張培風(fēng) ,王長(zhǎng)彪 ,趙興華 ,劉 江 ,韓 斌 ,路貴和
(1.山西大學(xué)生物工程學(xué)院,山西 太原 030006;2.山西省農(nóng)業(yè)科學(xué)院生物技術(shù)研究中心,山西 太原 030031)
玉米具有遺傳和基因組工程開發(fā)的悠久歷史,被認(rèn)為是21世紀(jì)應(yīng)用較廣泛的高等植物之一[1]。玉米作為我國(guó)種植面積廣泛的第三大糧食作物,在工業(yè)上供可開發(fā)產(chǎn)品數(shù)量多且運(yùn)用較廣[2]。但是近些年來,由于耕地面積減少,環(huán)境日益惡化,選育優(yōu)質(zhì)玉米品種已成為育種界重中之重。近年來,國(guó)內(nèi)外對(duì)玉米單倍體加倍技術(shù)進(jìn)行了大量研究,國(guó)外一些公司已開發(fā)操作簡(jiǎn)單、效率較高的技術(shù)并進(jìn)行大規(guī)模應(yīng)用[3],而我國(guó)玉米單倍體加倍技術(shù)的研究仍處于起步階段,在一定程度上通過誘導(dǎo)得到的單倍體種子加倍率較低,進(jìn)一步限制了我國(guó)玉米單倍體加倍技術(shù)在育種中的實(shí)施和進(jìn)步。因此,為了獲得操作簡(jiǎn)便、成本較低、加倍率高的加倍技術(shù)方法,我國(guó)研究人員進(jìn)行了大量的研究。目前,我國(guó)主要采用的加倍技術(shù)有自然加倍法、秋水仙堿和除草劑等試劑化學(xué)加倍法。
筆者主要根據(jù)近幾年對(duì)玉米單倍體化學(xué)加倍技術(shù)的研究進(jìn)展進(jìn)行探討,旨在為科研人員探究玉米單倍體加倍技術(shù)提供參考。
利用植物品種間、自交系間進(jìn)行雜交,使植物染色體發(fā)生異常,產(chǎn)生單倍體。染色體異常主要表現(xiàn)在假配生殖,而假配生殖主要是指異源的精子在沒有與卵細(xì)胞融合的條件下,直接在細(xì)胞質(zhì)內(nèi)發(fā)生解體,未經(jīng)受精的卵細(xì)胞繼續(xù)發(fā)育形成單倍體。如母本白菜型油菜與父本甘藍(lán)型油菜雜交,可誘導(dǎo)父本染色體組通過孤雌生殖產(chǎn)生單倍體[4];黃茄和龍葵之間雜交也可發(fā)生假配生殖產(chǎn)生龍葵單倍體[5]。但有研究表明,這種利用品種間雜交獲得單倍體的發(fā)生頻率較低,難以滿足科研和育種的需要。
依靠花藥離體培養(yǎng)單倍體的一般過程是:取孕穗期的玉米雄穗,在無菌條件下剝?nèi)』ㄋ幹糜谡T導(dǎo)培養(yǎng)基上培養(yǎng),待獲得胚狀體后,再轉(zhuǎn)接到分化培養(yǎng)基上,得到新的植物。該方法便于染色體加倍,但整個(gè)過程通過組織培養(yǎng)進(jìn)行,主要原因是:第一,愈傷組織誘導(dǎo)率在基因型之間差異大;第二,愈傷組織分化的不確定性;第三,愈傷組織培養(yǎng)過程中容易發(fā)生體細(xì)胞變異,如基因突變、染色體結(jié)構(gòu)變異、倍性和異倍體變異等;第四,通過組織培養(yǎng)獲得的單倍體,由于實(shí)驗(yàn)環(huán)境要求高,操作較為復(fù)雜,花藥離體培養(yǎng)在單倍體育種中運(yùn)用受到限制[6]。因此,探究更完善的花藥離體培養(yǎng)技術(shù)成為育種工作者研究的課題。
