邱裕佳，馬義勇，李光然，段思騰，李宇，王偉

（錦州醫(yī)科大學(xué)附屬第一醫(yī)院，遼寧 錦州 121000）

自體神經(jīng)移植一直以來(lái)被認(rèn)為是治療周圍神經(jīng)損傷修復(fù)的“金標(biāo)準(zhǔn)”，但是因其來(lái)源受限、造成供區(qū)功能障礙等缺點(diǎn)，使其臨床應(yīng)用受到一定的限制[1]。組織工程及干細(xì)胞治療技術(shù)的發(fā)展避免上述問(wèn)題，為周圍神經(jīng)損傷的治療帶來(lái)新的希望。成肌細(xì)胞因其取材方便、增殖能力強(qiáng)、易于培養(yǎng)、成瘤風(fēng)險(xiǎn)低、自體移植無(wú)倫理限制及低免疫排斥等優(yōu)點(diǎn)而備受關(guān)注[2]。新近研究表明，成肌細(xì)胞能夠被睫狀神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子（ciliary neurotrophic factor，CNTF）體外誘導(dǎo)去分化[3]，且去分化成肌細(xì)胞能夠被視黃酸（retinoic acid，RA）誘導(dǎo)成具有神經(jīng)表型的細(xì)胞[4]。目前，關(guān)于類神經(jīng)分化的研究雖較多，但是相關(guān)機(jī)制尚不清楚。神經(jīng)元限制性沉默因子（neuron-restrictive silencer factor，REST）在神經(jīng)細(xì)胞的發(fā)育分化過(guò)程中發(fā)揮重要作用，能與靶基因特異結(jié)合而抑制神經(jīng)元的分化[5-6]；REST與類神經(jīng)分化存在怎樣的聯(lián)系，目前尚未見(jiàn)相關(guān)報(bào)道。本研究采用CNTF聯(lián)合RA誘導(dǎo)成肌細(xì)胞類神經(jīng)分化，并初步探討該過(guò)程與REST可能存在的關(guān)系。

1 材料與方法

1.1 主要材料與儀器

C2C12細(xì)胞株（美國(guó)ATCC公司），胎牛血清FBS（美國(guó)Sera Pro公司），DMEM/F12、胰蛋白酶、青鏈霉素（美國(guó)Hy Clone公司），Neurobasal培養(yǎng)基、B27（美國(guó)Gibco公司），表皮生長(zhǎng)因子EGF、堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子bFGF、CNTF（美國(guó)Pepro Tech公司），谷氨酰胺、RA、DAPI染料（美國(guó)Sigma公司），肝素（PBS國(guó)產(chǎn)），兔抗NSE多克隆抗體，兔抗SOX1多克隆抗體，兔抗GFAP多克隆抗體，兔抗Desmin多克隆抗體，兔抗Myogenin多克隆抗體，兔抗P21多克隆抗體，兔抗actin多克隆抗體（美國(guó)ABCAM公司），山羊抗兔二抗（美國(guó)Earthox公司），蛋白提取試劑盒、蛋白定量試劑盒、SDS-PAGE凝膠試劑盒（上海碧云天生物技術(shù)有限公司），蛋白Maker（美國(guó)Thermo Fisher公司）。

細(xì)胞培養(yǎng)箱（美國(guó)Thermo Fisher），超凈工作臺(tái)（海爾公司），倒置相差顯微鏡（日本Olympus公司），紫外分光光度計(jì)（瑞士Tecan公司），熒光顯微鏡（德國(guó)Leica公司），全自動(dòng)電泳儀（美國(guó)Bio-Rad公司），凝膠成像系統(tǒng)（美國(guó)Bio-Rad公司）。

1.2 方法

1.2.1 成肌細(xì)胞去分化及類神經(jīng)誘導(dǎo)分化按5×105個(gè)/ml接種C2C12于培養(yǎng)皿，以成肌細(xì)胞生長(zhǎng)培養(yǎng)基（DMEM/F12培養(yǎng)基+10%胎牛血清+1%雙抗）培養(yǎng)，待生長(zhǎng)到70%匯合時(shí)開(kāi)始誘導(dǎo)分化，誘導(dǎo)方案見(jiàn)附表。

