何盼盼,聶小保*,蔣昌波,唐韻子,隆院男,徐 超 (1.長沙理工大學(xué)水利工程學(xué)院,湖南 長沙410114;2.水沙科學(xué)與水災(zāi)害防治湖南省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,湖南 長沙 410114)
劍水蚤是水源水體中常見的橈足類浮游動(dòng)物.當(dāng)水體發(fā)生富營養(yǎng)化時(shí),劍水蚤可大量孳生并隨原水進(jìn)入自來水廠[1].由于劍水蚤體型較小,且遷移運(yùn)動(dòng)能力強(qiáng),一旦進(jìn)入水廠,以“混凝-沉淀-過濾”為代表的常規(guī)凈水工藝難以對(duì)其實(shí)現(xiàn)有效攔截,劍水蚤將在供水管網(wǎng)中出現(xiàn),引發(fā)供水水生生物和微生物風(fēng)險(xiǎn)[2-4].近年來,在我國屢有自來水中劍水蚤檢出報(bào)道[5-7].
自來水廠常采用積極的強(qiáng)化混凝、強(qiáng)化過濾等策略來提高對(duì)劍水蚤的攔截率,但效果有限.Van Lieverloo等[8]對(duì)荷蘭34個(gè)自來水廠的調(diào)研表明,即便采用強(qiáng)化策略,出水廠中劍水蚤的平均檢出密度仍高達(dá)1.39ind./m3;優(yōu)化混凝沉淀和過濾操作條件下,劍水蚤攔截去除率也僅有56.7%[9];Adam等[10]認(rèn)為過濾對(duì)劍水蚤去除效果有限的主要原因在于,反沖洗過程中濾層存在難以流化的死區(qū).因此,作為自來水廠最后一道工藝操作,消毒單元對(duì)劍水蚤的滅活就顯得格外重要.
次氯酸鈉/液氯是自來水廠常用消毒劑,具有滅活效率高、滅活效果穩(wěn)定,操作簡單等突出優(yōu)勢(shì),因而也是自來水廠滅活劍水蚤等水生生物的首選消毒劑[11].研究者就NaClO對(duì)滅活水生生物開展了大量研究工作,內(nèi)容涉及滅活動(dòng)力學(xué)[12]、水質(zhì)條件對(duì)滅活效果影響[13],以及操作條件優(yōu)化[14]等.已有研究采用的CT值一般在70mg?min/L以下,雖然與自來水廠實(shí)際消毒操作條件接近,但考慮到劍水蚤對(duì)NaClO耐受性較強(qiáng),將滅活CT值控制在70mg?min/L以內(nèi),可能無法對(duì)滅活動(dòng)力學(xué)過程做出完整描述.此外,已有研究采用的劍水蚤種屬、底質(zhì)和滅活條件等不盡相同,導(dǎo)致結(jié)論也不盡相同.有研究[13]認(rèn)為弱酸環(huán)境較弱堿環(huán)境,更有利于NaClO對(duì)劍水蚤的滅活;也有研究[11]表明pH值基本不會(huì)影響NaClO對(duì)劍水蚤的滅活效果.
同時(shí),研究者普遍認(rèn)為,NaClO滅活劍水蚤會(huì)增加自來水廠出廠水消毒副產(chǎn)物風(fēng)險(xiǎn)[13-14].紫外協(xié)同氧化劑消毒是常用的消毒副產(chǎn)物風(fēng)險(xiǎn)控制技術(shù)之一,經(jīng)紫外預(yù)處理后,氧化消毒所需劑量大幅降低,有利于消毒副產(chǎn)物風(fēng)險(xiǎn)控制[15-16].USEPA(美國環(huán)保署)也把紫外協(xié)同氧化作為自來水廠賈地鞭毛蟲和隱孢子蟲滅活的推薦技術(shù)[17].作者前期研究表明[12],當(dāng)紫外劑量為40mJ/cm2時(shí),紫外預(yù)處理可將NaClO對(duì)蠕蟲類水生生物的滅活反應(yīng)活化能由8754J/mol降至7219J/mol[12].目前,尚未見關(guān)于紫外協(xié)同氧化滅活劍水蚤的相關(guān)報(bào)道.
