余 波, 傅科鶴, 杜尚廣
(南昌師范學(xué)院生物系,江西南昌 330032)
植物內(nèi)生菌是一類廣泛分布在植物組織內(nèi),對植物不產(chǎn)生明顯病理影響的微生物類群,而國內(nèi)外對植物內(nèi)生菌的詳細(xì)研究始于20世紀(jì)80年代[1]。絕大部分內(nèi)生菌的生活史都在植物體內(nèi)完成,而植物體內(nèi)是一個相對封閉的內(nèi)環(huán)境:充足的養(yǎng)分、適當(dāng)?shù)难鯕狻⑸倭康母偁帉κ?。在植?內(nèi)生菌長期共生過程中,內(nèi)生菌能夠利用環(huán)境中的前體物質(zhì)合成與植物相似的次生代謝產(chǎn)物,這種特性在一些重要的藥用植物中顯得尤其重要和有意義。如傅科鶴等從產(chǎn)抗癌藥物紫杉醇的紅豆杉內(nèi)生真菌中分離得到1株曲霉屬內(nèi)生真菌,從其發(fā)酵產(chǎn)物中獲得5種化學(xué)成分,其中一種對腫瘤細(xì)胞有明顯的抑制作用[2]。在我國,圍繞藥用植物內(nèi)生菌的生理活性物質(zhì)研究是當(dāng)前的熱點。
互葉白千層(Melaleucaleucadendron)是桃金娘科(Myrtaceae)白千層屬(Melaleue)的一種多年生常綠小灌木,原產(chǎn)于澳大利亞東部的昆士蘭州和新南威爾士州的北部海岸一帶。20世紀(jì)80年代后,我國、印度和東南亞的一些國家開始引種?;ト~白千層新鮮枝葉提取得到的精油俗稱茶樹精油,它是一種廣譜的殺菌劑,其產(chǎn)品廣泛應(yīng)用于化妝、醫(yī)藥、食品等行業(yè),具有較高的經(jīng)濟價值[3]。茶樹精油的廣譜抑菌特性,使其在替代化學(xué)農(nóng)藥方面具有較大的應(yīng)用潛力[4]。目前,研究認(rèn)為茶樹精油通過破壞膜結(jié)構(gòu)[5],抑制微生物呼吸途徑中線粒體酶、脫氫酶的活性,從而影響細(xì)胞呼吸作用[6]、干擾胞內(nèi)大分子物質(zhì)活性[7]等形式達(dá)到殺菌作用。然而,對于其詳細(xì)的殺菌機制研究還不足。由于長期與植物共生,互葉白千層內(nèi)生真菌對精油都具有一定的抗性。從中篩選高耐受精油的菌株具有更大的概率,可以縮短篩選周期,提高效率。因此,本研究從互葉白千層內(nèi)生真菌中篩選高耐受精油的真菌,并對互葉白千層內(nèi)生真菌的多樣性進(jìn)行初步分析。后期將挑選同屬內(nèi)抗性強弱有明顯差異的2株菌株進(jìn)行比較基因組學(xué)及轉(zhuǎn)錄組的研究,從分子水平上解釋茶樹精油的抑菌機制,深化對茶樹精油抑菌作用機制的理解,為更高效地利用茶樹精油抑菌提供理論依據(jù)。
1.1.1植株及精油互葉白千層采自江西省撫州地區(qū),4-松油醇型;互葉白千層精油經(jīng)蒸餾法提取所得。
1.1.2試劑氨芐青霉素、鏈霉素購自Amresco公司,配成100 mg/mL,0.45 μm濾膜無菌過濾,分裝成小管,-20 ℃凍存?zhèn)溆谩?/p>
1.1.3培養(yǎng)基PDA培養(yǎng)基:馬鈴薯去皮200 g,葡萄糖 20 g,瓊脂15 g,水1 L。
馬丁氏培養(yǎng)基:蛋白胨5.0 g,葡萄糖10.0 g,K2HPO4·3H2O 1.0 g,MgSO4·7H2O 0.5 g,1%孟加拉紅水溶液 3.3 mL,瓊脂粉15.0 g,蒸餾水1.0 L。
查氏培養(yǎng)基:NaNO33.00 g,K2HPO4·3H2O 1.00 g,MgSO4·7H2O 0.50 g,KCl 0.50 g,F(xiàn)eSO40.01 g,蔗糖 30.00 g,瓊脂15.00 g,蒸餾水1.00 L。
1.2.1內(nèi)生真菌分離、純化分別取互葉白千層的根、莖、葉部位,用清水洗凈后置于紗布上晾干;在無菌操作臺上,將根、莖、葉浸沒于裝有20%次氯酸鈉的培養(yǎng)皿中2 min,然后轉(zhuǎn)移至無菌水中漂洗1 min,再轉(zhuǎn)至70%乙醇中30 s,最后用無菌水漂洗1 min;表面消毒處理后的樣品轉(zhuǎn)至無菌濾紙上,吸干水分后剪成1 m3大小的組織塊,接種于含抗生素的孟加拉紅培養(yǎng)基上,每皿間隔放置10個樣品,28 ℃倒置培養(yǎng),及時將生長的菌株轉(zhuǎn)移至新的培養(yǎng)基。
