5009.3—2010《食品中水分的測定》,105 ℃常壓干燥法測定水分含量;采用GB/T 5512—2008《糧油檢驗(yàn) 糧食中粗脂肪含量測定》,索氏抽提法測定脂肪含量;采用GB 5009.4—2010《食品中灰分的測定》,550 ℃灼燒法測定灰分含量;采用GB 5009.5—2010《食品中蛋白質(zhì)的測定》,凱氏定氮法測定蛋白質(zhì)含量。氮轉(zhuǎn)換系數(shù):大米蛋白為5.95;燕麥蛋白為5.83;大豆及豌豆蛋白為6.25;豬肉、牛肉、雞肉蛋白為6.25。其中,蛋白質(zhì)、脂肪、灰分均以干質(zhì)量計(jì)。

      1.3.2 十二烷基磺酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfonate polyacrylamide gel electrophoresis,SDSPAGE)

      采用12%的分離膠和5%的濃縮膠對大米蛋白、燕麥蛋白、大豆蛋白、豌豆蛋白、豬肉蛋白、牛肉蛋白、雞肉蛋白進(jìn)行SDS-PAGE分析,樣品在濃縮膠時電壓70 V,樣品到分離膠之后,電壓升高到120 V,電泳過程保持電流穩(wěn)定。R-250考馬斯亮藍(lán)染色3 h,用脫色液脫色。FluorChemFC2凝膠成像系統(tǒng)拍照。

      1.3.3 蛋白體外模擬胃腸道消化

      體外消化過程參照Wendy等[22]的方法,并略作修改。將1 g原料蛋白中加入20 mL的蒸餾水配制成質(zhì)量分?jǐn)?shù)為5%的溶液,煮沸2 min,冷卻后,用1 mol/L的鹽酸溶液調(diào)pH值至2.0,加入0.04 g胃蛋白酶(占底物質(zhì)量的4%),37 ℃恒溫反應(yīng)1 h;用0.9 mol/L的NaHCO3溶液將pH值調(diào)至5.3,再用1 mol/L的NaOH溶液調(diào)pH值至7.0,加入0.04 g胰蛋白酶(占底物質(zhì)量的4%),37 ℃恒溫反應(yīng)2 h,沸水浴10 min終止反應(yīng),分別在消化過程中(0、30、60、90、120、180 min)取樣。冷卻后離心(14 000 r/min,10 min)收集上清液,隨后冷凍干燥于4 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

      1.3.4 水解度的測定

      采用鄰苯二甲醛法[23],將5 mL試管中加入3.00 mL鄰苯二甲醛溶液,再加入400 μL稀釋至一定倍數(shù)的水解上清液,室溫條件下反應(yīng)2 min后在波長340 nm處測定光密度。同時用絲氨酸標(biāo)準(zhǔn)溶液(0.951 6 mmol/L)做參考,用水做空白實(shí)驗(yàn)。按公式(1)計(jì)算每克蛋白質(zhì)中絲氨酸氨基含氨基的量:

      式中:Serine NH2為每克蛋白質(zhì)中含絲氨酸氨基的量/(mmol/g);X為樣品質(zhì)量/g;P為樣品中的蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)/%;N為稀釋倍數(shù);V為上清液體積/L。

      按公式(2)計(jì)算水解度:

      式中:htot、β、α均為常數(shù);htot為每克原料蛋白的肽鍵毫摩爾數(shù)/(mmol/g);大米蛋白、燕麥蛋白β、α分別為0.4和1,htot=7.72;大豆蛋白,豌豆蛋白β、α分別為0.342和0.970,htot=7.8;豬肉蛋白、牛肉蛋白、雞肉蛋白β、α分別為0.40和1.00,htot=7.6。

      1.3.5 ACE抑制活性的測定

      用含有0.3 mol/L NaCl的0.1 mol/L硼酸鹽緩沖液(pH 8.3)將HHL配成5 mmol/L溶液。將80 μL的5.0 mmol/L HHL溶液和20 μL的樣品加入到1.5 mL EP管中,在37 ℃反應(yīng)5 min后,再加入20 μL活力為0.1 U/mL ACE溶液,旋渦混勻后在37 ℃反應(yīng)30 min,用200 μL的1.0 mol/L鹽酸溶液終止反應(yīng)。同時用等量硼酸鹽緩沖液代替樣品做空白實(shí)驗(yàn)。

      采用高效液相色譜法測定馬尿酸的含量[24]。色譜條件:ZORBAX Eclipse Plus-C18色譜柱(150 mm×4.6 mm);流動相為乙腈-水-三氟乙酸溶液(50∶50∶0.05,V/V);檢測波長228 nm;流速0.4 mL/min;柱溫30 ℃;進(jìn)樣量10 μL。按公式(3)計(jì)算ACE抑制率:

