陳曉沛，施 泉，郭小勤，曹友志，徐英武

（浙江農(nóng)林大學(xué) 省部共建亞熱帶森林培育國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，浙江 杭州311300）

開(kāi)花是高等植物進(jìn)入生殖生長(zhǎng)的標(biāo)志，是植物完成生活史的必要環(huán)節(jié)。在擬南芥Arabidopsis thaliana中的研究發(fā)現(xiàn)，開(kāi)花過(guò)程受多種內(nèi)源因素和外源環(huán)境因素的影響，由復(fù)雜基因網(wǎng)絡(luò)嚴(yán)格調(diào)控［1］。光周期途徑中植物開(kāi)花受季節(jié)性晝長(zhǎng)變化影響［2］；赤霉素（GA）途徑是在非誘導(dǎo)光周期途徑的條件下，在開(kāi)花過(guò)程中發(fā)揮作用［3］；春化途徑中植物開(kāi)花要受到低溫積累的影響［4］；自主途徑中通過(guò)感知植物自身內(nèi)部發(fā)育狀態(tài)而調(diào)控植物開(kāi)花［5］，多種途徑的成花調(diào)節(jié)信號(hào)最終都集中于2個(gè)整合因子：開(kāi)花促進(jìn)因子FLOERING LOCUS T（FT）和 SUPPRESSPR OF OVEREXPRESION OF CONSTANS 1（SOC1）［6-8］。 在擬南芥中，過(guò)表達(dá)FT基因會(huì)明顯促進(jìn)SOC1基因的表達(dá)量；同時(shí)在ft突變體中，SOC1的表達(dá)量明顯下降［9-11］，但是對(duì)ft和soc1雙突變體與ft單突變體植株的開(kāi)花時(shí)間進(jìn)行統(tǒng)計(jì)，結(jié)果顯示沒(méi)明顯差異，可知除FT蛋白調(diào)控SOC1的表達(dá)外，還存在另外的途徑影響SOC1基因的表達(dá)［10-13］。其他開(kāi)花控制因子可以通過(guò)FT和SOC1參與開(kāi)花途徑的調(diào)控，例如開(kāi)花抑制因子SHORT VEGETATIVE PHASE（SVP）可以結(jié)合SOC1和FT的調(diào)控序列，對(duì)FT和SOC1產(chǎn)生抑制作用［14］，進(jìn)而下調(diào)它們的表達(dá)量。近年，發(fā)現(xiàn)擬南芥中屬于J蛋白家族一員的J3蛋白，可以與SVP蛋白相互作用調(diào)控SOC1和FT基因的表達(dá)量，而實(shí)現(xiàn)對(duì)成花信號(hào)的調(diào)節(jié)，在調(diào)控開(kāi)花途徑中發(fā)揮著十分重要的作用［15］。 J蛋白（J-domain protein）是廣泛存在于動(dòng)植物中的一個(gè)龐大的分子伴侶家族，該類蛋白N末端包含1個(gè)約由70個(gè)氨基酸構(gòu)成的保守序列——J結(jié)構(gòu)域而被命名為J蛋白［16-17］。J蛋白的J結(jié)構(gòu)域由4個(gè)α-螺旋組成，第2和第3個(gè)螺旋之間有一個(gè)極為保守的由組氨酸、脯氨酸、天冬氨酸組成的HPD三肽，這是J結(jié)構(gòu)域的重要特征［18］；鄰近J結(jié)構(gòu)域的是G/F結(jié)構(gòu)域（富含甘氨酸和苯丙氨酸）；之后是鋅指結(jié)構(gòu)域。根據(jù)結(jié)構(gòu)域的不同J蛋白可分為4類［19］：Ⅰ類J蛋白包含所有常見(jiàn)的結(jié)構(gòu)；Ⅱ類J蛋白缺少鋅指結(jié)構(gòu)；Ⅲ類J蛋白只有J結(jié)構(gòu)域；Ⅳ類J蛋白也被稱作J-like蛋白，這類蛋白的J結(jié)構(gòu)域沒(méi)有HPD模塊［20-21］。目前發(fā)現(xiàn)擬南芥中共有120個(gè)J蛋白，其中Ⅰ類J蛋白8個(gè)，Ⅱ類J蛋白16個(gè)，Ⅲ類J蛋白92個(gè)，Ⅳ類J蛋白4個(gè)［22］。在植物中，有關(guān)J蛋白的研究主要集中在擬南芥中，現(xiàn)有的結(jié)果表明，J蛋白可以參與多種生物學(xué)過(guò)程，包括葉綠體的發(fā)育［23-25］、植物的抗逆性［26-27］、信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)［28-29］和成花途徑［15］等。在擬南芥開(kāi)花調(diào)控中，J3蛋白通過(guò)與SVP等其他開(kāi)花關(guān)鍵因子相互作用而影響植物成花過(guò)程，SVP的突變體svp-41表現(xiàn)為早花現(xiàn)象，J3的突變j3-1表現(xiàn)為晚花現(xiàn)象，同時(shí)在j3-1和svp-41的雙突變體中，擬南芥表現(xiàn)出早花現(xiàn)象，與svp-41的單突變體的表型相似，這一結(jié)果表明J3基因通過(guò)與SVP的相互作用實(shí)現(xiàn)對(duì)開(kāi)花時(shí)間的調(diào)控［30-31］，進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)在細(xì)胞核中J3基因通過(guò)與營(yíng)養(yǎng)生長(zhǎng)短期（SVP）蛋白直接相互作用，衰減SVP蛋白與SOC1和FT調(diào)控序列的結(jié)合從而上調(diào)SOC1和FT基因的表達(dá)量［15］。竹類植物開(kāi)花周期較長(zhǎng)并具有時(shí)間上的不確定性，而且很多竹子開(kāi)花后會(huì)成片死亡，雷竹Phyllostachys violascens是一種優(yōu)良的筍用竹種，近年來(lái)，雷竹普遍開(kāi)花，開(kāi)花后部分雷竹會(huì)死亡，導(dǎo)致雷竹筍產(chǎn)量大幅度下降，帶來(lái)嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)損失。有關(guān)竹類植物開(kāi)花的研究已經(jīng)很多，但是竹子成花機(jī)制和花期調(diào)控模式至今尚未完全清楚［32］。目前，竹子中還未見(jiàn)有關(guān)J3基因生物學(xué)功能的研究，本研究以雷竹為研究對(duì)象，通過(guò)同源克隆技術(shù)獲得1個(gè)J3同源基因，經(jīng)過(guò)亞細(xì)胞定位、表達(dá)模式和功能分析，以期能為深入研究J3同源基因在竹類植物開(kāi)花調(diào)控機(jī)制中的作用提供科學(xué)依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)材料

