余 婷 韓亞非
(1.河北省邯鄲市中醫(yī)院,河北 邯鄲 056001;2.河北省邯鄲市中心醫(yī)院,河北 邯鄲056001)
隨著人口老齡化的加劇以及高血壓、高血脂等基礎疾病發(fā)病率的升高,缺血性腦血管病已逐漸發(fā)展成為致殘和死亡的主要疾病之一,病理生理學研究發(fā)現(xiàn)能量耗竭及氧自由基代謝障礙是缺血性腦損傷的主要病理機制[1-4]。線粒體為能量代謝及自由基產(chǎn)生的主要場所,而線粒體又是缺血性腦損傷主要亞細胞器靶目標。
中藥苦參為豆科苦參屬多年生落葉亞灌木植物苦參(Sophora flavescens Ait.)的根;其味苦、性寒,具有清熱燥濕、利水退黃、祛風殺蟲之功效,為我國傳統(tǒng)中藥品種之一,《本草綱目》《神農(nóng)本草經(jīng)》等均有記載??鄥⑺兀∣xymatrine)是從中藥苦參中提取的一種喹諾西啶類生物堿,是其主要有效成分之一,現(xiàn)代藥學研究發(fā)現(xiàn)苦參素具有抗炎、抗細胞凋亡等多種生物學活性[5-6]以及擴張血管、改善微循環(huán)等藥理學作用[7]。本實驗以線粒體為研究對象,進一步探討苦參素對缺血性腦血管病的保護作用。
清潔級SD大鼠(雌雄不限)100只,體質(zhì)量250~300 g,購自河北省實驗動物中心,動物許可證號:SCXK(冀)2013-1-003,飼養(yǎng)環(huán)境:恒溫 23~25 ℃、相對濕度65%~70%、光照周期12 h∶12 h。適應性飼養(yǎng)1周后進行實驗。
苦參素購自南京澤朗醫(yī)藥科技有限公司(批號:20170114);線粒體分離試劑盒購自碧云天生物技術(shù)研究所(批號:20170124);超氧化物歧化酶(SOD)、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)活性,丙二醛(MDA)含量,鈉鉀 ATP 酶(Na+-K+-ATPase)、鈣鎂 ATP 酶(Ca2+-Mg2+-ATPase)試劑盒和考馬斯亮藍蛋白測定試劑盒購自南京建成生物工程研究所(批號:20170309、20170413、20161207、20161128、20170316、20161125)。 UV-1206型紫外分光光度計(日本SHIMODZU);透射電子顯微鏡(美國FEI公司)。
1)分組與模型制備:取100只試驗用大鼠按照隨機數(shù)字表法隨機分為假手術(shù)組、模型組和苦參素低(25 mg/kg)、中(50 mg/kg)、高(100 mg/kg)劑量組,每組20只。參照繆培等[8]報道的試驗方法,采用線栓法阻斷大腦中動脈制備局灶性腦缺血再灌注大鼠模型,假手術(shù)組行手術(shù)操作但不插入栓線。各組大鼠均于術(shù)前10 min腹腔注射給藥,假手術(shù)組和模型組給予生理鹽水。 2)線粒體的制備[9]:腦缺血 24 h后,實施麻醉、斷頭取腦,分離缺血側(cè)大腦組織,置于預冷(4℃)的組織裂解液中,制備10%腦組織勻漿液,3000 r/min低溫(4℃)離心5 min后取上清液,12000 r/min低溫(4℃)離心10 min后,棄上清液取沉淀,即為線粒體,考馬斯亮藍測定蛋白含量。
1.4.1 線粒體腫脹程度的測定 取線粒體加入緩沖液(250 mmol/L 蔗糖、5 mmol/L KH2PO4、3 mmol/L 琥珀酸鈉,調(diào)節(jié)pH7.2)中,制備線粒體蛋白0.25 g/L懸液;混勻后,通過紫外-可見分光光度計測定520 nm處的吸光度值(A),A與膜腫脹程度呈反比關(guān)系,即A越小則表示線粒體腫脹程度越嚴重。
1.4.2 線粒體膜流動性測定 采用熒光偏振度法[10]:取“1.3”項下“線粒體制備”中留出的不去上清液的部分制備線粒體蛋白1.00 g/L懸液,取1 mL線粒體懸液加入3 mL二苯基己三烯溶液(2 μmol/L),25℃溫水浴30 min后測定熒光偏振度(K)(激發(fā)波長362 nm,發(fā)射波長 432 nm),微黏度(η)=2K(0.46-K);膜流動性用熒光偏振度(K)、微黏度(η)表示,微黏度越大,膜流動性越小。
