馬媛春, 劉 慧, 薛曉輝, 程宗明
(1.江蘇省農(nóng)業(yè)科學(xué)院果樹研究所/江蘇省高效園藝作物遺傳改良重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇南京 210014;2.南京農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝學(xué)院,江蘇南京 210095; 3.江蘇省海安市林果技術(shù)推廣站,江蘇海安 226600)
黃連木(PistaciachinensisBunge),英文名為Chinese pistache,屬于漆樹科黃連木屬,別稱黃楝樹、黃連茶、楷樹、藥樹、藥瘤樹等,其樹干挺拔,樹形美觀,樹葉繁茂秀麗,可作為庭陰樹、行道樹及觀賞風(fēng)景樹[1]。此外,黃連木也是一種優(yōu)良的木材、藥用和油料樹種[2]。近年來,人們對(duì)黃連木的研究主要集中于黃連木作為能源樹種的經(jīng)濟(jì)價(jià)值、作為彩色葉樹種擁有的景觀價(jià)值,以及作為藥用植物的社會(huì)價(jià)值。
常規(guī)的黃連木繁殖方法有籽播育苗、嫁接和扦插等,然而由于黃連木種子外被蠟質(zhì),屬于深根類型,直接播種發(fā)芽較為困難,需要對(duì)種子進(jìn)行脫蠟處理,然后再進(jìn)行低溫層積處理[3-6]。嫁接和扦插繁殖對(duì)于環(huán)境要求較高,繁殖率較低,已不能滿足消費(fèi)者的需求。
目前,由于江蘇省東部沿海灘涂鹽堿濃度較高,極少有觀賞植物能夠正常生長,為了改變這一現(xiàn)狀,應(yīng)加大力度引進(jìn)具有抗鹽能力的景觀植物。本研究所試種的黃連木來自美國海濱弗吉尼亞州,具有一定的耐鹽能力。組織培養(yǎng)技術(shù)能夠克服常規(guī)繁殖方法繁殖系數(shù)低的缺點(diǎn),從而降低培養(yǎng)成本,提高經(jīng)濟(jì)效益,實(shí)現(xiàn)良種快繁并達(dá)到產(chǎn)業(yè)化發(fā)展的客觀需求。
本試驗(yàn)所用材料為一年生黃連木實(shí)生苗(種子來自美國海濱弗吉尼亞州)。
1.2.1 外植體的準(zhǔn)備與培養(yǎng) 選取長勢優(yōu)良且健壯的黃連木植株的當(dāng)年生嫩枝,去除葉片,用流水沖洗2 h左右,剪成15~20 cm長的帶腋芽的莖段備用(圖1)。在超凈工作臺(tái)上對(duì)外植體進(jìn)行滅菌處理,先將莖段剪成1~2 cm左右(帶1個(gè)腋芽)的若干小段,用70%乙醇溶液消毒30 s,其間不斷搖晃,之后用無菌水沖洗3次,然后用0.1%氯化汞溶液消毒 10 min,消毒后立即用無菌水沖洗5次,最后用無菌濾紙吸干材料表面的水分,準(zhǔn)備好單芽莖段用于接種[7]。
1.2.2 黃連木腋芽的誘導(dǎo)培養(yǎng) 將已處理的無菌莖段斜插于腋芽誘導(dǎo)培養(yǎng)基上進(jìn)行誘導(dǎo)培養(yǎng)。所選取的誘導(dǎo)培養(yǎng)基以MS、WPM為基本培養(yǎng)基,并添加不同濃度的6-芐氨基腺嘌呤(6-BA)、萘乙酸(NAA)、吲哚丁酸(IBA),共組成6種培養(yǎng)基(表1)。將外植體接種到6種培養(yǎng)基上,每瓶2個(gè),每種培養(yǎng)基接種20瓶。于黑暗環(huán)境下培養(yǎng),以減少褐化現(xiàn)象,培養(yǎng)溫度為(25±2) ℃,培養(yǎng)3 d后置于光照條件下培養(yǎng)[8]。培養(yǎng)基中蔗糖濃度均為30 g/L,瓊脂濃度為5.6 g/L,pH值為5.8,光照時(shí)間為14 h/d,光照度為100 μmol/(m2·s),培養(yǎng)濕度為70%~80%。觀察離體芽的誘導(dǎo)培養(yǎng)情況,20 d后進(jìn)行統(tǒng)計(jì)調(diào)查。
