安志遠(yuǎn),趙攀峰,李 聃,周懷谷,郭育林
(1.上海公安學(xué)院,上海200137;2.上海市公安局物證鑒定中心 法醫(yī)物證學(xué)現(xiàn)場(chǎng)應(yīng)用技術(shù)公安部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室上海市現(xiàn)場(chǎng)物證重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,上海200083;3.無(wú)錫中德美聯(lián)生物技術(shù)有限公司,江蘇 無(wú)錫214174)
死亡時(shí)間(postmortem interval, PMI)的推斷一直是法醫(yī)學(xué)工作實(shí)踐和科研攻關(guān)的一項(xiàng)重、難點(diǎn)課題。以往的PMI推斷研究主要聚焦于個(gè)體死后尸體現(xiàn)象和尸體內(nèi)源性物質(zhì)變化規(guī)律,近年來(lái)微生物在尸體腐敗過(guò)程中的作用成為了一項(xiàng)研究熱點(diǎn)。大腸桿菌(Escherichia coli,E.coli)是人和動(dòng)物腸道中的正常棲居菌,嬰兒出生后即隨哺乳進(jìn)入腸道,與人終身相伴。在個(gè)體死后,大腸桿菌屬于具有較強(qiáng)分解蛋白質(zhì)能力的腐敗菌種,且由于其周身鞭毛能運(yùn)動(dòng),最易出現(xiàn)細(xì)菌移位(bacterial translocation, BT)[1-3]。故本實(shí)驗(yàn)對(duì)SD大鼠心血中大腸桿菌LacZ基因含量的檢測(cè)方法及其隨PMI變化的規(guī)律進(jìn)行了一系列初步研究,探討利用心血中LacZ基因含量推斷PMI的可行性。
EZ1 DNA Investigator Kit(美國(guó) Promega 公司);Taq DNA 聚合酶(5U/μl,Takara),10×BufferMg2+plus,dNTPs(2.5mM),pMD18-T vector Cloning Kit(寶生物工程(大連)有限公司)引物和Taqman探針(生工生物工程(上海)股份有限公司);熒光定量PCR儀為ABIPISM-7900HT擴(kuò)增系統(tǒng);分光光度計(jì)(Thermo Scientific NanoDrop 2000c);EZ1 Advanced XL(美國(guó)Promega公司)。
1.2.1 大鼠心血DNA樣本采集
18只健康SD大鼠,雌雄不限,體重180~200 g。控制室內(nèi)環(huán)境溫度25℃,適應(yīng)性飼養(yǎng)3 d頸椎脫位法處死,按PMI隨機(jī)分成9組,每組2只,其中1組對(duì)照組(死后 0 h),8 組實(shí)驗(yàn)組(PMI分別為:12、24、36、48、60、72、84、96 h),置于密閉室內(nèi),分別在各時(shí)間點(diǎn)取心血100μL,然后應(yīng)用EZ1 Advanced XL按照EZ1 DNA Investigator Kit說(shuō)明書進(jìn)行操作提取心血DNA,最終每組得到DNA洗脫液100μL,-20℃冰凍保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.2 菌種獲取
E.coliDH-5α(無(wú)錫中德美聯(lián)生物技術(shù)有限公司)。
1.2.3 引物及探針
在NCBI上獲取已有E.coli的 β-D-半乳糖苷酶合成基因LacZ的序列,選擇較保守的一段序列構(gòu)建探針及引物體系(表1),設(shè)計(jì)應(yīng)滿足以下幾個(gè)條件:(1)引物 Tm 值 58~60 ℃;(2)探針 Tm 值 68~70℃;(3)G+C 在 30%~80%之間;(4)引物和探針沒(méi)有連續(xù)3個(gè)以上的堿基G;(5)探針5’端第1個(gè)堿基不是 G;(6)探針序列中 C 大于 G;(7)擴(kuò)增片斷在50~150 bp之間。