輻射誘變主要是將輻射處理后的花粉對(duì)去雄的母本進(jìn)行授粉,產(chǎn)生單倍體。在小麥、玉米等作物上均有利用物理和化學(xué)因素誘導(dǎo)單倍體的報(bào)道[7]。例如,PETOLINO[8]用X射線照射小麥花粉授粉,后代中獲得了17.58%的單倍體植株;RANDOLPH[9]采用5個(gè)不同玉米材料,經(jīng)X射線處理花粉授粉,產(chǎn)生的孤雌生殖單倍體頻率平均可達(dá)0.096%,比相應(yīng)對(duì)照平均提高50%。然而,通過物理和化學(xué)產(chǎn)生誘變的劑量和濃度都需要研究,而且利用輻射和化學(xué)方法需要在嚴(yán)格隔離的環(huán)境下進(jìn)行操作。因此,輻射和誘變誘導(dǎo)單倍體的方法具有較大的局限性。
目前,獲得單倍體最常用的方法是利用誘導(dǎo)系誘導(dǎo)產(chǎn)生單倍體。1959年,COE[10]以Stock6為父本,與其他雜交系誘導(dǎo)及授粉產(chǎn)出1%~2%的母本。KERMICLE[11]研究表明,以 W23(ig)系母本參照物發(fā)生雜交可產(chǎn)出0~2%的父本單倍體。由于利用誘導(dǎo)系產(chǎn)生單倍體具有誘變頻率低和與另一親本雜交容易受限制的缺點(diǎn),國(guó)內(nèi)外很多育種家對(duì)其進(jìn)行了研究和改良。法國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院[12]從W23和Stock6雜交品種中選育出了3.5%的誘導(dǎo)孤雌生殖株;CHALYK 等[13-14]使用 ZMS 改良出的 MHI,KMS,可引起超過3%的胚胎誘導(dǎo)。在我國(guó),吉林省農(nóng)業(yè)科學(xué)院才卓等[15]通過M278對(duì)Stock6進(jìn)行不斷改良,選育出了吉高誘3號(hào);吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)相關(guān)研究人員通過利用吉高誘3號(hào)、Stock6等誘導(dǎo)系改良出了一系列高誘導(dǎo)率誘導(dǎo)系[16],這些誘導(dǎo)系的成功選育,加速了玉米單倍體育種技術(shù)在我國(guó)的應(yīng)用。
除此以外,獲得玉米單倍體的方式還包括植物自發(fā)產(chǎn)生法、遠(yuǎn)緣雜交法、X射線和紫外線法等[17-18]。
該方法是在田間對(duì)單倍體形態(tài)進(jìn)行鑒定。總體上,玉米單倍體植株生長(zhǎng)緩慢,葉片直立,葉窄,葉色較淺,株高和穗高顯著低于非單倍體。非單倍體是由誘導(dǎo)物產(chǎn)生的二倍體種子,具有一定的雜種優(yōu)勢(shì)和旺盛的生命力,與雜交種植株存在著明顯的差異,因此,在6葉期左右就能區(qū)分單倍體和非單倍體。這也是鑒定玉米單倍體的重要依據(jù)。
該方法是利用分子標(biāo)記技術(shù)對(duì)雜交組籽?;蛐瓦M(jìn)行鑒定,在操作過程中雖然不受外界條件和植株發(fā)育階段的限制,但成本較高。因此,生產(chǎn)上大規(guī)模應(yīng)用比較困難。
利用流式細(xì)胞儀對(duì)玉米植株細(xì)胞處于分裂間期的DNA含量進(jìn)行檢測(cè),根據(jù)DNA含量所呈現(xiàn)的峰值圖對(duì)玉米單倍體植株進(jìn)行鑒定,該方法較準(zhǔn)確、快速,但無法對(duì)種子進(jìn)行倍性鑒定。此外,由于儀器昂貴、技術(shù)要求高,因此,在田間育種的廣泛應(yīng)用受到極大限制。