本文擬將NaClO滅活劍水蚤的CT值范圍適當(dāng)增大,在此條件下,對(duì)滅活動(dòng)力學(xué)過程進(jìn)行系統(tǒng)分析,同時(shí)重點(diǎn)考察底質(zhì)pH值和濁度對(duì)滅活作用的影響.此外,還探討了NaClO滅活水蚤過程中,紫外協(xié)同氧化策略的可行性,旨在為自來水廠劍水蚤的高效滅活提供理論和技術(shù)依據(jù).
劍水蚤采自長沙市某自來水廠活性炭濾池反沖洗水,經(jīng)鑒定劍水蚤為溫中劍水蚤(Mesocyclops thermocyclopoides).從活性炭濾池反沖洗水中挑取具卵袋的劍水蚤,轉(zhuǎn)移至8L自制培養(yǎng)箱.劍水蚤繁殖培養(yǎng)采用某校園內(nèi)富營養(yǎng)化湖水,總磷約0.6mg/L,COD約10mg/L.培養(yǎng)箱溫度控制在25℃,每天曝氣4h,光照8h.每次實(shí)驗(yàn)時(shí),從培養(yǎng)箱中取適量水置于10.5cm培養(yǎng)皿,用直徑2mm的吸管挑取個(gè)體大小接近(約1mm),跳動(dòng)活躍的成蟲至所需數(shù)量,經(jīng)蒸餾水清洗后備用.
NaClO溶液為分析純,有效氯8%,采用0.1mol/L的磷酸鹽緩沖溶液稀釋配制成所需濃度的滅活溶液.
pH值調(diào)整通過滴加1mol/L的HCl或NaOH溶液來實(shí)現(xiàn);濁度通過投加高嶺土來控制;實(shí)驗(yàn)用水均為蒸餾水.
NaClO滅活實(shí)驗(yàn)在10.5cm培養(yǎng)皿中進(jìn)行.pH值和濁度調(diào)整好的NaClO溶液,首先進(jìn)行濃度測(cè)定,作為滅活初始濃度.在每個(gè)培養(yǎng)皿中加入60mL已知濃度滅活劑,每個(gè)培養(yǎng)皿中投放30個(gè)劍水蚤,并開始計(jì)時(shí).每間隔一定時(shí)間對(duì)劍水蚤進(jìn)行觀測(cè),通過劍水蚤的觸角是否抖動(dòng)來判別其是否存活,并將死亡的劍水蚤挑出,記錄下存活數(shù)N.滅活完畢后,測(cè)定溶液NaClO濃度,作為滅活劑的最終濃度,NaClO濃度的變化按線性過程考慮.
紫外預(yù)處理在自制準(zhǔn)平行紫外照射裝置(如圖1)中進(jìn)行.紫外照射采用UV-C波段,波長253.7nm.紫外照射劑量20~200mJ/cm2.紫外照射完畢后,將劍水蚤全部轉(zhuǎn)移至其它培養(yǎng)皿進(jìn)行NaClO滅活,滅活操作同前.
除滅活動(dòng)力學(xué)實(shí)驗(yàn)外,其余實(shí)驗(yàn)每組均重復(fù)3次.
圖1 紫外照射裝置Fig.1 The ultraviolet radiation device
具體實(shí)驗(yàn)方案及滅活實(shí)驗(yàn)條件如表1所示.
表1 實(shí)驗(yàn)方案和滅活實(shí)驗(yàn)條件Table 1 Summary of tests and inactivation experimental conditions
NaClO濃度采用哈希DR900型便攜式測(cè)定儀測(cè)定;pH值采用雷磁PHS-3C型酸度計(jì)測(cè)定;濁度采用WGZ-500B型濁度儀測(cè)定;紫外照射強(qiáng)度采用UV512C型紫外照度計(jì)測(cè)定.