表1 大腸桿菌LacZ基因熒光定量PCR引物和探針序列
1.2.4 標(biāo)準(zhǔn)品質(zhì)粒的制備
選取E.coli的 β-D-半乳糖苷酶合成基因LacZ上大片段克隆引物(LacZ-DF1和LacZ-DR1)(表2),對(duì)模板大腸桿菌D-H-5α進(jìn)行直接擴(kuò)增獲得PCR產(chǎn)物,經(jīng)過(guò)連接、轉(zhuǎn)化,篩選出所需菌種,并進(jìn)行測(cè)序比對(duì)驗(yàn)證,證實(shí)重組質(zhì)粒與設(shè)計(jì)片段的目標(biāo)序列完全一致,符合設(shè)計(jì)要求。
表2 大片段克隆引物的寡核苷酸序列
1.2.5質(zhì)粒濃度測(cè)定
將重組質(zhì)粒提取物以去離子水稀釋,于紫外分光光度計(jì)上進(jìn)行定量,測(cè)定其在260nm與280nm的A值,判斷其純度(A260/A280>1.8為純品)。 取1μL提取質(zhì)粒,加入 Nano Drop(Thermo)上,測(cè)定三次,然后得出質(zhì)粒濃度(表3)。
1.2.6 線性標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立
以提取的LacZ基因克隆轉(zhuǎn)化菌質(zhì)粒DNA為模板標(biāo)準(zhǔn),將其10倍梯度稀釋形成濃度為3.747、0.3747、37.47、3.747、0.3747、0.03747 pg/μL,取各稀釋梯度模板1μL進(jìn)行熒光定量PCR擴(kuò)增,反應(yīng)體系20μL,均為三個(gè)復(fù)孔,在PCR過(guò)程中由實(shí)時(shí)熒光定量PCR儀自動(dòng)繪制線性標(biāo)準(zhǔn)曲線(圖1)。
圖1 擴(kuò)增曲線圖
以克隆質(zhì)粒模板濃度的對(duì)數(shù)值為橫坐標(biāo),以Ct值為縱坐標(biāo)建立LacZ熒光定量PCR檢測(cè)的標(biāo)準(zhǔn)曲線(圖2)。曲線回歸得標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為:Ct=-3.41lgX+25.46(直線斜率 A=-3.41,截距 B=25.46,X 為模板濃度,單位 pg/μL),曲線相關(guān)系數(shù)r=0.9985,說(shuō)明標(biāo)準(zhǔn)曲線線性較好。根據(jù)A=-1/log(1+E)(E為熒光定量PCR反應(yīng)的擴(kuò)增效率),得熒光定量PCR擴(kuò)增效率為96.34%,符合熒光定量PCR對(duì)擴(kuò)增效率的要求。
圖2 標(biāo)準(zhǔn)曲線線性擬合圖
1.2.7 qPCR擴(kuò)增體系及程序
用 2×Mastermix10μL、10μM YF1 1μL、10μM YR1 1μL、10μM Taqman 0.4μL、模板 1μL和ddH2O 6.6μL配置成20μL的擴(kuò)增體系。
設(shè)置擴(kuò)增程序:(1)50℃,持續(xù) 2min;(2)95℃,持續(xù) 10min;(3)95℃,持續(xù) 15 s;(4)60℃,持續(xù) 1min;(5)(2)~(4)步驟 40 個(gè)循環(huán)。
SD大鼠處死后18 h,有輕微異味產(chǎn)生。死后72 h,尸體腹部出現(xiàn)腫脹,口腔開(kāi)始有腐敗液體流出,臭味明顯,尸體表面可見(jiàn)脫毛現(xiàn)象,腹部有尸綠形成。死后96 h,尸體皮膚下有腐敗靜脈網(wǎng)形成。
用分光光度法分別測(cè)量不同PMI下SD大鼠心血樣本DNA濃度,取1μLDNA樣品,加入Nano Drop(Thermo)上,檢測(cè)每組樣本 DNA濃度,取平均值(表 4)。