1.2.2 細(xì)胞形態(tài)學(xué)觀察分別于誘導(dǎo)第0、3、5、8及11天時(shí)倒置相差顯微鏡下觀察各組細(xì)胞數(shù)量、形態(tài)、生長(zhǎng)狀況等相關(guān)變化，記錄并采集圖片。

1.2.3 細(xì)胞免疫熒光鑒定誘導(dǎo)后的細(xì)胞細(xì)胞以PBS漂洗3次去除培養(yǎng)基，4%多聚甲醛室溫固定15 min后PBS漂洗3次，0.1% Triton-100室溫通透胞膜10 min，1%牛血清白蛋白室溫封閉60 min，加入稀釋的一抗 NSE（1︰ 500）、Sox1（1︰ 500）、GFAP（1︰500）4℃孵育過(guò)夜（18～20 h），二抗（1︰500）室溫孵育2 h，DAPI染料（10 μg/ml）染核5 min，熒光防淬滅劑封片。以PBS代替一抗作為陰性對(duì)照組。熒光顯微鏡下觀察并采集圖片。為進(jìn)一步鑒定神經(jīng)球，取聯(lián)合誘導(dǎo)11 d的神經(jīng)球細(xì)胞以胰酶消化后吹打成單個(gè)懸浮細(xì)胞，并以神經(jīng)生長(zhǎng)培養(yǎng)基+2% FBS培養(yǎng)1 d，待細(xì)胞貼壁后予以神經(jīng)干細(xì)胞標(biāo)志物nestin（1︰100）熒光染色鑒定。

1.2.4 Western blot檢測(cè)特異性蛋白表達(dá)水平取各組細(xì)胞加入裂解液裂解30 min后，以離心半徑3 cm，12 000 r/min離心30 min，取上清液，BCA法蛋白定量后調(diào)整至同等濃度，每孔上樣30 μg，經(jīng)10% SDS-PAGE凝膠電泳后轉(zhuǎn)移至PVDF膜，1%BSA封閉1 h，加 入 TBST稀 釋 一 抗 NSE（1︰ 500）、Sox1（1︰1 000）、GFAP（1 ︰ 1 000）、Desmin（1 ︰ 1 000）、Myogenin（1 ︰ 1000）、P21（1 ︰ 500）、REST（1 ︰500）、β-actin（1︰ 5 000）4℃過(guò)夜，TBST 洗膜 3次，加入二抗（1︰1 000）室溫孵育2 h，TBST洗膜3次，ECL顯色顯影拍照。

附表 成肌細(xì)胞類神經(jīng)分化誘導(dǎo)方案

1.2.5 流式細(xì)胞術(shù)分析誘導(dǎo)后陽(yáng)性細(xì)胞胰酶消化聯(lián)合誘導(dǎo)組細(xì)胞并制成單細(xì)胞懸液，收集單細(xì)胞懸液，1 500 r/min離心5 min，棄上清液，4%多聚甲醛4℃固定30 min，0.1% Triton-100室溫通透10 min，加入稀釋好的一抗（NSE，1︰500），對(duì)照管加入對(duì)應(yīng)于一抗的正常實(shí)驗(yàn)動(dòng)物IgG，輕輕吹打混勻，4℃孵育2 h。冷PBS離心洗滌去除多余的未結(jié)合的特異性抗體。加入稀釋的熒光素標(biāo)記的二抗（1︰100）。吹打混勻，4℃孵育30 min，避光。冷PBS離心洗滌后重懸浮于500 μl PBS中，混勻，上機(jī)檢測(cè)。

1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

數(shù)據(jù)分析采用SPSS 19.0統(tǒng)計(jì)軟件，計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差（±s）表示，采用t檢驗(yàn)，P＜0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 神經(jīng)球形成過(guò)程