滅活效果采用劍水蚤的對(duì)數(shù)存活率來評(píng)價(jià).對(duì)數(shù)存活率以ln(N/N0)計(jì),其中,N0是滅活反應(yīng)初始階段的劍水蚤的數(shù)目,N為滅活反應(yīng)進(jìn)行一定時(shí)間段之后,水樣中存活劍水蚤數(shù)目.
采用Origin 9.0軟件對(duì)滅活反應(yīng)動(dòng)力學(xué)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行線性擬合和分析.
圖2給出了不同初始濃度條件下,NaClO對(duì)劍水蚤的滅活動(dòng)力學(xué)過程.當(dāng)初始濃度為3~5mg/L時(shí),相同CT值條件下,劍水蚤的滅活效率比較接近,滅活動(dòng)力學(xué)過程符合遲滯型的兩階段準(zhǔn)一級(jí)動(dòng)力學(xué)過程[18]:
式中:k1和k2分別為準(zhǔn)一級(jí)動(dòng)力學(xué)過程第1和第2階段的直線斜率;ln(N1/N0)和ln(N2/N0)分別為第1和第2階段的直線在縱軸上的截距;CTlag為遲滯期對(duì)應(yīng)的CT值;(N/N0)c為控制組劍水蚤的存活率;CT12為第1階段和第2階段分界處對(duì)應(yīng)的CT值.當(dāng)初始濃度為2mg/L時(shí),呈現(xiàn)類似的滅活動(dòng)力學(xué)過程,只是遲滯期變?yōu)槁俚臏?zhǔn)一級(jí)動(dòng)力學(xué)過程,相應(yīng)整個(gè)滅活過程演變?yōu)槿A段準(zhǔn)一級(jí)動(dòng)力學(xué)過程.
研究表明[18-21],NaClO滅活細(xì)菌和病毒,在一定條件下也呈兩階段準(zhǔn)一級(jí)滅活動(dòng)力學(xué)特征,且第一階段滅活反應(yīng)速率常數(shù)k1往往大于第二階段反應(yīng)速率常數(shù)k2.本研究中NaClO滅活劍水蚤為遲滯型兩階段準(zhǔn)一級(jí)動(dòng)力學(xué)過程,并且k1要小于k2.遲滯期的存在與劍水蚤體表甲殼有關(guān),NaClO要滅活劍水蚤首先必須滲透體表甲殼,而體表甲殼對(duì)劍水蚤的保護(hù)能力,要遠(yuǎn)強(qiáng)于細(xì)胞壁對(duì)細(xì)菌或病毒衣殼對(duì)病毒的保護(hù)能力[13],因此CT值需達(dá)到一定水平后方能產(chǎn)生滅活效果.遲滯期現(xiàn)象在對(duì)賈地鞭毛蟲[22]、隱孢子蟲[18]和蠕蟲類水生生物[12]的氧化滅活研究中也有報(bào)道.本研究中當(dāng)NaClO初始濃度為3~5mg/L時(shí),CTlag為80mg?min/L左右.至于k1小于k2,可能與劍水蚤體內(nèi)抗氧化系統(tǒng)相關(guān).水蚤體內(nèi)含有豐富的過氧化氫酶(CAT)、超氧化物歧化酶(SOD)和金屬硫蛋白(MT)等[23],由上述物質(zhì)組成的抗氧化系統(tǒng),有助于增強(qiáng)劍水蚤對(duì)NaClO的耐受性,當(dāng)CT值超過CT12后,抗氧化系統(tǒng)被破壞,故滅活速率常數(shù)開始增加.而細(xì)菌、病毒等微生物不具備完整的抗氧化系統(tǒng),部分敏感菌隨CT值的增加可能變?yōu)榭剐跃鶾20],因此在NaClO滅活過程中k1大于k2.