表3 質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品濃度測(cè)定
表4 SD大鼠死后96 h內(nèi)心血樣本DNA濃度測(cè)定
對(duì)上述樣本的檢測(cè)濃度繪成線性趨勢(shì)圖,檢測(cè)結(jié)果顯示在SD大鼠死后96 h時(shí)間段內(nèi),死后12 h DNA濃度開(kāi)始增高,死后60h增速加快,至死后96h達(dá)到高峰。對(duì)SD大鼠死后96 h心血DNA濃度變化值經(jīng)過(guò)EXCEL軟件相關(guān)分析,得出回歸方程式:y=1.0233x+31.647,PMI與DNA濃度的決定系數(shù)R2=0.9345,表明DNA濃度隨著PMI的延長(zhǎng)而呈增加趨勢(shì),兩者之間存在著較強(qiáng)的正相關(guān)(圖3)。
圖3 SD大鼠死后96 h內(nèi)心血樣本DNA濃度變化趨勢(shì)圖
對(duì)PMI為0~48 h的5個(gè)時(shí)間點(diǎn)SD大鼠心血樣本進(jìn)行檢測(cè)。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線定量結(jié)果,幾乎均無(wú)擴(kuò)增,類似陰性,初步得出,PMI為0~48 h,擴(kuò)增 Ct值均在35以后,說(shuō)明SD大鼠心血中未有LacZ基因的存在(圖4)。
圖4 PMI為0~48h SD大鼠心血樣本LacZ基因檢測(cè)圖譜
對(duì)PMI為60~96 h的4個(gè)時(shí)間點(diǎn)SD大鼠心血樣本進(jìn)行檢測(cè),同批次擴(kuò)增標(biāo)準(zhǔn)品,制備標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線定量結(jié)果,發(fā)現(xiàn)各時(shí)間點(diǎn)的樣本均有擴(kuò)增產(chǎn)物出現(xiàn)(圖 5~6)。
圖5 標(biāo)準(zhǔn)品質(zhì)粒擴(kuò)增圖譜
圖6 PMI為60~96h SD大鼠心血樣本LacZ基因檢測(cè)圖譜
以標(biāo)準(zhǔn)品濃度梯度稀釋的對(duì)數(shù)值為橫坐標(biāo),以Ct值為縱坐標(biāo)建立LacZ熒光定量PCR檢測(cè)的標(biāo)準(zhǔn)曲線(圖7)。曲線回歸得標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為:Ct=-3.65lgX+27.04(直線斜率 A=-3.65,截距 B=27.04,X 為模板濃度,單位 pg/μL),曲線相關(guān)系數(shù)r=0.9822,說(shuō)明標(biāo)準(zhǔn)曲線線性較好。根據(jù)A=-1/log(1+E)(E為熒光定量PCR反應(yīng)的擴(kuò)增效率),得該次熒光定量PCR擴(kuò)增效率為88%,符合熒光定量PCR對(duì)擴(kuò)增效率的要求。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線,可計(jì)算出實(shí)際樣本中LacZ基因的濃度,圖中標(biāo)“×”為實(shí)際樣本擴(kuò)增在標(biāo)準(zhǔn)曲線線性擬合圖中的位置。
圖7 標(biāo)準(zhǔn)曲線線性擬合圖(標(biāo)×位置為實(shí)際樣本)
按照上述標(biāo)準(zhǔn)曲線,對(duì)60~96 h的4個(gè)時(shí)間點(diǎn)心血樣本檢測(cè),每組樣本基因濃度取平均值(表5)。
表5 SD大鼠死后60~96 h心血樣本中LacZ基因濃度