未誘導(dǎo)成肌細(xì)胞呈長(zhǎng)梭形或不規(guī)則形；誘導(dǎo)3 d后，細(xì)胞生長(zhǎng)狀態(tài)良好，未見(jiàn)細(xì)胞融合形成肌管；誘導(dǎo)5 d后，誘導(dǎo)組細(xì)胞折光性增加，體形拉長(zhǎng)；誘導(dǎo)8 d左右，誘導(dǎo)組細(xì)胞開(kāi)始聚集呈團(tuán)簇樣生長(zhǎng)，隨著培養(yǎng)時(shí)間延長(zhǎng)，于誘導(dǎo)第11天左右，部分團(tuán)塊細(xì)胞可呈懸浮生長(zhǎng)，表現(xiàn)出神經(jīng)球樣生長(zhǎng)特性。見(jiàn)圖1。

2.2 CNTF誘導(dǎo)成肌細(xì)胞去分化

CNTF誘導(dǎo)成肌細(xì)胞3 d后，Western blot檢測(cè)結(jié)果顯示，CNTF誘導(dǎo)后成肌細(xì)胞分化相關(guān)蛋白Myogenin及P21表達(dá)均低于對(duì)照組（t=6.811和6.665，P=0.002和0.003）。表明CNTF成功誘導(dǎo)成肌細(xì)胞去分化，本結(jié)果與以往研究報(bào)道一致[3]。見(jiàn)圖2。

2.3 細(xì)胞免疫熒光鑒定誘導(dǎo)神經(jīng)球

對(duì)聯(lián)合誘導(dǎo)后的神經(jīng)球行免疫熒光染色，可見(jiàn)誘導(dǎo)組細(xì)胞能夠被神經(jīng)細(xì)胞相關(guān)特異性標(biāo)志物NSE、SOX1、GFAP標(biāo)記，且神經(jīng)球部分呈現(xiàn)熒光高亮。對(duì)照組中未見(jiàn)神經(jīng)球形成，且細(xì)胞不能被熒光標(biāo)記（見(jiàn)圖3）。神經(jīng)球離散后接種細(xì)胞生長(zhǎng)狀態(tài)良好，部分細(xì)胞可伸出突觸，且熒光染色顯示重新接種后的細(xì)胞仍 帶有神經(jīng)干細(xì)胞標(biāo)志物nestin（見(jiàn)圖4）。

圖1 成肌細(xì)胞誘導(dǎo)為神經(jīng)球的變化過(guò)程 （×100）

圖2 CNTF誘導(dǎo)后成肌細(xì)胞分化相關(guān)蛋白變化 （n =3）

圖3 誘導(dǎo)神經(jīng)球 （免疫熒光染色×100）

圖4 神經(jīng)球離散后接種細(xì)胞 （免疫熒光染色×200）

圖5 聯(lián)合誘導(dǎo)后細(xì)胞神經(jīng)特異性標(biāo)志物及成肌細(xì)胞標(biāo)志物表達(dá)變化 （n =3）

2.4 聯(lián)合誘導(dǎo)后細(xì)胞神經(jīng)特異性標(biāo)志物及成肌細(xì)胞標(biāo)志物表達(dá)變化

對(duì)聯(lián)合誘導(dǎo)后的神經(jīng)球行Western blot檢測(cè)，結(jié)果顯示，聯(lián)合誘導(dǎo)后細(xì)胞GFAP、SOX1、NSE表達(dá)高于對(duì)照組（t=5.192、3.401和6.303，P=0.007、0.003和0.003），且成肌細(xì)胞標(biāo)志物Desmin表達(dá)低于對(duì)照組（t=3.646，P=0.022）。說(shuō)明聯(lián)合誘導(dǎo)后細(xì)胞由成肌細(xì)胞類型向類神經(jīng)細(xì)胞類型轉(zhuǎn)化。見(jiàn)圖5。

2.5 聯(lián)合誘導(dǎo)后細(xì)胞流式細(xì)胞儀檢測(cè)結(jié)果

對(duì)聯(lián)合誘導(dǎo)后的細(xì)胞用流式細(xì)胞儀分析表面標(biāo)志物NSE，結(jié)果顯示聯(lián)合誘導(dǎo)后熒光標(biāo)記陽(yáng)性細(xì)胞率最高達(dá)84%，明顯高于對(duì)照組（t=45.81，P=0.000）。見(jiàn)圖6。