圖2 不同初始濃度下NaClO對(duì)劍水蚤的滅活動(dòng)力學(xué)過程Fig.2 The inactivation kinetics of Cyclops by NaClO under different initial concentrations
需指出的是,初始NaClO濃度為2mg/L時(shí)遲滯期消失,并且相同CT值的滅活率也要高于3~5mg/L時(shí).實(shí)驗(yàn)中觀察到,初始NaClO濃度為2mg/L時(shí),劍水蚤在NaClO脅迫下立刻做大幅度快速躍動(dòng);初始NaClO濃度高于2mg/L后,則未見劍水蚤明顯躍動(dòng).De Beer等[24]認(rèn)為生物體表面與NaClO溶液之間存在固液邊界層,NaClO向生物體內(nèi)的滲透首先必須經(jīng)過邊界層;Perry和Chilton[25]的研究表明,NaClO的滲透通量與邊界層厚度的平方呈反比.因此在低濃度情況下,劍水蚤的大幅度快速躍動(dòng)有效降低了邊界層厚度,NaClO向劍水蚤體內(nèi)的滲透得到加強(qiáng),故滅活效率要高于3~5mg/L時(shí).
圖3給出了不同溫度下,NaClO對(duì)劍水蚤的滅活動(dòng)力學(xué)過程.為便于滅活反應(yīng)活化能的計(jì)算,采用遲滯型一階段準(zhǔn)一級(jí)滅活動(dòng)力學(xué)模型對(duì)圖3數(shù)據(jù)進(jìn)行擬合,得到5℃、20℃和25℃時(shí)的滅活反應(yīng)速率常數(shù)分別為0.01219、0.01328和0.0136,說明溫度的提高有助于劍水蚤滅活效率的提升.圖3同時(shí)表明,溫度提升可大幅縮短遲滯期,這是因?yàn)闇囟忍嵘梢源龠M(jìn)NaClO向劍水蚤體內(nèi)的滲透.
圖3 不同溫度下NaClO對(duì)劍水蚤的滅活動(dòng)力學(xué)過程Fig.3 The inactivation kinetics of Cyclops by NaClOunder different temperatures
圖4給出了NaClO滅活劍水蚤的反應(yīng)速率常數(shù)Arrhenius圖,擬合計(jì)算結(jié)果表明,實(shí)驗(yàn)條件下NaClO對(duì)劍水蚤的滅活反應(yīng)活化能為3774J/mol.Fernando[22]和Corona-Vasquez等[18]分別采用NaClO對(duì)賈地鞭毛蟲和隱孢子蟲進(jìn)行滅活,得到各自的滅活反應(yīng)活化能分別為45788J/mol和68980J/mol;Churn等[26]研究表明NaClO對(duì)細(xì)小病毒H-1的滅活反應(yīng)活化能為2400J/mol;作者前期研究發(fā)現(xiàn)[12],NaClO對(duì)飲用水中蠕蟲類水生生物的滅活反應(yīng)活化能為8754J/mol,從滅活反應(yīng)活化能看,劍水蚤較賈地鞭毛蟲、隱孢子蟲和蠕蟲類水生生物而言,更難于被NaClO滅活,但耐受性要強(qiáng)于細(xì)小病毒H-1.當(dāng)然,由于上述研究采用的底質(zhì)和滅活條件各不相同,該結(jié)論還有待進(jìn)一步證實(shí).
圖4 NaClO滅活劍水蚤的反應(yīng)速率常數(shù)Arrhenius曲線Fig.4 Arrhenius plot of rate constants for the inactivation of Cyclops by NaClO
不同pH值條件下NaClO對(duì)劍水蚤的滅活動(dòng)力學(xué)過程見圖5.為便于計(jì)算比較,采用遲滯型一階段準(zhǔn)一級(jí)滅活動(dòng)力學(xué)模型對(duì)圖中數(shù)據(jù)進(jìn)行擬合.經(jīng)計(jì)算,pH值為6、7和8時(shí)的滅活反應(yīng)速率常數(shù)分別為0.0093、0.0214和0.0203,說明在滅活期內(nèi),中性條件下滅活效率最高,堿性條件次之,酸性條件最低.對(duì)比相同CT值下的滅活率可以發(fā)現(xiàn),中性條件滅活率要高于酸性和堿性;當(dāng)CT值小于70mg?min/L時(shí),酸性條件滅活率要高于堿性,超過70mg?min/L后則堿性要高于酸性.