1.2.2抑菌試驗茶樹精油用甲醇稀釋到35%(體積分?jǐn)?shù))的濃度后,取200 μL涂布于PDA平板(直徑8.5 cm)上,晾干10 min后,接種內(nèi)生真菌菌餅(直徑0.5 cm),每皿接5個,重復(fù)3次,28 ℃倒置培養(yǎng),及時測量菌落直徑,以甲醇作為空白對照。
1.2.3真菌鑒定
1.2.3.1形態(tài)學(xué)鑒定挑取活化后的真菌菌絲,分別接種于PDA與察氏培養(yǎng)基中培養(yǎng),肉眼觀察菌落正反面形態(tài)特征;采用插片法及玻璃紙法進(jìn)行孢子形態(tài)觀察,參照《真菌鑒定手冊》進(jìn)行菌種形態(tài)學(xué)鑒定。
1.2.3.2分子生物學(xué)鑒定采用CTAB法提取真菌基因組DNA后,通過ITS1~I(xiàn)TS4引物對擴增后,測序,NCBI比對后鑒定菌種。
由表1可知,共分離純化獲得內(nèi)生真菌149株,其中根中分離到35株,莖中分離到102株,葉中分離到12株。經(jīng)形態(tài)學(xué)鑒定,共分為鏈格孢屬、青霉屬、曲霉屬、炭疽屬、鐮孢霉屬、木霉屬等6屬。其中根部主要是鐮孢霉屬、木霉屬等土壤習(xí)居種類占優(yōu)勢;莖部優(yōu)勢菌群為鏈格孢屬,且總體數(shù)量最多;葉部菌群種類較單一,數(shù)量很少,主要是炭疽屬與鏈格孢屬2類。
表1 互葉白千層內(nèi)生真菌鑒定
2.2.1抑菌精油濃度的確定茶樹精油具有廣譜的抑菌效果,對細(xì)菌、真菌都有明顯的抑制能力。然而,不同來源及不同萃取手段獲得的精油抑菌IC50是不同的。為了確定合適的抑菌濃度,設(shè)置3種不同的精油濃度(甲醇溶解)——15%、35%、50%,隨機挑選40株內(nèi)生真菌進(jìn)行最佳濃度確定。表2結(jié)果表明,50%濃度過高,只有1株(2.5%)菌株能夠生長,獲得耐受菌株的數(shù)量過少,不利于后續(xù)研究;15%濃度偏低,32株菌株(80%)都能夠生長,與不加精油的培養(yǎng)基(對照)相比,只有3株受到10%以上的抑制;35%濃度有5株菌株(20%)能夠生長,完全不受抑制的有2株。綜合考慮篩選數(shù)量與濃度的關(guān)系,挑選35%的精油用于耐受菌株的篩選。
表2 抑菌精油濃度的確定
注:抑制率=(對照培養(yǎng)基菌落直徑-對應(yīng)的精油培養(yǎng)基菌落直徑)/對照培養(yǎng)基菌落直徑×100%。
2.2.2耐受精油內(nèi)生真菌篩選通過精油抗性篩選,從149株內(nèi)生真菌中篩選得到5株能夠在含35%精油的PDA平板上正常生長的菌株(表3)。其中編號為Ml10的菌株抗性最強,生長4 d后菌落直徑可達(dá)到5.30 cm,顯著高于其他4株菌株(P<0.05)。
表3 互葉白千層內(nèi)生真菌耐精油菌株篩選
注:同列數(shù)據(jù)后不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)。
2.3.1菌株Ml10形態(tài)學(xué)鑒定菌株Ml10在PDA平板上生長迅速,4 d即長滿平板并開始產(chǎn)孢。菌落初期為白色,氣生菌絲發(fā)達(dá),菌落中間由內(nèi)到外產(chǎn)綠色孢子,菌落背面無色。孢子梗環(huán)狀排列,主枝樹狀,分枝多,瓶梗短,基部細(xì),分生孢子球形(圖1)。菌株Ml10初步鑒定為康寧木霉(Trichodemakonigii)。
2.3.2菌株18S rDNA鑒定通過CTAB法提取菌株Ml10的DNA(圖2-A),然后以引物ITS1F/ITS4R擴增其ITS序列(圖2-B)。結(jié)果表明,擴增片段為610 bp;通過測序后NCBI比對分析,該菌株與康寧木霉的ITS序列100%配對,結(jié)合形態(tài)學(xué)鑒定結(jié)果,確定該菌株為康寧木霉。