      式中:A為含有樣品和ACE反應(yīng)液的峰面積;B為不含樣品,含有ACE反應(yīng)液的峰面積。

      1.3.6 胃蛋白酶、胰蛋白酶消化產(chǎn)物的分子質(zhì)量分布

      采用高效液相色譜法測定[25]。將胃蛋白酶和胰蛋白酶消化以后的上清液稀釋一定倍數(shù)后,用0.45 μm微孔過濾膜過濾后上色譜柱。色譜條件:TSK gel 2000SWXL色譜柱(300 mm×7.8 mm),流動相為乙腈-水-三氟乙酸溶液(45∶55∶0.1,V/V);檢測波長220 nm;流速0.5 mL/min;柱溫30 ℃;進(jìn)樣量10 μL。分子質(zhì)量校正標(biāo)準(zhǔn)品:乙氨酰氨-乙氨酰氨-乙氨酰氨(mw=189 Da)、乙氨酰氨-乙氨酰氨-精氨酸(mw=451 Da)、桿菌肽(mw=1450 Da)、抑肽酶(mw=6 500 Da)和細(xì)胞色素C(mw=12 500 Da)。

      1.3.7 蛋白消化產(chǎn)物的氨基酸組成分析

      采用酸水解法,參照GB/T 5009.124—2003《食品中氨基酸的測定》。稱取40~60 mg酶解后冷凍干燥的樣品,將10 mL 6 mol/L鹽酸溶液加入到水解管中,用氮?dú)獯蹈珊笊w好蓋子,放入到110 ℃恒溫干燥箱內(nèi),水解24 h以后,取出冷卻。打開水解管,將水解液過濾后,用純凈水將水解管沖洗3 次,液體全部轉(zhuǎn)移到50 mL容量瓶,定容后取1 mL濾液,氮?dú)獯蹈桑? mL 0.02 mol/L鹽酸復(fù)溶。使用氨基酸自動分析儀測定氨基酸組成。

      其中,色氨酸采用高效液相色譜法測定[26]。取70~80 mg冷凍干燥的樣品,將1.5 mL 4 mol/L氫氧化鈉溶液加入到離心管中,用鑷子將離心管放入到水解管中,用氮?dú)獯蹈珊笊w好蓋子,放入到110 ℃恒溫干燥箱內(nèi),水解24 h以后,取出冷卻。打開水解管,將1.14 mL 6 mol/L鹽酸溶液加入到離心管中,用純凈水將離心管和水解管沖洗3 次,調(diào)pH 4~5,液體全部轉(zhuǎn)移到50 mL容量瓶,定容后取1 mL濾液,用0.45 μm微孔過濾膜過濾后上色譜柱。色譜條件:Agela Technologies Innoval-C18色譜柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動相為甲醇-乙酸鈉溶液(5∶95,V/V);檢測波長280 nm,流速1 mL/min;柱溫25 ℃;進(jìn)樣量20 μL。

      1.4 數(shù)據(jù)處理

      2 結(jié)果與分析

      2.1 蛋白的基本成分分析

      對植物蛋白(大米、燕麥、大豆、豌豆)、紅肉蛋白(豬肉、牛肉)和白肉蛋白(雞肉)3 類蛋白樣品的基本成分進(jìn)行了分析,如表1所示。3 類蛋白樣品的蛋白質(zhì)質(zhì)量分?jǐn)?shù)均達(dá)到85%以上,高于謝柳倩等[27]研究ACE抑制活性中所用蜈蚣蛋白的含量,且對ACE抑制活性影響較大的脂肪和灰分質(zhì)量分?jǐn)?shù)相對較低,較高的純度可保證不同蛋白的ACE抑制活性比較研究中實(shí)驗(yàn)結(jié)果的準(zhǔn)確性。

      表1 植物、紅肉和白肉3 類原料蛋白的基本組成(n=3)Table1 Proximate composition of plant, red meat and white meat proteins (n= 3)

      2.2 蛋白的SDS-PAGE分析

      圖1 植物、紅肉和白肉3 類蛋白的SDS-PAGE圖譜Fig. 1 SDS-PAGE patterns of plant, red meat and white meat proteins