pH值決定了NaClO溶液中HOCl和ClO-物質(zhì)的量之比,因而是決定其消毒滅活效率的重要因素之一[27].研究表明[28],HOCl對(duì)微生物的滅活效率是ClO-的80倍左右,酸性環(huán)境被認(rèn)為更利于NaClO對(duì)細(xì)菌、病毒等微生物的消毒滅活.但需要指出的是,上述結(jié)論可能只適合于消毒滅活接觸時(shí)間較短的情況,即滅活CT值較小的范圍,這是因?yàn)镠OCl和ClO-在水中的化學(xué)穩(wěn)定性差異較大.ClO-化學(xué)穩(wěn)定性較好,而HOCl的化學(xué)穩(wěn)定性取決于水溶液的pH值(表2)[27],pH值越高,HClO在水中的化學(xué)穩(wěn)定性越好.
圖5 不同pH值下NaClO對(duì)劍水蚤的滅活動(dòng)力學(xué)過程Fig.5 The inactivation kinetics of Cyclops by NaClO under different pH
表2 HOCl在不同pH下衰減至1/10所需時(shí)間[27]Table 2 HOCl in different pH decay time required for 1/10[27]
綜合考慮NaClO溶液pH值,以及HOCl和ClO-的滅活效率、化學(xué)穩(wěn)定性可知,當(dāng)滅活所要求的CT值較小(即滅活接觸時(shí)間較短)時(shí),pH值(以6、7和8為例)對(duì)NaClO溶液滅活效率的影響,以改變?nèi)芤褐蠬OCl和ClO-物質(zhì)的量之比為主,HOCl和ClO-的化學(xué)穩(wěn)定性可以不予考慮,酸性條件下HOCl含量更高,因此滅活效率更高.飲用水的NaClO消毒所采用的CT值一般都比較小,故酸性條件下的消毒滅活效果更好.隨著滅活時(shí)間的延長,pH值對(duì)NaClO溶液滅活效率的影響則以改變HOCl和ClO-的化學(xué)穩(wěn)定性為主.假設(shè)滅活接觸時(shí)間為60min,HOCl的滅活效率為1,根據(jù)表2可知pH值為6、7和8時(shí),各自的滅活效率比大致為1:8:2.5,中性條件下滅活效率最高,堿性次之,酸性最差,這與本實(shí)驗(yàn)得到的結(jié)論較為一致.作者前期研究證實(shí)[12],在蠕蟲類水生生物的NaClO滅活中,也是堿性條件下滅活效率要高于酸性條件.崔福義等[13]采用氯氣滅活劍水蚤,氯氣投加量2mg/L,滅活時(shí)間30min,當(dāng)pH值小于6.5時(shí)滅活率達(dá)100%,而pH值為8時(shí)滅活率僅為50%.蘇洪濤[11]的研究則表明,pH值在6.8~8范圍內(nèi),有效氯濃度為2mg/L時(shí),氯對(duì)劍水蚤的滅活效果幾乎不受pH值影響.關(guān)于pH值對(duì)NaClO滅活劍水蚤的影響,相關(guān)研究者的研究結(jié)論不盡相同,可能正是由于各自所采用的滅活CT值存在較大差異所引起.
為便于計(jì)算比較,采用兩階段準(zhǔn)一級(jí)滅活動(dòng)力學(xué)模型對(duì)圖6中數(shù)據(jù)進(jìn)行擬合.經(jīng)計(jì)算,濁度為0.2、2和8時(shí)的滅活反應(yīng)速率常數(shù)分別為0.0219、0.0196和0.0109,說明濁度物質(zhì)的存在有助于提高劍水蚤對(duì)NaClO的耐受性.對(duì)比相同CT值下的滅活率可以發(fā)現(xiàn),濁度越低,滅活率越高.由圖6還可知,濁度的增加會(huì)導(dǎo)致慢速滅活的第一階段延長,濁度為0.2、2和8時(shí)CT12分別為30、70和80mg?min/L.