本研究分離獲得的菌株Ml10來自互葉白千層的根部,通過形態(tài)學(xué)鑒定后屬于木霉屬真菌。木霉菌屬于土壤常見的生防菌,在多種植物根部都有定植現(xiàn)象[8]。由于長期定植在互葉白千層根部,內(nèi)生菌對精油具有明顯的抗性[9]。后期研究將通過比較基因組學(xué)、蛋白質(zhì)組學(xué)及代謝組學(xué)技術(shù),從DNA和蛋白質(zhì)水平分析這些菌株抗茶樹精油的機制,從而可以補充和完善茶樹精油抑制真菌機制理論,為更高效地利用茶樹精油提供理論依據(jù)[10]。
參考文獻(xiàn):
[1]Nisa H,Kamili A N,Nawchoo I A,et al. Fungal endophytes as prolific source of phytochemicals and other bioactive natural products:a review[J]. Microbial Pathogenesis,2015,82:50-59.
[2]傅科鶴,章初龍,劉樹蓬,等. 南方紅豆杉內(nèi)生真菌的抗菌活性[J]. 植物保護(hù)學(xué)報,2006,33(3):268-272.
[3]Janssen A M,Scheffer J J C,Svendsen A B. Antimicrobial activities of essential oils[J]. Pharmaceutisch Weekblad,1987,9(4):193-197.
[4]Thomsen N A,Hammer K A,Riley T V,et al. Effect of habituation to tea tree (Melaleucaalternifolia) oil on the subsequent susceptibility ofStaphylococcusspp. to antimicrobials,triclosan,tea tree oil,terpinen-4-ol and carvacrol[J]. International Journal of Antimicrobial Agents,2013,41(4):343-351.
[5]Rodney J,Sahari J,Kamal M S M,et al. Thermochemical and mechanical properties of tea tree (Melaleucaalternifolia) fibre reinforced tapioca starch composites[J]. E-Polymers,2015,15(6):401-409.
[6]Cox S D,Mann C M,Markham J L,et al. Determining the antimicrobial actions of tea tree oil[J]. Molecules,2001,6(2):87-91.
[7]Chami N,Bennis S,Chami F,et al. Study of anticandidal activity of carvacrol and eugenolinvitroandinvivo[J]. Molecular Oral Microbiology,2005,20(2):106-111.
[8]Harman G E.Trichoderma—Not just for biocontrol anymore[J]. Phytoparasitica,2011,39(2):103-108.
[9]Deshmukh S K,Verekar S A,Bhave S V. Endophytic fungi:a reservoir of antibacterials[J]. Frontiers in Microbiology,2015,5:715.
[10]Ramadass M,Thiagarajan P. A review onMelaleucaalternifolia(tea tree) oil[J]. International Journal of Pharma and Bio Sciences,2015,6(4):655-661.