調(diào)查統(tǒng)計(jì)所用的相關(guān)公式:萌發(fā)率=(萌發(fā)外植體數(shù)/接種外植體數(shù))×100%;褐化率=(褐化莖段數(shù)/接種莖段數(shù))×100%;分化率=[分化數(shù)/(接種數(shù)-褐化數(shù)-污染數(shù))]×100%。
表1 6種培養(yǎng)基組成成分
1.2.3 叢生芽的繼代增殖培養(yǎng) 將在誘導(dǎo)培養(yǎng)基上已經(jīng)誘導(dǎo)培養(yǎng)20 d后的嫩芽剪切成1 cm左右的帶芽莖段,進(jìn)行叢生芽誘導(dǎo)。以MS、WPM及1/2 WPM為基本培養(yǎng)基,附加不同濃度的6-BA、NAA,每個(gè)處理接種20瓶,每瓶接種1個(gè)莖段,重復(fù)3次。培養(yǎng)30 d后對(duì)材料的增殖系數(shù)、苗高及組培苗的生長狀況進(jìn)行觀察并作統(tǒng)計(jì)分析。以上培養(yǎng)基中蔗糖濃度為30 g/L,瓊脂濃度為5.6 g/L,pH值均為5.8,培養(yǎng)溫度為(25±2) ℃,光照時(shí)間為14 h/d,光照度為100 μmol/(m2·s)。
調(diào)查增殖系數(shù)、苗高、生長形態(tài)等,相關(guān)公式如下:增殖系數(shù)=調(diào)查時(shí)的芽數(shù)-接種芽數(shù);苗高=調(diào)查時(shí)的苗高-接種時(shí)的苗高。
1.2.4 組培苗的生根培養(yǎng) 以繼代培養(yǎng)的組培苗為試驗(yàn)材料,選取生長健壯的組培苗,將增殖生成的叢生芽分株,每個(gè)芽為1株苗,接種到生根培養(yǎng)基上。每個(gè)培養(yǎng)基接種20株,重復(fù)3次,50 d后開始調(diào)查統(tǒng)計(jì)每種培養(yǎng)基的生根苗數(shù)及平均生根數(shù)。培養(yǎng)基中蔗糖濃度為30 g/L,瓊脂濃度為 5.6 g/L,pH值為5.8,培養(yǎng)溫度為(25±2) ℃,光照時(shí)間為14 h/d,光照度為100 μmol/(m2·s)。
1.2.5 生根組培苗的馴化與移栽
1.2.5.1 馴化 將生根良好、根系健壯的組培苗瓶蓋擰松,放置在無菌環(huán)境下3 d后,每2 d加入微量無菌水,光照度設(shè)為100 μmol/(m2·s),光照時(shí)間設(shè)為12 h/d。并且逐漸開蓋,第10天時(shí)徹底開蓋,并及時(shí)補(bǔ)充適當(dāng)水分(無菌水)。
1.2.5.2 移栽 將未污染、長勢良好的馴化組培苗取出,用無菌水沖洗附著在根系上的培養(yǎng)基,勿傷及根部,接著修剪基部葉片,保留頂端長勢好的復(fù)葉3~5張,然后移栽至基質(zhì)中,放入人工氣候培養(yǎng)箱內(nèi)進(jìn)行培養(yǎng)。所選基質(zhì)為蛭石、草炭土、珍珠巖,其體積比為9 ∶3 ∶1,放入高壓蒸汽滅菌鍋內(nèi)于 121 ℃ 滅菌30 min。人工氣候培養(yǎng)箱中的溫度為25 ℃,相對(duì)濕度為80%,光照度為100 μmol/(m2·s),光照時(shí)間為 12 h/d。移栽7 d后進(jìn)行相關(guān)數(shù)據(jù)的統(tǒng)計(jì)。
采用Excel和SPSS軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析。