2.6 聯(lián)合誘導(dǎo)后REST蛋白水平變化

聯(lián)合誘導(dǎo)后的神經(jīng)球行Western blot檢測(cè)結(jié)果顯示，聯(lián)合誘導(dǎo)后細(xì)胞REST表達(dá)水平低于對(duì)照組（t=4.110，P=0.015）。REST是參與神經(jīng)細(xì)胞發(fā)育的重要調(diào)控基因，REST水平降低利于細(xì)胞向神經(jīng)細(xì)胞類型分化[5-6]。由此可得出聯(lián)合誘導(dǎo)成肌細(xì)胞類神經(jīng)分化可能是通過(guò)干預(yù)REST基因的表達(dá)變化來(lái)實(shí)現(xiàn)。見(jiàn)圖7。

圖6 聯(lián)合誘導(dǎo)后細(xì)胞流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)結(jié)果 （n =3）

圖7 聯(lián)合誘導(dǎo)后REST蛋白水平變化 （n =3）

3 討論

隨著誘導(dǎo)多能干細(xì)胞的發(fā)現(xiàn)[7]，細(xì)胞治療在神經(jīng)損傷修復(fù)領(lǐng)域中越來(lái)越受到關(guān)注。目前大量研究已證實(shí)，從胚胎干細(xì)胞到各種類型的成體干細(xì)胞再到誘導(dǎo)多能干細(xì)胞均在神經(jīng)修復(fù)中展示良好的應(yīng)用前景[8-12]；但是上述各種細(xì)胞存在各種問(wèn)題，例如倫理爭(zhēng)議、取材困難、基因表達(dá)不穩(wěn)定等[13]，目前還不能作為十分理想的神經(jīng)修復(fù)的細(xì)胞來(lái)源，由此拓寬神經(jīng)損傷細(xì)胞治療的細(xì)胞選擇范圍十分必要。成肌細(xì)胞是骨骼肌中具有增殖分化潛能的細(xì)胞，1961年由MUAOR首次從青蛙骨骼肌纖維中分離出來(lái)[14]。成肌細(xì)胞具有多向分化潛能[15]且取材方便、增殖能力強(qiáng)、易于培養(yǎng)、成瘤風(fēng)險(xiǎn)低、自體移植無(wú)倫理限制及低免疫排斥等優(yōu)點(diǎn)[2]，已成為細(xì)胞治療在神經(jīng)損傷修復(fù)領(lǐng)域的新熱點(diǎn)。

新近研究表明，成肌細(xì)胞在外源性CNTF的作用下能夠達(dá)到去分化狀態(tài)[3]，且成肌細(xì)胞能夠被小分子化合物reversine誘導(dǎo)去分化進(jìn)而被RA誘導(dǎo)為類神經(jīng)樣細(xì)胞[4]。RA能夠調(diào)節(jié)各種轉(zhuǎn)錄因子的表達(dá)，在改變干細(xì)胞形態(tài)及轉(zhuǎn)錄特征上充當(dāng)著開(kāi)關(guān)作用，已被廣泛應(yīng)用于細(xì)胞誘導(dǎo)分化的研究中[16-18]。本研究采用CNTF聯(lián)合RA誘導(dǎo)成肌細(xì)胞類神經(jīng)分化，試圖獲得成肌細(xì)胞類神經(jīng)分化的新方法。研究結(jié)果表明，CNTF能夠成功誘導(dǎo)成肌細(xì)胞去分化，聯(lián)合RA及神經(jīng)生長(zhǎng)微環(huán)境后成肌細(xì)胞能夠形成神經(jīng)球樣結(jié)構(gòu)，并表達(dá)NSE、SOX1、GFAP，且成肌細(xì)胞標(biāo)志物Desmin表達(dá)降低，說(shuō)明聯(lián)合誘導(dǎo)后細(xì)胞表型已發(fā)生轉(zhuǎn)變，細(xì)胞已由肌源性細(xì)胞轉(zhuǎn)變?yōu)轭惿窠?jīng)樣細(xì)胞。將神經(jīng)球離散后接種再次檢測(cè)仍然表達(dá)神經(jīng)干細(xì)胞標(biāo)志nestin，說(shuō)明誘導(dǎo)后細(xì)胞表型穩(wěn)定，需要注意的是nestin陽(yáng)性細(xì)胞的形狀并不完全一致，可能因?yàn)橹匦陆臃N后神經(jīng)球細(xì)胞可能分化為不同類型神經(jīng)樣細(xì)胞；此外，部分細(xì)胞經(jīng)誘導(dǎo)后仍存在成肌細(xì)胞樣特性，可能與表觀遺傳記憶有關(guān)[19]。為進(jìn)一步探討上述聯(lián)合誘導(dǎo)過(guò)程可能涉及內(nèi)在機(jī)制，發(fā)現(xiàn)REST作為調(diào)節(jié)神經(jīng)細(xì)胞分化的重要轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子一直以來(lái)備受關(guān)注，WATANABE等將REST-VP16重組轉(zhuǎn)錄因子轉(zhuǎn)入C2C12獲得神經(jīng)元樣表型且具有電生理活動(dòng)的細(xì)胞[20]；GOPALAKRISHNAN等通過(guò)該方式在小鼠小腦中獲得特定亞型的谷氨酸能神經(jīng)元[21]。由此本研究聯(lián)合誘導(dǎo)后成肌細(xì)胞形成的神經(jīng)球的REST表達(dá)進(jìn)行檢測(cè)分析，結(jié)果顯示誘導(dǎo)后形成的神經(jīng)球與對(duì)照組比較REST表達(dá)下調(diào)，說(shuō)明REST參與成肌細(xì)胞類神經(jīng)分化過(guò)程，可能是該過(guò)程的調(diào)控機(jī)制之一。