雷竹材料來(lái)源于浙江農(nóng)林大學(xué)智能溫室大棚，選取位于同一竹鞭上的筍、花芽、花，開(kāi)花和不開(kāi)花雷竹的幼葉、成葉、莖稈，標(biāo)記分裝后放入液氮中速凍，保存在-80℃超低溫冰箱。

1.2 核糖核酸（RNA）的提取及互補(bǔ)脫氧核糖核酸（cDNA）的合成

用全 RNA提取試劑盒（鼎國(guó)）分別提取采集的雷竹材料的RNA，以提取的RNA（少于0.5 g·L-1）為模板，用Prime ScriptTMRT Master Mix（Perfect Real Time）試劑盒（Clontech），反轉(zhuǎn)錄獲得雷竹各組織的cDNA，檢測(cè)合格后，于-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>

1.3 目的基因的克隆及序列分析

通過(guò)本地Blast，從毛竹Phyllostachys edulis基因組文庫(kù)中找到一個(gè)候選基因序列號(hào)（bphylf027h21），根據(jù)該候選基因的基因序列設(shè)計(jì)引物（J3，表1），雷竹cDNA為模板，進(jìn)行聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)（PCR）擴(kuò)增，瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)PCR擴(kuò)增條帶，用膠回收試劑盒（上海生工生物公司）回收純化電泳條帶，將獲得的目的片段與pMD19（simple）-T載體置于連接儀上16℃連接1.0～3.0 h，之后轉(zhuǎn)化大腸埃希菌 Escherichia coli DH5α感受態(tài)細(xì)胞（熱轉(zhuǎn)化法），37℃恒溫培養(yǎng)箱培養(yǎng)6.0～8.0 h，挑取白色圓形單菌落，菌落PCR鑒定出陽(yáng)性單克隆，送測(cè)序，得到堿基序列。