Rl-nj基因最早存在于誘導(dǎo)系Stock6中[19],可根據(jù)該基因在玉米胚乳粉糊層和胚的盾片中是否表達(dá)紫色花青素這一特性將誘導(dǎo)系的后代進(jìn)行區(qū)分。目前,利用這一存在誘導(dǎo)系間的Rl-nj基因,可對(duì)較大量非單倍體進(jìn)行淘汰[20],但是由于該基因表達(dá)強(qiáng)度會(huì)受很多因素影響[21],以及在母本受體攜帶Rl-nj基因或抑制基因時(shí),該方法未得到廣泛應(yīng)用。為使得技術(shù)更完善,育種家在誘導(dǎo)系中通過整合的基因,借助在玉米莖稈和根系等器官表達(dá)的特點(diǎn),對(duì)非單倍體植株進(jìn)行篩選和淘汰,但某些較特殊的單倍體如黃綠苗基因作為遺傳標(biāo)記對(duì)單倍體進(jìn)行篩選,會(huì)受到材料遺傳背景的極大限制,無法成為主要的鑒定方法。
單倍體的自然加倍主要是指在沒有人為干預(yù)條件下使植物細(xì)胞的有絲分裂無法正常進(jìn)行。CHASE[22]研究表明,玉米單倍體一代的自然加倍可控制在10%左右。CHALYK等[23]研究發(fā)現(xiàn),玉米雌穗恢復(fù)二倍化的機(jī)制高于雄穗。此外,玉米基因型、單倍體細(xì)胞的核內(nèi)復(fù)制、分裂等因素都會(huì)影響單倍體自然加倍的產(chǎn)生[24];種植季節(jié)和地點(diǎn)也會(huì)影響單倍體的自然加倍。有研究表明,由于生長(zhǎng)前期溫度較低、溫差較大,春季播種的玉米較夏季播種更有助于自然加倍的發(fā)生;段民孝等[25]研究發(fā)現(xiàn),甘肅地區(qū)的春播和海南地區(qū)的冬播較北京春播玉米發(fā)生自然加倍的概率高。蔡泉等[26]研究發(fā)現(xiàn),海南地區(qū)玉米單倍體的自然加倍率遠(yuǎn)高于黑龍江地區(qū)。
玉米單倍體自然加倍法具有操作簡(jiǎn)便、安全無害的特點(diǎn),但加倍率較低,因此,要想要提高加倍效率,必須人為對(duì)其進(jìn)行處理。其中,最常見的是秋水仙素加倍法,而利用秋水仙素作為最常用的化學(xué)加倍方法主要包括浸種法、浸根法、注射法和浸芽法。
4.1.1 浸種法 先用凈水浸泡種子24 h,再用不同濃度梯度秋水仙素溶液進(jìn)行處理,最后經(jīng)流水沖洗后進(jìn)行播種。1994年,GAYEN等[27]用不同時(shí)間段和不同濃度的秋水仙素對(duì)浸泡過的胚芽切口的單倍體進(jìn)行處理,結(jié)果表明,秋水仙素在濃度為0.06%、處理時(shí)間為12 h時(shí),加倍率可達(dá)18%,效果最佳。
4.1.2 浸根法 對(duì)處在幼苗期的單倍體根系,用一定比例的秋水仙素配比液浸泡一段時(shí)間,然后再用清水進(jìn)行沖洗,最后將經(jīng)過處理的幼苗移栽至田間,進(jìn)行加倍情況的觀察和統(tǒng)計(jì)。1955年,SEANEY[28]通過觀察浸泡在0.05%秋水仙素溶液中單倍體的幼苗24 h移栽后發(fā)現(xiàn),18株單倍體中有12株部分雄花能散粉,而12株對(duì)照中只有3株散粉。文科等[29]采用浸根法,將發(fā)芽5~7 cm的單倍體種子固定并浸泡于一定比例的秋水仙素溶液中,結(jié)果表明,秋水仙素溶液濃度為0.02%時(shí),加倍效果最佳。但該方法進(jìn)行育苗、處理、移栽等工作繁瑣,所需劑量較大,成本高,移栽后不能充分保證苗木成活率。