通過(guò)基因調(diào)控的方式可獲得特定表型細(xì)胞，但因改變內(nèi)源性基因序列，使得其臨床應(yīng)用受到阻礙。本研究以非基因調(diào)控方式轉(zhuǎn)變成肌細(xì)胞為類神經(jīng)細(xì)胞表型為神經(jīng)組織工程種子細(xì)胞的選擇提供嘗試。近期國(guó)外學(xué)者通過(guò)高通量篩選的方式已找到針對(duì)調(diào)控REST表達(dá)的化合物[22]，若能以化合物調(diào)控REST表達(dá)實(shí)現(xiàn)將非神經(jīng)細(xì)胞轉(zhuǎn)變?yōu)樯窠?jīng)細(xì)胞干細(xì)胞或者特定類型神經(jīng)細(xì)胞，將能做到盡可能避免外源性的基因及因子的引入，極大地促進(jìn)神經(jīng)損傷的治療，更是為臨床細(xì)胞治療的應(yīng)用提供了保障。

綜上所述，本研究初步證實(shí)CNTF聯(lián)合RA可誘導(dǎo)成肌細(xì)胞類神經(jīng)分化，為神經(jīng)組織工程種子細(xì)胞的選擇提供新的嘗試；并進(jìn)一步探討該誘導(dǎo)過(guò)程可能與REST調(diào)控有關(guān)，為下一步研究更為優(yōu)良的種子細(xì)胞提供思路和方向。

[1] FARONI A, SMITH R J, LU L, et al. Human Schwann-like cells derived from adipose-derived mesen-chymal stem cells rapidly de-differentiate in the absence of stimulating medium[J]. Eur J Neurosci, 2016, 43(3): 417-430.

[2] DURRANI S, KONOPLYANNIKOV M, ASHRAF M, et al.Skeletal myoblasts for cardiac repair[J]. Regen Med, 2010, 5(6):919-932.

[3] ZHANG P, CHEN X P. The regulation of myoblast plasticity and its mechanism[J]. Chinese Journal of Applied Physiology, 2012,28(6): 524-531.

[4] LEE E K, BAE G U, YOU J S, et al. Reversine increases the plasticity of lineage-committed cells toward neuroectodermal lineage[J]. J Biol Chem, 2009, 284(5): 2891-2901.

[5] ZHAO Y, ZHU M, YU Y, et al. Brain REST/NRSF Is Not Only a Silent Repressor but Also an Active Protector[J]. Mol Neurobiol,2017, 54(1): 541-550.