對(duì)上述定量檢測(cè)樣本中LacZ基因的趨勢(shì)圖(圖8)檢測(cè)結(jié)果顯示在SD大鼠死后60 h LacZ基因濃度開(kāi)始增加,隨著PMI的延長(zhǎng)呈指數(shù)式增長(zhǎng),至死后96 h達(dá)到高峰。對(duì)SD大鼠死后60~96 h心血DNA樣品檢測(cè)LacZ基因濃度變化值經(jīng)EXCEL軟件相關(guān)分析,得出回歸方程式:y=3E-06e0.1567x,PMI與DNA濃度的決定系數(shù)R2=為0.9569,表明DNA濃度隨著PMI的延長(zhǎng)而呈增加趨勢(shì),兩者之間存在著較強(qiáng)的正相關(guān)。
圖8 SD大鼠死后60~96 h心血DNA樣本中LacZ基因濃度變化趨勢(shì)圖
個(gè)體死亡后,抑制微生物生長(zhǎng)的平衡被打破,腐敗菌開(kāi)始大量繁殖,并在尸體腐敗的進(jìn)程中起主導(dǎo)作用。2009年劉茜[4]利用生物發(fā)光法檢測(cè)大鼠死后不同時(shí)間點(diǎn)尸體組織中微生物ATP含量,初步證實(shí)在大鼠尸體上腐敗菌存在著量的變化性規(guī)律。但是ATP檢測(cè)只能反映存活狀態(tài)細(xì)菌的數(shù)量,不能反應(yīng)出死亡細(xì)菌的數(shù)量,而且其在死后早期易受個(gè)體本身ATP的干擾。2014年謝丹[5]通過(guò)檢測(cè)尸體不同部位的腐敗菌多樣性的演替規(guī)律,發(fā)現(xiàn)利用優(yōu)勢(shì)菌群的演替變化可用于推斷PMI,但是該研究只是對(duì)優(yōu)勢(shì)菌群的種屬做了定性鑒別,而沒(méi)有相關(guān)的定量研究,因此推斷的PMI只能是大概的一個(gè)時(shí)間段,精確性不高且需檢測(cè)的指標(biāo)偏多。
筆者認(rèn)為,在尸體腐敗降解過(guò)程中,無(wú)疑存在著腐敗菌數(shù)量的變化,通過(guò)檢測(cè)腐敗菌DNA含量更能準(zhǔn)確反映出腐敗菌的變化情況,而目前國(guó)內(nèi)外學(xué)者應(yīng)用qPCR技術(shù)定量檢測(cè)大腸桿菌的研究主要集中在疾病診斷治療和食品衛(wèi)生安全等方面[6-8],本研究將檢測(cè)大腸桿菌DNA含量的技術(shù)應(yīng)用到法醫(yī)學(xué)PMI推斷中來(lái),在國(guó)內(nèi)外研究中罕見(jiàn)報(bào)道。
本研究成功的用紫外分光光度計(jì)分別檢測(cè)了SD大鼠死后0~96 h的心血DNA樣本濃度,結(jié)果顯示隨著PMI的延長(zhǎng),樣本DNA濃度呈現(xiàn)線性增長(zhǎng)的趨勢(shì),與PMI呈顯著正相關(guān),這可能與個(gè)體死后水分流失有關(guān),心血管內(nèi)血液中的水分等細(xì)小分子受重力的影響向外向下滲透,致使血液發(fā)生濃縮,血樣本的DNA濃度隨著升高,因此個(gè)體死后在一定的時(shí)間范圍內(nèi)檢測(cè)心血總DNA濃度可用于推斷PMI。
細(xì)菌的生長(zhǎng)繁殖分為4個(gè)時(shí)期:遲緩期(又叫調(diào)整期)、對(duì)數(shù)期(又稱指數(shù)期)、穩(wěn)定期和衰亡期。本研究在SD大鼠死后0~48 h的心血DNA中,均未檢測(cè)到LacZ基因的擴(kuò)增,可能的結(jié)果有兩個(gè):(1)心血中沒(méi)有大腸桿菌繁殖,自然不會(huì)出現(xiàn)LacZ基因擴(kuò)增;(2)心血中有大腸桿菌,只是處于遲緩期,基因濃度很低,本研究RT-PCR的基因濃度檢測(cè)限是≥0.003747pg/μL,而 NTC 的濃度是 0.02pg/μL,可能的原因是擴(kuò)增試劑本身(如Taq酶來(lái)源于大腸桿菌,而目前的提取技術(shù)不可能達(dá)到完全純化[9])存在少量大腸桿菌基因組的污染而帶來(lái)假陽(yáng)性的結(jié)果,為此本研究人為將基因含量檢測(cè)限提高到是≥0.03747 pg/μL,使所測(cè)Ct值與NTC沒(méi)有重疊,不過(guò)這樣也可能造成了一定幾率的假陰性結(jié)果產(chǎn)生,導(dǎo)致遲緩期基因擴(kuò)增結(jié)果不明顯。