1.4.3 線粒體呼吸功能的測定 采用改良Clark氧電極法[11]取1 mg蛋白量線粒體加入2.5 mL反應介質(zhì)中(225 mmol/L 甘露醇,75 mmol/L 蔗糖,10 mmol/L KCl,20 mmol/L Tirs-HCI,3 mmol/L 磷酸鹽緩沖液,0.1 mmol/L EDTA,調(diào)pH7.4),30℃恒溫孵育1 min后加入20 μL底物(NAD鏈為5 mmol/L谷氨酸+5 mmol/L蘋果酸;FAD鏈為5 mmol/L唬拍酸),然后描記呼吸曲線。2 min后加人 10 μL 腺苷二磷酸(ADP,45 mmol/L),連續(xù)描記Ⅲ態(tài)(R3)快速耗氧及ADP完全磷酸化后的Ⅳ態(tài)(R4)耗氧曲線,R3、R4耗氧速率比值為呼吸控制率(RCR)。
1.4.4 線粒體超微結(jié)構(gòu)觀察 取1 mm×1 mm×1 mm缺血側(cè)腦組織置于2.5%戊二醛溶液進行固定6 h后,置于1%鋨酸進行后固定1 h,行梯度乙醇脫水、環(huán)氧樹脂包埋、切片(厚度約70 nm)、醋酸鈾浸泡、枸櫞酸鉛染色、沖洗、干燥處理后,通過透射電鏡觀察各組大鼠缺血側(cè)腦線粒體超微結(jié)構(gòu)。
1.4.5 線粒體內(nèi) SOD、GSH-Px、Na+-K+-ATPase、Ca2+-Mg2+-ATPase活性和MDA含量的測定 取線粒體加入適量冷裂解液,用超聲波儀破碎線粒體,然后嚴格按各試劑盒操作說明,依次測定線粒體內(nèi)SOD、GSH-Px、Na+-K+-ATPase、Ca2+-Mg2+-ATPase活性和MDA含量。
1.4.6 線粒體內(nèi)游離 Ca2+測定 參照Xi T等[12]報道的原子化學發(fā)光法測定各組大鼠缺血側(cè)腦組織線粒體內(nèi)游離Ca2+(以CaCO3為標準)。
應用SPSS13.0統(tǒng)計軟件分析。計量資料以(±s)表示,多組間均數(shù)比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD-t檢驗。P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
見表1。與假手術(shù)組比較,模型組腦缺血大鼠缺血側(cè)腦線粒體A520顯著降低(P<0.01),提示線粒體腫脹程度顯著升高;而與模型組比較,苦參素中、高劑量組腦缺血大鼠A520顯著升高(P<0.05或P<0.01),提示缺血側(cè)腦線粒體腫脹程度顯著降低。
見表1。與假手術(shù)組比較,模型組腦缺血大鼠缺血側(cè)腦線粒體熒光偏振度(K值)、微黏度(η值)顯著升高(P<0.01),提示腦線粒體膜流動性明顯降低;而與模型組比較,苦參素中、高劑量組腦缺血大鼠缺血側(cè)腦線粒體K值、η值顯著降低(P<0.05或P<0.01),提示苦參素具有提高腦缺血大鼠缺血側(cè)腦線粒體膜流動性的作用。
表1 各組大鼠腦缺血后腦線粒體腫脹程度、膜流動性比較(±s)
表1 各組大鼠腦缺血后腦線粒體腫脹程度、膜流動性比較(±s)
與假手術(shù)組比較,**P<0.01;與模型組比較,△P<0.05,△△P<0.01。 下同。
組 別 n 腫脹程度(A520)膜流動性K η假手術(shù)組 20 86.93±4.25 0.62±0.04 2.08±0.17模型組 20 4.53±0.36**苦參素低劑量組 20 4.02±0.31 48.17±8.03** 1.41±0.09**55.48±9.12 1.13±0.09苦參素中劑量組 20 3.16±0.27△△61.35±9.76△ 0.95±0.08△苦參素高劑量組 20 75.69±11.28△△ 0.79±0.06△△ 2.79±0.24△△
見表2。與假手術(shù)組比較,模型組腦缺血大鼠缺血側(cè)腦線粒R3值顯著降低、R4值顯著升高、RCR顯著降低(P<0.01);而與模型組比較,苦參素中、高劑量組腦缺血大鼠缺血側(cè)腦線粒體R3值顯著升高、R4值顯著降低(P<0.05或P<0.01)。
表2 各組大鼠腦缺血后腦線粒體呼吸功能比較(±s)