[6] YANG Y J, BALTUS A E, MATHEW R S, et al. Microcephaly gene links trithorax and REST/NRSF to control neural stem cell proliferation anddifferentiation[J]. Cell, 2012, 151(5): 1097-1112.

[7] TAKAHASHI K, YAMANAKA S. Induction of pluripotent stem cells from mouse embry-onic and adult fibroblast cultures bydefined factors[J]. Cell, 2006, 126(4): 663-676.

[8] ZHANG H T, LIU Z L, YAO X Q, et al. Neural differentiation ability of mesenchymal stromal cells from bone marrow and adipose tissue: a comparative study[J]. Cytotherapy, 2012, 14(10):1203-1214.

[9] LAVASANI M, THOMPSON S D, POLLETT J B, et al. Human muscle-derived stem/progenitor cells promote functional murine peripheral nerveregeneration[J]. J Clin Invest, 2014, 124(4): 1745-1756.

[10] GROCHMAL J, DHALIWAL S, STYS P K, et al. Skin-derived precursor schwann cell myelination ca-pacity in focal tibial demyelination[J]. Muscle Nerve, 2014, 50(2): 262-272.

[11] LEE E J, XU L, KIM G H, et al. Regeneration of peripheral nerves by transplanted sphere of human mesenchymal stem cellsderived from embryonic stem cells[J]. Biomaterials, 2012, 33(29): 7039-7046.

[12] IKEDA M, UEMURA T, TAKAMATSU K, et al. Acceleration of peripheral nerve regeneration using nerve conduits in combination with inducedpluripotent stem cell technology and a basic fibroblast growth factor drug delivery system[J]. J Biomed Mater Res A, 2014, 102(5): 1370-1378.

[13] JIANG L, JONES S, JIA X. Stem Cell Transplantation for Peripheral Nerve Regeneration: Cur-rent Options and Opportunities[J]. Int J Mol Sci, 2017, 18(1): 94.

[14] MAURO A. Satellite cell of skeletal muscle fibers[J]. J Biophys Biochem Cytol, 1961(9): 493-495.

[15] ASAKURA A, KOMAKI M, RUDNICKI M. Muscle satellite cells are multipotential stem cells that ex-hibit myogenic, osteogenic,andadipogenic differentiation[J]. Differentiation, 2001, 68(4/5):245-253.

[16] WANG N, XU Y, QIN T, et al. Myocardin-related transcription factor-a is a key regulator in retinoic acid-induced neurallikedifferentiation of adult bone marrow-derived mesenchymal stem cells[J]. Gene, 2013, 523(2): 178-186.

[17] YU Z, WU S, LIU Z, et al. Sonic hedgehog and retinoic Acid induce bone marrow-derived stem cells to differentiate intoglutamatergic neural cells[J]. J Immunoassay Immunochem,2015, 36(1): 1-15.

[18] ZHANG K, LIU Z, LI G, et al. Electro-acupuncture promotes the survival and differentiation of transplanted bone marrowmesenchymal stem cells pre-induced with neurotrophin-3 and retinoic acid in gelatin spongescaffold after rat spinal cord transection[J]. Stem Cell Rev, 2014, 10(4): 612-625.

[19] BAR-NUR O, RUSS H A, EFRAT S, et al. Epigenetic memory and preferential lineage-specific differentiation in induced pluripotent stemcells derived from human pancreatic islet beta cells[J]. Cell Stem Cell, 2011, 9(1): 17-23.

[20] WATANABE Y, KAMEOKA S, GOPALAKRISHNAN V, et al. Conversion of myoblasts to physiologically active neuronal phenotype[J]. Genes Dev, 2004, 15, 18(8): 889-900.

[21] GOPALAKRISHNAN V, BIE B, SINNAPPAH-KANG N D, et al.Myoblast-derived neuronal cells form glutamatergic neurons in the mouse cerebellum[J]. Stem Cells, 2010, 28(10): 1839-1847.

[22] CHARBORD J, POYDENOT P, BONNEFOND C, et al. High throughput screening for inhibitors of REST in neural derivatives of human embryonic stemcells reveals a chemical compound that promotes expression of neuronal genes[J]. Stem Cells, 2013,31(9): 1816-1828.