本研究成功建立了檢測(cè)大腸桿菌LacZ基因含量的qPCR方法,結(jié)果顯示SD大鼠死后60~96 h心血中大腸桿菌DNA含量與PMI呈顯著正相關(guān),LacZ基因濃度呈指數(shù)式增長(zhǎng),這與細(xì)菌的二分裂繁殖方式有關(guān),符合細(xì)菌的生長(zhǎng)曲線規(guī)律中對(duì)數(shù)期(又稱指數(shù)期)的特征。值得一提的是,本實(shí)驗(yàn)測(cè)定大腸桿菌LacZ基因含量是不區(qū)分細(xì)菌死活狀態(tài)的,無(wú)論死亡細(xì)菌或存活細(xì)菌均能檢測(cè)到LacZ基因,這點(diǎn)不同于一般的根據(jù)存活細(xì)菌數(shù)量繪制的細(xì)菌生長(zhǎng)曲線規(guī)律,因此死后96 h以后能否出現(xiàn)細(xì)菌生長(zhǎng)的穩(wěn)定期和衰亡期特征還值得進(jìn)一步的研究。由于本實(shí)驗(yàn)對(duì)象SD大鼠的心血存量受限,超過(guò)96h的心血難以提取到,故筆者認(rèn)為為了更好地驗(yàn)證本研究的實(shí)際應(yīng)用價(jià)值,有必要進(jìn)一步研究不同死亡時(shí)間點(diǎn)上的人類尸體與SD大鼠尸體的異同點(diǎn),并根據(jù)預(yù)實(shí)驗(yàn)心血存量結(jié)果,適當(dāng)延長(zhǎng)樣本檢測(cè)PMI時(shí)間點(diǎn),以更大地發(fā)揮大腸桿菌LacZ基因含量推斷PMI的作用。
[2]BERG R D.Bacterial Translocation from the Gastrointestinal Tract[J].Trends in Microbiology, 1995, 3(4):11-30.
[3]O’BOYLE C J.Microbiology of BacterialTranslocation in Humans[J].Gut, 1998, 42(1):29-35.
[4]劉茜.腐敗微生物及腐敗產(chǎn)物檢測(cè)推斷死亡時(shí)間的研究[D].湖北:華中科技大學(xué),2009.
[5]謝丹.SSOs演替用于PMI推斷的法醫(yī)學(xué)研究[D].湖南:中南大學(xué),2014.
[6]ONO S,TSUJIMOTO H,YAMAUCHIA,et al.Detection of Microbial DNA in the Blood of Surgical Patients for Diagnosing Bacterial Translocation[J].World Journal of Surgery,2005,29(4):535-539.
[7]李云玖,馬恩陵,廉東波,等.實(shí)時(shí)定量PCR檢測(cè)外科發(fā)熱患者靜脈血中大腸桿菌DNA的方法[J].中國(guó)臨床營(yíng)養(yǎng)雜志, 2006, 14(2):70-76.
[8]周微,張偉欽,付宇,等.熒光定量PCR方法快速檢測(cè)原料乳中的大腸桿菌[J].中國(guó)乳品工業(yè),2009,37(11):39-42.
[9]HARRISK A,HARTLEY JC.Developmentof Broad-range 16S rDNA PCR for use in the Routine Diagnostic Clinical Microbiology Service[J].Journal of Medical Microbiology,2003,52(8):685-691.