      通過對3 類蛋白進(jìn)行了SDS-PAGE分析,如圖1所示。植物蛋白分子質(zhì)量分布范圍在10~100 kDa之間,紅肉和白肉蛋白分子質(zhì)量分布范圍在30~200 kDa之間。其中,大米蛋白最大分子質(zhì)量為97 kDa,3 條帶在60~80 kDa之間,較寬且顏色較深,說明在這3 個條帶分子質(zhì)量大小的蛋白含量較大,分子質(zhì)量最小的在10~15 kDa之間,該結(jié)果與相關(guān)報道一致[28];燕麥蛋白分子質(zhì)量主要5 個條帶分布,分別是13~18、31~37、50~60 kDa以及60~66 kDa左右,其中最大分子質(zhì)量大概在70~72 kDa之間,與王霞霞等[29]報道的一致;大豆和豌豆蛋白分子量質(zhì)分布范圍較廣,最大分子質(zhì)量為85 kDa和83 kDa,最小分子質(zhì)量為10 kDa左右,在65~80、50、25~40 kDa之間也有條帶分布,與陳振家等[30]報道的一致;豬肉、牛肉和雞肉蛋白,出現(xiàn)電泳條帶的位置相似,第1個條帶在30 kDa左右,第2個條帶在70~80 kDa之間,而且大于200 kDa的蛋白含量較多,與方紹慶等[31]報道一致。由3 類蛋白的電泳條帶分析可知,在體外消化前,紅肉和白肉蛋白分子質(zhì)量顯著高于植物蛋白。

      2.3 蛋白體外模擬胃腸消化產(chǎn)物的水解度變化

      圖2 體外模擬胃腸消化酶解3 類蛋白的水解度變化Fig. 2 Changes in degree of hydrolysis of plant, red meat and white meat proteins during stimulated in vitro gastrointestinal digestion

      蛋白質(zhì)的水解度,即測定生成的有效蛋白肽。圖2A為植物蛋白、紅肉蛋白和白肉蛋白被胃蛋白酶、胰蛋白酶消化水解的進(jìn)程曲線。前60 min為胃蛋白酶水解階段,60~180 min為胰蛋白酶水解階段,蛋白消化液的水解度隨消化時間的延長而增加,到120 min左右,各蛋白消化產(chǎn)物基本達(dá)到最高水解度,之后變化較緩慢。這是因?yàn)殡S著消化反應(yīng)的進(jìn)行,消化產(chǎn)物濃度增大,底物濃度減小,蛋白酶的活性受到抑制等綜合因素所致[32]。由圖2B、C顯示可知,3 類不同來源蛋白經(jīng)過體外消化最終水解度有一定的差別,白肉蛋白水解度極顯著高于紅肉蛋白和植物蛋白(P<0.01),在3 h內(nèi)其最大水解度可達(dá)44.04%,紅肉蛋白次之,植物蛋白的水解度較低,最低僅為20.15%,這與報道中的一致,即僅從消化性方面看,紅肉和白肉蛋白比植物蛋白更易消化[33],這是因?yàn)橹参锏鞍淄庵苡欣w維薄膜的包裹而難以消化,故紅肉和白肉蛋白比植物蛋白更易消化和吸收。

      2.4 蛋白體外模擬胃腸道消化產(chǎn)物的ACE抑制活性變化

      圖3 體外模擬胃腸消化酶解3 類蛋白的ACE抑制活性變化Fig. 3 Changes in ACE inhibitory activity of plant, red meat and white meat proteins during in vitro gastrointestinal digestion

      由圖3A、B可知,3 類不同來源蛋白在不同消化時間段的變化趨勢是一致的,且其ACE抑制活性的產(chǎn)生主要集中在胃蛋白酶階段,即在60 min內(nèi)的消化產(chǎn)物快速產(chǎn)生ACE抑制活性。加入胰蛋白酶后,3 類蛋白的ACE抑制活性都顯著降低,90 min以后ACE抑制活性變化較平緩,與劉志偉等[34]對大豆蛋白體外消化酶解產(chǎn)物ACE抑制活性研究相一致。由圖3C可知,植物蛋白消化產(chǎn)物抑制ACE的活性極顯著高于紅肉蛋白(P<0.01),白肉蛋白消化產(chǎn)物抑制ACE的活性極顯著高于紅肉蛋白(P<0.01),植物蛋白與白肉蛋白無顯著性差異(P>0.05)。以上結(jié)果表明,動植物蛋白在血壓調(diào)節(jié)功能上的差異可能與其ACE抑制活性的差異相關(guān)。

      2.5 胃蛋白酶和胰蛋白酶消化產(chǎn)物的分子質(zhì)量分布

      圖4 體外模擬胃腸消化1 h和3 h酶解產(chǎn)物的分子質(zhì)量分布Fig. 4 Molecular weight distribution profiles of peptides after in vitro gastrointestinal digestion for 1 h and 3 h