通過預(yù)試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),采用MS、WPM、1/2 WPM為基本培養(yǎng)基時(shí),未取得腋芽萌發(fā)效果。由此可以看出,基本培養(yǎng)基不適合用于黃連木的腋芽萌發(fā)試驗(yàn)。在預(yù)試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,添加細(xì)胞分裂素類生長調(diào)節(jié)劑6-BA以及細(xì)胞生長素NAA和IBA。由表2可以明顯看出,在黃連木腋芽誘導(dǎo)時(shí)期,基本培養(yǎng)基為MS的3種培養(yǎng)基褐化率較高,萌發(fā)率極低,基本無叢生芽;當(dāng)培養(yǎng)基為1/2 WPM+1.5 mg/L 6-BA+0.10 mg/L NAA+0.10 mg/L IBA時(shí),叢生芽較多,葉色較嫩綠,節(jié)間較長,生長粗壯,分化率達(dá)到91.7%(圖2)。通過6種培養(yǎng)基的對(duì)比可知,影響黃連木腋芽誘導(dǎo)的因素主次順序?yàn)榛九囵B(yǎng)基>細(xì)胞分裂素>細(xì)胞生長素,因此可見,細(xì)胞分裂素類生長調(diào)節(jié)劑6-BA的濃度對(duì)分化率的影響較大,當(dāng)6-BA濃度達(dá)到 1.5 mg/L 時(shí),分化率最高,長勢最好。
表2 不同培養(yǎng)基對(duì)黃連木腋芽萌發(fā)的影響
在黃連木繼代增殖培養(yǎng)前期,經(jīng)過不間斷的反復(fù)試驗(yàn),發(fā)現(xiàn)在細(xì)胞分裂素與細(xì)胞生長素共同作用的情況下,叢生芽的增殖數(shù)較多,當(dāng)細(xì)胞分裂素類生長調(diào)節(jié)劑6-BA的濃度達(dá)到3.5 mg/L時(shí),增殖倍數(shù)最高。由表3可以看出,在黃連木繼代增殖培養(yǎng)時(shí)期,在3種培養(yǎng)基上培養(yǎng)30 d后,芽的增殖倍數(shù)和生長情況存在差異,在WPM+3.5 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA培養(yǎng)基上的叢生芽較少,節(jié)間短,畸形苗多,玻璃化嚴(yán)重;在1/2 WPM+3.5 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA培養(yǎng)基上的叢生芽密集,微型化,畸形苗較多,玻璃化嚴(yán)重(圖3); 而在培養(yǎng)基MS+3.5 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA 培養(yǎng)基上的叢生芽較多,苗生長健壯,生長速度較快(圖4)。綜合這3種培養(yǎng)基的研究結(jié)果以及本試驗(yàn)的前期研究可以看出,除了細(xì)胞分裂素類和生長素類生長調(diào)節(jié)劑的用量配比對(duì)黃連木繼代增殖比較重要以外,基本培養(yǎng)基的選用對(duì)于黃連木繼代增殖也極為重要。經(jīng)過3次重復(fù)試驗(yàn)篩選出的適宜黃連木繼代增殖培養(yǎng)的最佳培養(yǎng)基配方為MS+3.5 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA。
表3 不同培養(yǎng)基對(duì)黃連木繼代增殖的影響