圖6不同濁度下NaClO對(duì)劍水蚤的滅活動(dòng)力學(xué)過程Fig.6 The inactivation kinetics of Cyclops by NaClO under different turbidity
濁度物質(zhì)對(duì)NaClO滅活細(xì)菌和病毒等微生物效果的抑制作用,在很多研究中已經(jīng)得到證實(shí)[29-30],其抑制作用主要是因?yàn)楹芏辔⑸锒际且哉掣皆跐岫任镔|(zhì)表面的形式存在于水中.本研究中,濁度物質(zhì)的顆粒粒徑要遠(yuǎn)小于劍水蚤,因此濁度物質(zhì)對(duì)滅活效率的削弱,可能是由于濁度物質(zhì)吸附在劍水蚤體表,從而阻礙了NaClO向劍水蚤體內(nèi)的滲透過程.此外,液相主體中的濁度物質(zhì),也會(huì)遲滯NaClO從液相主體向劍水蚤體表邊界層的傳質(zhì)過程,這也會(huì)對(duì)滅活效果造成一定影響.
圖7 紫外照射下NaClO對(duì)劍水蚤的滅活動(dòng)力學(xué)過程Fig.7 The inactivation kinetics of Cyclops by NaClO following UV irradiation pre-treatment under different pH
實(shí)驗(yàn)中,當(dāng)紫外照射劑量為20~200mJ/cm2時(shí),單獨(dú)紫外照射均未見有劍水蚤死亡現(xiàn)象,說明單獨(dú)紫外照射對(duì)劍水蚤不具滅活效果.固定紫外照射劑量為40mJ/cm2,不同pH值條件下,紫外照射對(duì)劍水蚤滅活動(dòng)力學(xué)過程的影響見圖7.圖7表明,紫外照射對(duì)NaClO滅活效果具有明顯的強(qiáng)化作用.首先,經(jīng)紫外照射后,滅活動(dòng)力學(xué)曲線的遲滯期明顯縮短(圖7(a))或消失(圖7(b)和7(c));其次紫外照射提高了滅活反應(yīng)速率常數(shù),pH值為6、7和8時(shí),單獨(dú)NaClO滅活的滅活反應(yīng)速率常數(shù)分別為0.0093、0.02185和0.0206,經(jīng)紫外照射預(yù)處理后,各自分別提高至0.0105、0.02673和0.0286.
在飲用水消毒中,紫外照射與NaClO聯(lián)用對(duì)細(xì)菌和病毒等微生物具有協(xié)同效應(yīng),紫外照射可以起到強(qiáng)化NaClO滅活效果和減小藥劑使用量的作用[31-32].本研究證實(shí),對(duì)于劍水蚤的NaClO滅活,紫外照射同樣可以起到強(qiáng)化作用.與細(xì)菌和病毒等微生物不同,劍水蚤等微型水生生物具有較堅(jiān)硬的體壁,體壁中的脂質(zhì)層對(duì)紫外照射的抵御能力非常強(qiáng)[33],因此單獨(dú)紫外照射無法實(shí)現(xiàn)滅活.但紫外照射將對(duì)脂質(zhì)層起到破壞作用,這有助于NaClO向劍水蚤體內(nèi)的滲透,NaClO可以迅速透過劍水蚤體壁,因此滅活遲滯期消失或縮短,同時(shí)滅活反應(yīng)速率常數(shù)增加.但紫外照射對(duì)劍水蚤脂質(zhì)層的破壞作用如何,破壞程度是否與紫外照射劑量相關(guān),這些都還有待進(jìn)一步研究.
3.1 NaClO對(duì)劍水蚤的滅活動(dòng)力學(xué)過程符合遲滯型兩階段準(zhǔn)一級(jí)動(dòng)力學(xué)過程;滅活反應(yīng)活化能為3774J/mol,說明劍水蚤對(duì)NaClO的耐受性一般要高于細(xì)菌和病毒,但低于賈地鞭毛蟲、隱孢子蟲和蠕蟲類水生生物.