4.1.3 注射法 注射法需要借助注射器將配好的秋水仙素溶液對(duì)單倍體進(jìn)行注射。1952年,CHASE等[30]利用甘油水溶液和秋水仙素注射玉米單倍體的盾片節(jié),獲得了一定數(shù)量的結(jié)實(shí)率。此外,魏俊杰等[31]采用高誘1號(hào)為父本,將不同濃度的溶液分別與二甲基亞砜(DMSO)進(jìn)行配比,然后在6葉期時(shí)對(duì)幼苗的莖尖進(jìn)行注射,結(jié)果發(fā)現(xiàn),秋水仙素濃度為0.5%時(shí),效果最顯著。該方法不需育苗和移栽,操作簡(jiǎn)便且用量少,適于大批材料,但由于植株間存在差異較大,注射部位不易辨認(rèn),因此,對(duì)注射的技術(shù)要求比較高。
4.1.4 浸芽法 該方法是將單倍體幼芽浸泡于秋水仙堿中進(jìn)行處理。EDER[32]用不同濃度的秋水仙素溶液在不同時(shí)期進(jìn)行浸芽處理,可以得到27.3%的結(jié)實(shí)率。蔡泉等[33]通過浸芽法對(duì)單倍體處理發(fā)現(xiàn),濃度在0.06%時(shí)的平均存活率可達(dá)71.6%,平均加倍率為21.8%。岳堯海等[34]將0.05%秋水仙素、5%二甲基亞砜混合藥劑浸泡9 h,溫度控制在15℃以下,加倍率可達(dá)38.1%,效果最佳。綜合比較,浸芽法的加倍率可達(dá)30%以上,是一種較為有效的加倍方法,但該方法處理程序復(fù)雜、對(duì)田間管理要求比較高,若管理不佳,幼苗的存活率則會(huì)降低。該方法操作過程中所需秋水仙素溶液較多,因此,需要做好充分的防毒工作。
秋水仙素毒性較大,很容易造成死苗、畸形等情況,因此,科研人員開始尋找其他替代品,篩選出一些具有類似功能的抗微管除草劑。目前,比較常用的抗微管除草劑包括:氟樂靈、拿草特、甲基胺草磷等。WAN等[35]研究表明,甲基胺草磷、拿草特與秋水仙素能用于誘導(dǎo)花粉愈傷組織的加倍,但無法對(duì)體細(xì)胞的突變加以提高。WAN[36]采用除草劑對(duì)玉米花藥愈傷組織實(shí)現(xiàn)加倍處理,結(jié)果發(fā)現(xiàn),幾種除草劑產(chǎn)生了不同的加倍效果。慈佳賓等[37]采用氟樂靈、拿草特2種除草劑對(duì)玉米單倍體進(jìn)行處理,結(jié)果發(fā)現(xiàn),浸種法氟樂靈濃度為80 μmol/L處理20 h時(shí),加倍率最高(37.6%);浸芽法拿草特在濃度為6 μmol/L處理24 h時(shí),加倍率最高(24.8%);浸根法氟樂靈40 μmol/L加倍率最高(16.9%)。通過不同處理表明,氟樂靈浸種法對(duì)玉米單倍體加倍效果較好。
利用單倍體加倍技術(shù),可以縮短玉米育種年限,加快育種進(jìn)程。單倍體的自然加倍在加倍方法中操作簡(jiǎn)便,但自然加倍的效率較低。因此,在實(shí)際工作中,秋水仙素作為高效加倍劑已被玉米單倍體加倍廣泛使用,但秋水仙素毒性大、加倍后容易產(chǎn)生畸形苗,因此,尋找可代替秋水仙素的試劑成為今后工作的重點(diǎn)??傊瑢で蟾咝实募颖都夹g(shù)方法,需要更好地完善單倍體誘導(dǎo)體系、發(fā)揮單倍體加倍技術(shù),從而提升玉米在國(guó)內(nèi)外市場(chǎng)的競(jìng)爭(zhēng)力。
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