在試驗(yàn)前期,采用MS為基本培養(yǎng)基進(jìn)行生根培養(yǎng),未取得生根效果。隨后,以1/2 MS、WPM、1/2 WPM為基本培養(yǎng)基進(jìn)行試驗(yàn),結(jié)果表明,以WPM為基本培養(yǎng)基時(shí)無生根效果,因此可以得出結(jié)論:降低培養(yǎng)基無機(jī)鹽濃度,有利于不定根的發(fā)生[9]。外源生長素對(duì)生根有一定的促進(jìn)作用,但外當(dāng)源生長素的濃度超過一定限度時(shí),組培苗的生長又呈下降趨勢。當(dāng)以1/2 MS為基本培養(yǎng)基時(shí),單獨(dú)添加不同濃度的NAA誘導(dǎo)黃連木苗生根, 發(fā)現(xiàn)其生根效果不佳;當(dāng)NAA濃度為0.02 mg/L時(shí),生根率最高;而當(dāng)NAA濃度在0.2 mg/L及以上時(shí),基本無發(fā)根(表4)。
在以上試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,添加IBA與NAA組合作用,繼續(xù)篩選適合生根的培養(yǎng)基。由表5可以看出,IBA能夠較好地誘導(dǎo)生根,但是濃度大于1 mg/L時(shí),效果下降;基本培養(yǎng)基為1/2 WPM時(shí)比1/2 MS的生根效果好。培養(yǎng)基為1/2 WPM+0.02 mg/L NAA+1 mg/L IBA時(shí)生根效果最佳(圖5),培養(yǎng)基為1/2 WPM+0.02 mg/L NAA+2 mg/L IBA時(shí),根系粗短,不適宜移栽(圖6)。
表4 不同濃度NAA對(duì)生根的影響
表5 不同培養(yǎng)基生根誘導(dǎo)的影響
將黃連木生根組培苗在馴化10 d后移栽,然后于人工氣候培養(yǎng)箱中放置20 d,再過渡到自然環(huán)境下生長,苗木移栽成活率可達(dá)67%以上(圖7)。
黃連木組織培養(yǎng)難度較大,在初代階段的褐化率較高,燒苗現(xiàn)象嚴(yán)重;在繼代時(shí)期,組培苗玻璃化嚴(yán)重,易產(chǎn)生畸形苗,從而影響試驗(yàn)的進(jìn)行;在誘導(dǎo)生根階段,大部分根系呈黑色,且組培苗生長緩慢,總體生根率不高[10]。利用黃連木莖段進(jìn)行組培快繁,篩選出的最佳腋芽誘導(dǎo)培養(yǎng)基為1/2 WPM+1.5 mg/L 6-BA+0.1 mg/L NAA+0.1 mg/L IBA。在繼代增殖時(shí)期,MS+3.5 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA培養(yǎng)基的增殖效果最佳,生根效果以1/2 WPM+0.02 mg/L NAA+1.0 mg/L IBA配方的培養(yǎng)基較好。
本試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),基本培養(yǎng)基的選用對(duì)于黃連木初代腋芽誘導(dǎo)極為重要;細(xì)胞分裂素類生長調(diào)節(jié)劑與細(xì)胞生長素的配比是影響黃連木繼代增殖的重要因素;影響黃連木生根培養(yǎng)的因素很多,包括無機(jī)鹽濃度、是否添加細(xì)胞分裂素、不同細(xì)胞生長素的作用、多種細(xì)胞生長素的協(xié)調(diào)作用配比等[11-12]。
黃連木組培快繁體系的建立,大大縮短了繁殖周期,降低了生產(chǎn)成本,也能夠解決種子繁殖所帶來的觀賞形態(tài)不一的缺點(diǎn)。本試驗(yàn)建立了可供海濱生長的黃連木從腋芽誘導(dǎo)、增殖、生根、煉苗到移栽的快繁體系,從而為黃連木工廠化生產(chǎn)提供了理論依據(jù)。