表2 各組大鼠腦缺血后腦線粒體呼吸功能比較(±s)
組 別 n RCR(%)假手術(shù)組 20 2.73±0.53模型組 20 1.42±0.31**苦參素低劑量組 20 1.59±0.37 R3[mmol/(min·mg)]R4[mmol/(min·mg)]67.41±8.05 24.72±2.61 43.92±6.17** 31.05±2.89**47.35±7.62 29.83±3.14苦參素中劑量組 20 2.02±0.44△52.81±6.94△ 26.17±2.82△苦參素高劑量組 20 59.46±8.20△△ 23.86±2.75△△ 2.49±0.42△△
見圖1。通過透射電子顯微鏡觀察發(fā)現(xiàn),假手術(shù)組大鼠神經(jīng)元形態(tài)規(guī)則、結(jié)構(gòu)完整;模型組缺血側(cè)神經(jīng)元呈現(xiàn)形態(tài)不規(guī)則、多數(shù)線粒體水腫、少數(shù)線粒體崩解、部分嵴斷裂消失等病理性形態(tài)結(jié)構(gòu)改變。而與模型組比較,苦參素中、高劑量組大鼠缺血側(cè)神經(jīng)元及線粒體病理性形態(tài)結(jié)構(gòu)改變呈不同程度改善,其中苦參素高劑量組缺血側(cè)神經(jīng)元線粒體僅少量出現(xiàn)水腫、線粒體膜基本完整、嵴僅少許破壞。
見表3。與假手術(shù)組比較,模型組腦缺血大鼠缺血側(cè)腦線粒體中SOD、GSH-Px活性顯著降低而MDA含量顯著升高(P<0.01);而與模型組比較,苦參素中、高劑量組腦缺血大鼠缺血側(cè)腦線粒體SOD活性顯著升高且MDA含量顯著降低(P<0.05或P<0.01),苦參素高劑量組GSH-Px活性顯著升高(P<0.05)。
圖1 透射電鏡下各組大鼠腦缺血后腦線粒體超微結(jié)構(gòu)(5000倍)
表3 各組大鼠腦缺血后腦線粒體呼吸功能比較(±s)
表3 各組大鼠腦缺血后腦線粒體呼吸功能比較(±s)
組 別 n MDA(nmol/mg)假手術(shù)組 20 2.48±0.35模型組 20 5.71±0.64**苦參素低劑量組 20 5.20±0.58 SOD(U/mg) GSH-Px(U/mg)113.42±5.38 38.05±2.61 69.84±2.97** 26.74±2.53**82.37±3.18 28.65±2.90苦參素中劑量組 20 4.59±0.47△88.65±3.72△△ 31.82±3.07△苦參素高劑量組 20 91.47±4.36△△ 35.49±3.26△△ 3.96±0.43△△
見表4。與假手術(shù)組比較,模型組腦缺血大鼠缺血側(cè)腦線粒體中Na+-K+-ATPase、Ca2+-Mg2+-ATPase活性顯著降低(P<0.01);而與模型組比較,苦參素中、高劑量組腦線粒體Ca2+-Mg2+-ATPase活性顯著升高(P<0.05或P<0.01),其中高劑量組Na+-K+-ATPase活性顯著升高(P<0.01)。
表4 各組大鼠腦缺血后腦線粒體Na+-K+-ATPase、Ca2+-Mg2+-ATPase 活性比較(μmol/mg,±s)
表4 各組大鼠腦缺血后腦線粒體Na+-K+-ATPase、Ca2+-Mg2+-ATPase 活性比較(μmol/mg,±s)
組 別 n Na+-K+-ATPase Ca2+-Mg2+-ATPase假手術(shù)組 20 15.86±2.94 18.25±3.73模型組 20 7.37±2.06** 9.01±2.89**苦參素低劑量組 20 9.10±2.35 10.76±2.75苦參素中劑量組 20 11.02±2.71△△ 12.40±3.18△苦參素高劑量組 20 13.28±3.06△△ 14.19±3.22△△
見表5。與假手術(shù)組比較,模型組腦缺血大鼠缺血側(cè)腦線粒體中游離Ca2+含量顯著升高(P<0.01);而與模型組比較,苦參素中、高劑量組腦線粒體游離Ca2+含量顯著降低(P<0.05或P<0.01)。
表5 各組大鼠腦缺血后腦線粒體內(nèi)游離Ca2+含量比較(nmol/g,±s)