用Vector NTI預(yù)測(cè)基因序列的開(kāi)放閱讀框（ORF）區(qū)，據(jù)此設(shè)計(jì)引物（PvJ3，表1），重復(fù)上述實(shí)驗(yàn)過(guò)程，最終測(cè)序得到雷竹PvJ3基因序列。運(yùn)用TMHMM和ProtScale分析PvJ3蛋白的結(jié)構(gòu)特征和理化性質(zhì)；Smart在線分析其蛋白的結(jié)構(gòu)域；通過(guò)Clustal X2比對(duì)雷竹PvJ3與其他物種中的J3同源基因的氨基酸序列的相似性；并用Mega 5.0構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)，選擇鄰近法（NJ），bootstrap回復(fù)次數(shù)為1 000次。

1.4 組織特異性表達(dá)檢測(cè)

用雷竹各組織部位的cDNA為模板，通過(guò)實(shí)時(shí)定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)（qRT-PCR），分析雷竹PvJ3基因的表達(dá)模式。根據(jù)實(shí)驗(yàn)要求設(shè)計(jì)目的基因的定量引物（PvJ3-1，表1），毛竹的PeNTB基因作為內(nèi)參基因［33］。各種雷竹組織做3次重復(fù)，避光條件下操作，參照SYBR Premix Ex TaqTMII（Takara）試劑盒要求加樣。PCR擴(kuò)增程序（兩步法）：預(yù)變性95℃，5 min；95℃，30 s；60℃，30 s，循環(huán)數(shù)為40。反應(yīng)結(jié)束后，分析確定數(shù)據(jù)的可靠性，選擇合適的數(shù)據(jù)，用2-ΔΔCT方法［34］對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析。

1.5 亞細(xì)胞定位

根據(jù)PvJ3基因ORF區(qū)序列（不含終止密碼子）和pCaM35S-sGFP載體序列上的酶切位點(diǎn)，在目的基因ORF區(qū)的上下游分別引入酶切位點(diǎn)SmaI和BamHI，設(shè)計(jì)引物（PvJ3-2，表1），提取pMD19-PvJ3質(zhì)粒做為模板，進(jìn)行PCR反應(yīng)，膠回收純化得到帶有酶切位點(diǎn)的基因片段與pMD19（simple）-T載體連接轉(zhuǎn)化后，陽(yáng)性單克隆送測(cè)序。將測(cè)序正確的單克隆進(jìn)行擴(kuò)大培養(yǎng)，用質(zhì)粒提取試劑盒（上海生工生物公司）提取質(zhì)粒，用限制性內(nèi)切酶SmaI和BamHI分別對(duì)pMD19-PvJ3和pCaM35S-sGFP載體質(zhì)粒進(jìn)行雙酶切實(shí)驗(yàn)，之后用T4 DNA連接酶在16℃條件下過(guò)夜連接膠回收的酶切產(chǎn)物，連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸埃希菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞，經(jīng)測(cè)序正確，瞬時(shí)表達(dá)載體PvJ3-GFP構(gòu)建成功。通過(guò)基因槍轟擊洋蔥Allium cepa表皮，25℃下避光暗培養(yǎng)1～2 d后，用熒光顯微鏡觀察綠色熒光蛋白信號(hào)，金粉的準(zhǔn)備和樣品的制備參照文獻(xiàn)［35］。

1.6 構(gòu)建轉(zhuǎn)基因過(guò)表達(dá)載體

根據(jù)PvJ3基因ORF區(qū)序列和pC1301載體（含有35 S啟動(dòng)子）的序列設(shè)計(jì)引物（PvJ3-3，表1），在目的基因ORF區(qū)的上下游同樣分別引入酶切位點(diǎn)SmaI和BamHI，構(gòu)建過(guò)表達(dá)載體pC1301-PvJ3，實(shí)驗(yàn)方法參照1.5節(jié)。