3.2 pH值對(duì)NaClO溶液滅活劍水蚤的影響,主要通過改變?nèi)芤褐蠬OCl和ClO-物質(zhì)的量之比,以及HOCl和ClO-的化學(xué)穩(wěn)定性來實(shí)現(xiàn).當(dāng)滅活CT值超出一定水平后,中性條件下NaClO對(duì)劍水蚤的滅活效率最高,堿性次之,酸性最差.
3.3 濁度物質(zhì)會(huì)遲滯NaClO從液相主體向劍水蚤體表邊界層的傳質(zhì)過程,被劍水蚤體表吸附后也會(huì)阻礙NaClO向劍水蚤體內(nèi)的滲透過程,因此對(duì)NaClO的滅活效果有削弱作用.
3.4 單獨(dú)紫外照射無法實(shí)現(xiàn)對(duì)劍水蚤的滅活,但可以強(qiáng)化NaClO對(duì)劍水蚤的滅活效果.經(jīng)紫外照射后,劍水蚤滅活遲滯期消失或縮短,同時(shí)滅活反應(yīng)速率常數(shù)增加.
[1] 邢 宏.水處理工藝中劍水蚤的防治及水質(zhì)生物評(píng)價(jià) [J]. 凈水技術(shù), 2004,23(6):16-17.
[2] Ferreira L, Du Preez H H. Investigation into occurrence of aquatic invertebrates throughout drinking water purification plants [J]. Water Science & Technology: Water Supply, 2012,12(2):250-257.
[3] Wang Q, You W, Li X W, et al. Seasonal changes in the invertebrate community of granular activated carbon filters and control technologies [J]. Water Research, 2014,51(6):216-227.
[4] Francoise B, Benoit B, Yolanda D, et al. Role of predation by zooplankton in transport and fate of protozoan (oo)cysts in granular activated carbon filtration [J]. Water Research, 2010,44(4):1072-1081.
[5] 林 濤,曹 鈺,陳 衛(wèi).飲用水處理中劍水蚤攜帶細(xì)菌的研究[J]. 華中科技大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版), 2013,41(4):128-132.
[6] 趙志偉,崔福義,林 濤,等.二氧化氯對(duì)劍水蚤類浮游動(dòng)物的滅活與去除 [J]. 環(huán)境科學(xué), 2007,28(8):1759-1762.
[7] 孫興濱,倪慧珊,宋弼堯.飲用水消毒過程中劍水蚤對(duì)生物穩(wěn)定性的影響及變化規(guī)律 [J]. 凈水技術(shù), 2016,35(2):43-46.
[8] van Lieverloo J H M, Hoogenboezem W, Veenendaal G, et al.Variability of invertebrate abundance in drinking water distribution systems in the Netherlands in relation to biostability and sediment volumes [J]. Water Research, 2012,46(16):4918-4932.
[9] 劉冬梅,崔福義,吳雅琴,等.預(yù)氧化協(xié)同常規(guī)水處理工藝去除劍水蚤 [J]. 供水技術(shù), 2007,1(1):32-34.
[10] Adam K, Heath R G M, Steynberg M C. Invertebrates as biomonitors of sand-filter efficiency [J]. Water SA, 1998,24(1):43-48.
[11] 蘇洪濤.供水生產(chǎn)中水蚤類浮游生物控制技術(shù)研究 [D]. 長沙:湖南大學(xué), 2007.
[12] Nie X B, Li Z H, Long Y N, et al. Chlorine inactivation ofTubifex tubifexin drinking water and the synergistic effect of sequential inactivation with UV irradiation and chlorine [J]. Chemosphere,2017,177(6):7-14.
[13] 崔福義,林 濤,劉冬梅,等.氧化劑對(duì)劍水蚤類浮游動(dòng)物的滅活效能及影響 [J]. 哈爾濱工業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2004,36(2):143-146.