表5 各組大鼠腦缺血后腦線粒體內(nèi)游離Ca2+含量比較(nmol/g,±s)
組 別 n Ca2+假手術(shù)組 20 12.97±2.03模型組 20 33.84±4.72**苦參素低劑量組 20 30.15±4.52苦參素中劑量組 20 25.63±4.08△苦參素高劑量組 20 19.74±2.88△△
能量代謝障礙及其所引發(fā)的一系列連鎖反應是腦缺血損傷發(fā)生發(fā)展的重要機制之一,線粒體是細胞能量的轉(zhuǎn)換器,線粒體受損將導致線粒體呼吸功能障礙、ATP合成下降、自由基大量生成、細胞色素C釋放等而進一步誘發(fā)氧化應激損傷及細胞凋亡,因此,保護線粒體對抑制缺血性腦損傷具有重要作用[13]。
苦參為豆科苦參屬的變種,廣泛分布于我國、俄羅斯、日本、印度等海拔1500米以上的山坡上,具有清熱燥濕、祛風殺蟲之功效??鄥⑺睾卸喾N化學成分,其中苦參素是其主要有效成分之一,具有多種生物學活性,苦參素對心肌、肝臟、腎臟等組織缺血均具有一定的保護作用[7,14-15]。 此外,程鋼等[16]和陳利平等[17]研究發(fā)現(xiàn)苦參素能夠通過抑制氧化應激、炎癥反應及繼發(fā)性細胞凋亡而對腦缺血損傷起到一定的保護作用,但苦參素是否對腦缺血后腦線粒體具有保護作用尚未見文獻報道。本研究發(fā)現(xiàn),經(jīng)苦參素50~100 mg/kg預處理能夠有效降低大鼠腦缺血后缺血側(cè)腦線粒體腫脹程度、提高線粒體膜流動性、提高線粒體呼吸功能。透射電鏡觀察顯示:經(jīng)苦參素預處理能夠有效抑制大鼠腦缺血后缺血側(cè)腦線粒體水腫、保護線粒體膜完整性等,提示苦參素對腦缺血后腦線粒體具有一定的保護作用。
線粒體是維持細胞內(nèi)Ca2+動態(tài)平衡的主要調(diào)節(jié)者,缺血性腦病發(fā)生后Ca2+可由路徑進入神經(jīng)細胞,而線粒體則可以通過膜單向轉(zhuǎn)運功能攝取細胞質(zhì)中過多的 Ca2+,進而導致線粒體 Ca2+超載[18]。 氧自由基(ROS)過剩是導致機體氧化應激損傷的根本原因,生理狀態(tài)下ROS能夠在抗氧化酶SOD、GSH-Px相繼催化作用下最終被還原生成H2O和 O2[19];但過剩的ROS將攻擊細胞膜,使不飽和脂肪酸被氧化破壞而生成MDA[20];缺血性腦病發(fā)生后線粒體內(nèi)SOD、GSH-Px活性降低而MDA含量升高,說明線粒體內(nèi)ROS代謝失衡,發(fā)生氧化應激損傷。Ca2+超載和氧化應激是導致線粒體通透性轉(zhuǎn)運孔道(MPTP)開放的主要原因[21]。本研究發(fā)現(xiàn),經(jīng)苦參素50~100 mg/kg預處理能夠有效降低大鼠腦缺血后缺血側(cè)腦線粒體Ca2+濃度,改善抗氧化酶SOD、GSH-Px活性并降低MDA含量,提示苦參素能夠抑制線粒體Ca2+超載和氧化應激損傷,這可能是苦參素保護線粒體結(jié)構(gòu)和功能損害的機制之一。
Na+-K+-ATPase、Ca2+-Mg2+-ATPase是存在于生物膜上的蛋白酶,對維持生物膜完整性及能量代謝具有重要意義,但Na+-K+-ATPase、Ca2+-Mg2+-ATPase對缺血缺氧非常敏感,缺血性腦病發(fā)生后,ATPase活性降低而使細胞內(nèi)游離Na+、Ca2+濃度增高,從而破壞內(nèi)環(huán)境穩(wěn)態(tài),影響細胞功能[22]。本研究發(fā)現(xiàn),經(jīng)苦參素50~100 mg/kg預處理能夠有效提高大鼠腦缺血后缺血側(cè)腦線粒體 Na+-K+-ATPase、Ca2+-Mg2+-ATPase活性,這可能是苦參素保護腦缺血后缺血側(cè)腦線粒體結(jié)構(gòu)的重要分子機制之一。
綜上所述,苦參素對腦缺血后腦線粒體損傷具有一定的保護作用,其機制可能與降低Ca2+濃度、抑制氧化應激損傷以及改善Na+-K+-ATPase、Ca2+-Mg2+-ATPase活性有關(guān)。
[1]顏娟,鄭茂東,崔玉環(huán),等.牡荊苷對腦缺血再灌注損傷小鼠腦組織能量代謝的影響[J].山東醫(yī)藥,2017,57(5):26-29.