1.7 擬南芥轉(zhuǎn)基因植株檢測(cè)

通過(guò)熱轉(zhuǎn)化法將構(gòu)建成功的pC1301-PvJ3過(guò)表達(dá)載體轉(zhuǎn)入農(nóng)桿菌Agrobacterium tumefaciens GV3101感受態(tài)細(xì)胞中，提取陽(yáng)性單克隆的質(zhì)粒，重新轉(zhuǎn)化大腸埃希菌DH5α感受態(tài)細(xì)胞，再次測(cè)序檢驗(yàn)轉(zhuǎn)入重組質(zhì)粒是否正確。用已正確轉(zhuǎn)入pC1301-PvJ3重組載體的農(nóng)桿菌配制侵染液，侵染進(jìn)入花期的野生型擬南芥花序［36］，侵染3次，間隔約1周·次-1，侵染后的擬南芥即T0代植株，將消毒處理后的T0代種子均勻撒在加入潮霉素的1/2 MS（Murashige and Skoog）固體培養(yǎng)基上，潮霉素質(zhì)量濃度為100.00 mg·L-1，按照V（潮霉素溶液）∶V（1/2MS培養(yǎng)基）=1.50∶1 000.00比例加入培養(yǎng)基中，篩選抗性植株，以采用十六烷基三甲基溴化銨（CTAB）法［37］提取的抗性植株的基因組 DNA為模板，PCR鑒定出T1代陽(yáng)性植株，并對(duì)植株表型進(jìn)行初步統(tǒng)計(jì)。

表1 本研究所用的引物Table 1 PCR primers used in this study

2 結(jié)果與分析

2.1 基因的克隆和序列分析

根據(jù)在毛竹轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)庫(kù)中挑選的基因設(shè)計(jì)引物，利用同源克隆的方法，從雷竹中分離得到1個(gè)J3同源基因，命名為PvJ3，分析PvJ3基因的堿基序列，可知，其ORF區(qū)由1 260 bp個(gè)堿基組成，能編碼419個(gè)氨基酸。經(jīng)蛋白結(jié)構(gòu)域和氨基酸序列分析（圖1～2），可知PvJ3蛋白的N端有J蛋白家族典型的J結(jié)構(gòu)域，同時(shí)具有鋅指結(jié)構(gòu)域，C末端有法尼基化信號(hào)CAQQ序列。用ClustalX2軟件對(duì)不同物種的 J3同源蛋白的氨基酸進(jìn)行序列比對(duì)，結(jié)果發(fā)現(xiàn)：J3蛋白在各類物種中的相似性很高，與擬南芥J3蛋白的一致性可達(dá)80.90%（圖2）。采用臨近法構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)，結(jié)果顯示：雷竹J3蛋白與單子葉植物高粱Sorghum bicolor和玉米Zea mays的親緣關(guān)系最近，水稻Oryza sativa，大麥Hordeum vulgare和小麥Triticum aestivum次之，與雙子葉擬南芥和亞麻薺Camelina sativa的親緣關(guān)系最遠(yuǎn)（圖3）。

圖1 PvJ3蛋白結(jié)構(gòu)示意圖Figure 1 Structure diagram of PvJ3

2.2 組織特異性表達(dá)分析

通過(guò)qRT-PCR技術(shù)，對(duì)同一竹鞭上開(kāi)花和不開(kāi)花雷竹中PvJ3基因在不同組織部位的表達(dá)水平進(jìn)行分析。結(jié)果表明：PvJ3基因在同一竹鞭的筍、花芽、花，開(kāi)花與不開(kāi)花的莖稈、成葉、幼葉中均有表達(dá)。在開(kāi)花雷竹的莖稈中PvJ3基因的表達(dá)量最高，莖、花芽、花、幼葉和成葉中的表達(dá)依次降低。在不開(kāi)花雷竹的莖稈中PvJ3基因的表達(dá)量同樣也是最高，幼葉、成葉中表達(dá)量基本一樣（圖4）。