[14] 劉冬梅,崔福義,吳雅琴,等.預(yù)氧化協(xié)同常規(guī)水處理工藝去除劍水蚤 [J]. 供水技術(shù), 2007,1(1):32-34.
[15] Wang X J, Hu X X, Wang H B, et al. Synergistic effect of the sequential use of UV irradiation and chlorine to disinfect reclaimed water [J]. Water Research, 2013,46(4):1225-1232.
[16] Dykstra T S, O’Leary K C, Chauret C, et al. Impact of UV disinfection on biological stability in distribution systems [J].Journal of Environmental Engineering and Science, 2007,6:147-155.
[17] USEPA, Ultraviolet disinfection guidance manual. EPA 815-D-03-007, 2003.
[18] Corona-Vasquez B, Samuelson A, Rennecker J L, et al.Inactivation ofCryptosporidium parvumoocysts with ozone and free chlorine [J]. Water Research, 2002,36:4053-4063.
[19] 陳雨喬,段曉笛,陸品品,等.給水管網(wǎng)中耐氯性細(xì)菌的滅活特性研究 [J]. 環(huán)境科學(xué), 2012,33(1):104-109.
[20] 張 云.三種含氯消毒劑滅活飲用水中病毒的效果及其表觀動(dòng)力學(xué)研究 [D]. 上海:復(fù)旦大學(xué), 2011.
[21] Zhang B, Luo YG, Zhou B, et al. A novel microfluidic mixer-based approach for determining inactivation kinetics of Escherichia coli O157: H7 in chlorine solutions [J]. Food Microbiology, 2015,49:152-160.
[22] Fernando W J N. Theoretical considerations and modeling of chemical inactivation of microorganisms: Inactivation of Giardia Cysts by free chlorine [J]. Journal of Theoretical Biology, 2009,259:297-303.
[23] 湯保華.三種新型殺菌劑對(duì)水生蚤類動(dòng)物影響的初步研究 [D].烏魯木齊:新疆農(nóng)業(yè)大學(xué), 2005.
[24] De Beer D, Srinivasan R, Stewart P S. Direct measurement of chlorine penetration into biofilms during disinfection [J]. Applied and Environmental Microbiology, 1994,60:4339-4344.
[25] Perry R H, Chilton C H. Chemical engineers’ handbook [M]. 5th ed. McGraw-Hill, New York, 1973.
[26] Churn C C, Boardman G D, Bates R C. The inactivation kinetics of H-1parvovirus by chlorine [J]. Water Research, 1984,18:195-203.
[27] Granum P E, Magnussen J. The effect of pH on hypochlorite as disinfectant [J]. International Journal of Food Microbiology,1987,4:183-186.
[28] Bremer P J, Monk I, Butler R. Inactivation ofListeria monocytogenes/Flavobacteriumspp. biofilms using chlorine:impact of substrate, pH, time and concentration [J]. Letters in Applied Microbiology, 2002,35:321-325.
[29] Winward G P, Avery L M, Stephenson T, et al. Chlorine disinfection of grey water for reuse: Effect of organics and particles [J]. Water Research, 2008,42:483-491
[30] Berman D, Rice E W, Hoff J C. Inactivation of particleassociated coliforms by chlorine and monochloramine [J].Applied and Environmental Mirobiology,1988,54:507-512
[31] Lyon B A, Cory R M, Weinberg H S. Changes in dissolved organic matter fluorescence and disinfection byproduct formation from UV and subsequent chlorination/chloramination [J]. Journal Hazardous Materials, 2014,264:411-419.
[32] Shang C, Cheung L M, Liu W. MS2coliphage inactivation with UV irradiation and free chlorine/monochloramine [J].Environmental Engineering Science, 2007,24:1321-1332.
[33] Valacchi G, Weber S U, Luu C, et al. Ozone potentiates vitamin E depletion by ultraviolet radiation in the murine stratum corneum[J]. Febs Letters, 2000,466:165-168.