[2]秦勝利.紅花注射液對大鼠腦缺血再灌注損傷后能量代謝的影響[J].臨床醫(yī)學,2016,36(7):114-116.
[3]孫明,趙育梅,徐超.?;撬峤档途衷钚阅X缺血引起的能量代謝紊亂和氧化損傷[J].中風與神經(jīng)疾病雜志,2008,25(5):577-579.
[4]Zheng L,Ding J,Wang J,et al.Effects and mechanism of action of inducible nitric oxide synthase on apoptosis in a rat model of cerebral ischemia-reperfusion injury[J].Anat Rec(Hoboken),2016,299(2):246-255.
[5]黃秀梅,李波,等.氧化苦參堿對TNFA、IL-6和IL-8的影響[J].中成藥,2003,25(11):903-906.
[6]孔秀巖,蘇志剛.氧化苦參堿對細胞凋亡影響的研究現(xiàn)狀[J].河北醫(yī)藥,2007,29(12):1371-1373.
[7]王雪芬,王磊,陳樹杰.苦參素對大鼠心肌缺血再灌注損傷的保護作用及其機制研究[J].中國中醫(yī)急癥,2016,25(6):988-992.
[8]繆培,張通,米海霞,等.基于線栓法大鼠大腦中動脈閉塞的局灶性腦缺血模型的比較研究[J].中國康復理論與實踐,2016,22(10):1190-1195.
[9]Zhang HX,Du GH,Zhang JT.Ischemic pre-conditioning preserves brain mitochondrial functions during the middle cerebral artery occlusion in rat [J].Neurol Res,2003,25:471-476.
[10]Xiong J,F(xiàn)eng YP.The protective effect of butylphthalide against mitochondrial injury during cerebral ischemia[J].Acta Pharm Sin,2000,35(6):408-412.
[11]Kobayashi T,Kuroda S,Tada M,et al.Calcium-induced mitochondrial swelling and cytochrome c release in the brain:its biochemical characteristics and implication in ischemic neuronal injury[J].Brain Res,2003,960(1-2):62-70.
[12]Xi T,Rao MR.Effects of mnifedipine on left ventricular diastolic function and Ca2+content of myocardial and cerebral mitochondria and artery tissues in left ventircular hypertrophied rats[J].Acta Pharm Sin,1995,30(1):6-11.
[13]Chan PH.Mitochontria and neuronal death/survival signaling pathways in cerebral ischemia[J].Neurochem Res,2004,29:1943-1949.
[14]高鵬.苦參素抗大鼠肝臟缺血再灌注損傷作用的研究[J].當代醫(yī)學,201,16(14):15-17.
[15]賈昌盛,孫建軍,李美德,等.苦參素降低大鼠腎臟缺血-再灌注損傷[J].基礎醫(yī)學與臨床,2012,32(8):943-947.
[16]程鋼,秦媛媛,程迪,等.氧化苦參堿對大鼠局灶性腦缺血損傷的保護作用及其抑制凋亡的作用機制[J].中國藥理學通報,2013,29(3):387-392.
[17]陳利平,王發(fā)渭,韓志濤,等.苦參堿對腦缺血再灌注損傷炎性因子的影響[J].中國中醫(yī)急癥,2010,19(12):2098-2099.
[18]Korge P,Honda HM,Weiss JN.Regulation of the mitochondrial permeability transition by matrix Ca2+and voltage during anoxia-reoxygenation[J].Am J Physiol,2001,280:517-526.
[19]Lartigue A,Burlat B,Coutard B,et al.The Megavirus chilensis Cu,Zn-superoxide dismutase: the first viral structure of a typical cellular copper chaperone-independent hyperstable dimeric enzyme[J].J Virol,2015,89(1):824-832.
[20]Kwiecien S,Magierowska K,Magierowski M,et al.Role of sensory afferent nerves,lipid peroxidation and antioxidative enzymes in the carbon monoxide-induced gastroprotection against stress ulcerogenesis[J].J Physiol Pharmacol,2016,67(5):717-729.
[21]Maciel EN,Kowaltowski AJ,Schwalm JM,et al.Mitochondrial permeability transition in neuronal damage promoted by Ca2+and respiratory chain complex Ⅱ inhibition[J].J Neurochem,2004,90(5):1025-1031.
[22]常明則,喬琳,吳海琴,等.葛根素預處理對大鼠局灶性腦缺血-再灌注線粒體功能的影響[J].腦與神經(jīng)疾病雜志,2014,22(4):278-280.