2.3 亞細(xì)胞定位結(jié)果分析

用基因槍轟擊洋蔥表皮細(xì)胞，通過(guò)熒光顯微鏡觀察瞬時(shí)表達(dá)載體PvJ3-GFP綠色熒光蛋白的信號(hào)，確定PvJ3蛋白的定位情況（圖5）。pCaM35S-GFP對(duì)照在整個(gè)洋蔥細(xì)胞里均有熒光信號(hào)，而PvJ3-GFP在細(xì)胞質(zhì)核細(xì)胞核里有熒光信號(hào)，因此推斷PvJ3蛋白主要定位在細(xì)胞質(zhì)和細(xì)胞核中。

2.4 PvJ3基因在擬南芥中的過(guò)量表達(dá)分析

構(gòu)建過(guò)表達(dá)載體pC1301-PvJ3轉(zhuǎn)化野生型擬南芥收取T0代種子，潮霉素篩選抗性植株，以抗性植株基因組DNA為模板，經(jīng)PCR檢測(cè)得到T1代擬南芥共37株。觀察統(tǒng)計(jì)T1代植株中長(zhǎng)勢(shì)較好的30株轉(zhuǎn)基因植株的表型，發(fā)現(xiàn)PvJ3基因的過(guò)表達(dá)植株開(kāi)花時(shí)間明顯早于野生型（圖6B）。統(tǒng)計(jì)結(jié)果顯示：轉(zhuǎn)基因植株開(kāi)花天數(shù)比野生型植株顯著提早（P＝6.51E-15＜0.01），平均提早3.50 d（圖6C），開(kāi)花時(shí)蓮座葉數(shù)目比野生型植株顯著減少（P＝9.24E-09＜0.01），平均減少4.43葉（圖6D），且表現(xiàn)出多主莖現(xiàn)象（圖6A）。

3 討論

高等植物成花過(guò)程存在多種誘導(dǎo)途徑，大量基因參與這些途徑的調(diào)控，成花關(guān)鍵基因的研究對(duì)于開(kāi)花過(guò)程及花發(fā)育調(diào)控有著重要意義［38］。擬南芥中研究發(fā)現(xiàn)，SOC1和FT是感知不同開(kāi)花途徑信號(hào)的整合因子，SVP是直接調(diào)控 FT和 SOC1的轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子［8,39］，J3蛋白通過(guò)與SVP直接相互作用而衰減SVP與SOC1和FT調(diào)控序列的結(jié)合從而上調(diào)SOC1和FT的表達(dá)量，參與擬南芥的成花過(guò)程，這一發(fā)現(xiàn)使得擬南芥成花調(diào)控網(wǎng)絡(luò)更加完善［15］。本研究成功從雷竹中克隆得到J3同源基因并命名為PvJ3，雷竹PvJ3所編碼的氨基酸序列與擬南芥J3蛋白氨基酸序列一致性達(dá)80.90%，對(duì)其蛋白結(jié)構(gòu)域分析可知，PvJ3擁有相對(duì)保守的J結(jié)構(gòu)域以及鋅指結(jié)構(gòu)域，可以說(shuō)明PvJ3屬于J家族中的一員。

為了研究雷竹PvJ3蛋白的功能，本研究通過(guò)qPCR技術(shù)和亞細(xì)胞定位分析該蛋白在雷竹中的表達(dá)模式和表達(dá)部位。對(duì)雷竹PvJ3基因進(jìn)行了不同組織部位特異性表達(dá)分析，結(jié)果顯示雷竹PvJ3基因在同一竹鞭的不同組織部位都有表達(dá)，已發(fā)現(xiàn)雙子葉植物擬南芥J3基因同樣在根、莖、葉、花芽、花和果莢等不同組織中表達(dá)［29］，說(shuō)明J3基因在單雙子葉植物中均表現(xiàn)出全株表達(dá)的現(xiàn)象。在相對(duì)表達(dá)量上，PvJ3基因在開(kāi)花雷竹莖稈中表達(dá)量最高，在花芽和花中的表達(dá)量降低，這與已報(bào)道的擬南芥中J3基因在花中表達(dá)量最高［15］的結(jié)果存在差異。PvJ3蛋白亞細(xì)胞定位結(jié)果顯示該蛋白定位在細(xì)胞質(zhì)和細(xì)胞核，與擬南芥中J3蛋白的亞細(xì)胞定位結(jié)果相一致［15］，擬南芥中和J3蛋白具有互作關(guān)系的SVP，SOC1和FT蛋白都是核蛋白，說(shuō)明雷竹PvJ3可能在細(xì)胞核中與這些開(kāi)花整合因子相互作用，從而對(duì)開(kāi)花途徑進(jìn)行調(diào)控。