      如圖4所示,3 類蛋白經(jīng)胃蛋白酶和胰蛋白酶消化以后,消化液中的組分其分子質(zhì)量分布廣泛。胃蛋白酶消化產(chǎn)物分子質(zhì)量集中在3 000 Da以下,經(jīng)胰蛋白酶消化以后,3 類蛋白消化產(chǎn)物的分子質(zhì)量分布是相似的,分子質(zhì)量范圍在1 000 Da以下的多肽混合物的含量最高。其中,植物蛋白消化產(chǎn)物大于5 000 Da的多肽占5%左右,紅肉和白肉蛋白消化產(chǎn)物大于5 000 Da的多肽占比不到1%,該結(jié)果與模擬體外消化的水解度變化結(jié)果一致,即水解度越大,它們的分子質(zhì)量越小。隨著水解度的增大,分子質(zhì)量的減小,3 類蛋白消化產(chǎn)物的ACE活性抑制率均相應(yīng)增大,與Hyun[35]和Oshima[36]等報道的一致,即具有ACE抑制活性的肽分子質(zhì)量大小集中在1 500 Da左右。盡管肉類蛋白的分子質(zhì)量小、水解度高,但是同等濃度條件下的ACE抑制活性卻弱于植物蛋白,表明ACE活性差異可能受分子質(zhì)量以外的其他因素影響。

      2.6 蛋白消化產(chǎn)物氨基酸組成的變化

      近年來,國內(nèi)外研究者從很多不同膳食蛋白中酶解得到具有ACE抑制活性的多肽,相關(guān)研究得出,若序列上存在芳香性和疏水性氨基酸殘基的多肽,其具有較高ACE抑制活性[19]。因此,本研究除上述的分子質(zhì)量外,還關(guān)注了消化產(chǎn)物中相關(guān)氨基酸的含量。

      圖5 體外模擬胃腸消化酶解3 類蛋白的芳香性氨基酸和疏水性氨基酸含量Fig. 5 Contents of aromatic and hydrophobic amino acids of plant, red meat and white meat proteins after in vitro gastrointestinal digestion

      蛋白經(jīng)過胃蛋白酶和胰蛋白酶消化后產(chǎn)物的芳香性氨基酸組成如圖5A、B所示,植物蛋白肽中的芳香性氨基酸(Tyr、Phe和Trp)含量極顯著高于紅肉和白肉蛋白肽(P<0.01),白肉蛋白肽的芳香性氨基酸含量顯著高于紅肉蛋白肽(P<0.05)。此外,由圖5C、D可知,植物蛋白肽中的疏水性氨基酸含量極顯著高于紅肉蛋白肽(P<0.01),白肉蛋白肽的疏水性氨基酸含量顯著高于紅肉蛋白肽(P<0.05),但植物蛋白肽與白肉蛋白肽無顯著性差異(P>0.05)。由這一結(jié)果可以看出,3 類蛋白中消化產(chǎn)物的疏水性氨基酸含量越高,則ACE抑制活性越高,表明高疏水性氨基酸含量可能是植物蛋白肽具有高的ACE抑制活性的主要原因之一。

      但是,燕麥蛋白與豌豆蛋白的芳香性和疏水性氨基酸含量低于紅肉蛋白,ACE抑制活性反而高于紅肉蛋白,因此,芳香族和疏水性氨基酸含量還不能完全解釋植物蛋白的ACE抑制活性高于紅肉的原因,這可能是由于不同蛋白來源的功能活性肽通過其他的作用方式發(fā)揮ACE抑制活性以及血壓調(diào)節(jié)功能的作用,例如植物蛋白中存在更多的特定的、亦或活性更高的ACE抑制功能肽段等,但具體原因仍有待于深入研究。

      3 結(jié) 論

      植物蛋白與白肉蛋白消化產(chǎn)物的ACE抑制活性極顯著高于紅肉蛋白(P<0.01),這一結(jié)果與植物蛋白源的血壓調(diào)節(jié)功能高于紅肉的前人研究結(jié)果相一致,表明動植物蛋白在血壓調(diào)節(jié)功能上的差異可能與其ACE抑制活性的大小直接相關(guān)??傮w上看,植物蛋白消化產(chǎn)物的疏水性氨基酸含量極顯著高于紅肉蛋白肽(P<0.01),這一結(jié)果表明高疏水性氨基酸含量是植物蛋白肽具有比較高的ACE抑制活性的主要原因之一。另一方面,燕麥蛋白與豌豆蛋白的芳香族和疏水性含量低于紅肉蛋白肽,而ACE抑制活性高于紅肉蛋白肽,因此單純從芳香族和疏水性氨基酸含量解釋不同蛋白源蛋白肽的ACE抑制活性乃至血壓調(diào)節(jié)功能的差異仍不盡然,具體的作用機(jī)制仍有待明確。

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