圖2 PvJ3與其同源基因的氨基酸序列比對(duì)Figure 2 Alignment of the PvJ3 amino acid sequences from different plant species

將PvJ3基因?qū)胍吧蛿M南芥植株驗(yàn)證其功能，T1代轉(zhuǎn)基因植株的表型統(tǒng)計(jì)結(jié)果表明：轉(zhuǎn)基因擬南芥植株開(kāi)花時(shí)間明顯早于野生型植株，開(kāi)花時(shí)蓮座葉數(shù)量明顯減少（圖6 C，圖6D），而擬南芥J3基因的過(guò)表達(dá)植株和野生型植株的開(kāi)花時(shí)間并沒(méi)有明顯差別［15］，這說(shuō)明雷竹PvJ3基因可以顯著影響花期，可能是一個(gè)開(kāi)花促進(jìn)因子。值得注意的是，轉(zhuǎn)雷竹PvJ3基因擬南芥植株同時(shí)表現(xiàn)出多主莖現(xiàn)象（圖6A），這一現(xiàn)象在擬南芥J3過(guò)表達(dá)植株中并沒(méi)有被觀測(cè)到［15］。 以上結(jié)果表明， 雷竹PvJ3基因不僅在成花調(diào)控中的功能和擬南芥J3基因存在一定差異，同時(shí)還可能參與莖的發(fā)育等其他生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程，在基因功能上比擬南芥同源基因要復(fù)雜的多。

圖3 不同物種J3蛋白的系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)分析Figure 3 Phylogenetic tree analysis of J3 in different plant species

目前，J3基因功能的有關(guān)研究主要以模式植物擬南芥為研究對(duì)象，單子葉植物中還未見(jiàn)報(bào)道。通過(guò)對(duì)比J3基因在雷竹和擬南芥中的表達(dá)模式不難發(fā)現(xiàn)：雷竹PvJ3基因和擬南芥J3基因都是全株表達(dá)，同時(shí)編碼蛋白都定位在細(xì)胞質(zhì)和細(xì)胞核，這表明J3基因在不同植物中的表達(dá)部位不存在明顯差異，并且可能是一個(gè)核內(nèi)作用蛋白。在相對(duì)表達(dá)量上，雷竹PvJ3基因和擬南芥J3基因存在一定差異，同一竹鞭上開(kāi)花和不開(kāi)花雷竹中PvJ3基因在莖稈中表達(dá)量最高，而擬南芥中J3基因表達(dá)量在花中最高，這可能與雷竹PvJ3基因參與莖的發(fā)育有關(guān)。轉(zhuǎn)基因?qū)嶒?yàn)的結(jié)果表明：雷竹PvJ3基因不僅可以顯著提早擬南芥開(kāi)花時(shí)間，同時(shí)還促使擬南芥出現(xiàn)多主莖現(xiàn)象，這表明雷竹PvJ3基因很可能參與除了開(kāi)花調(diào)節(jié)以外的其他生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程的調(diào)控。由于擬南芥和竹子之間的差異很大，雷竹PvJ3基因在竹子中是否可以促進(jìn)植物提早開(kāi)花，同時(shí)還參與哪些生物學(xué)過(guò)程，需要后續(xù)研究進(jìn)一步驗(yàn)證。

圖4 PvJ3在開(kāi)花雷竹與不開(kāi)花雷竹的不同部位表達(dá)水平Figure 4 Expression of PvJ3 in different tissues of Phyllostachys violascens

圖5 PvJ3蛋白亞細(xì)胞定位結(jié)果Figure 5 Subcellular localization of PvJ3 fusion protein

圖6 PvJ3過(guò)表達(dá)擬南芥T1植株表型Figure 6 Phenotypes of the PvJ3 transgenic Arabidopsis thaliana in T1generation

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