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      氨氮對魚類的毒性及魚類應(yīng)對氨氮毒性的策略

      2018-07-06 03:26:10付瑩趙玉蓉
      水產(chǎn)學(xué)雜志 2018年3期
      關(guān)鍵詞:氨氮魚類尿素

      付瑩,趙玉蓉

      (湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)湖南畜禽安全生產(chǎn)協(xié)同創(chuàng)新中心,湖南 長沙 410128)

      在集約化養(yǎng)殖下,水體中常出現(xiàn)毒性物質(zhì)氨的過量積累,對魚類造成不良影響,如抑制生長[1-6]、影響能量代謝[7,8]、阻礙離子平衡[9]、降低機體免疫功能[10,11]、器官病理等變化[12,13]。魚類能在一定范圍內(nèi)采取適應(yīng)機制緩解氨毒。

      1 水體中氨氮的來源

      天然水中氨的濃度約為0~0.2mg/L,處于較低水平。養(yǎng)殖水體中的氨氮主要來自殘餌和魚類排泄物等含氮有機物的降解。而高密度集約化養(yǎng)殖加大了水體含氮物質(zhì)的負荷,造成氨氮積累;外界氨氮污染水,如工業(yè)廢水、生活污水、畜禽養(yǎng)殖污水和農(nóng)業(yè)徑流等排入水體中時,更加重了水體氨氮的負荷。過高的水體氨氮含量不僅引起水體富營養(yǎng)化,還會毒害水生動物。

      2 水體中氨氮的存在形式

      水體中的氨氮以離子氨(NH4+)和分子氨(NH3)兩種形式存在,通常說的氨氮(或總氨)是指兩者含量的總和,二者的平衡反應(yīng)方程如下:

      氨的毒性常以總氨(NH3+NH4+)的濃度表示,一般化學(xué)分析方法(奈氏試劑法、水楊酸法等)測定的氨含量均為總氨的含量。

      3 影響水體氨氮毒性的因素

      影響水體氨氮毒性的因素主要有兩方面:環(huán)境因素和生物自身。

      3.1 環(huán)境因素

      3.1.1 pH和溫度

      NH3為親脂性分子,半徑較小,比NH4+更易透過脂質(zhì)性生物膜進入體內(nèi),使機體氨氮濃度升高,危害機體。水體中NH3的濃度可直觀反映水體中氨氮的毒性,NH3濃度越高氨氮毒性越強。但兩者在水體中的比例受多種因素影響。Emerson指出,淡水中NH3的比例可按下式計算:

      [NH3]=[NH3+NH4+]/(10pka+pH+1)

      pKa=(0.09108+2729.92)/(273.2+T)

      其中,pKa 為解離常數(shù),[NH3+NH4+]和[NH3]為總氨氮和非離子氨的濃度,T為攝氏溫度[14]。

      一般認為,當(dāng)OH-的濃度隨著pH的增加而增加時,使NH3·H20的平衡向生成NH3的方向進行,使NH3的濃度增加,氨氮毒性增強[15],pH僅增大0.4時,NH3的濃度就會翻倍。Weirich等[16]研究發(fā)現(xiàn),鱸Lateolabrax japonicus對氨氮的吸收速率隨pH的上升而增加。總之,pH升高不僅會增加水體NH3的濃度,還會加快魚體對氨氮的吸收。

      Ktr等[17]研究表明,對蝦的NH3半致死濃度與溫度呈負相關(guān),即水體氨氮毒性隨著溫度的升高而加劇。這是因為溫度升高時,機體的新陳代謝加快,促進了魚體對外界物質(zhì)(包括水體中的氨)的吸收[18]。溫度還影響細胞膜的滲透性、內(nèi)源性氨的產(chǎn)生。但溫度對氨氮毒性的影響小于pH。

      3.1.2 溶解氧

      有研究表明,NH3的毒性隨水體溶解氧濃度減少而升高[19];高濃度的溶解氧有利于消除氨毒[20]。這可能是因為水中高濃度的溶解氧有利于緩解氨機體血液載氧能力的下降,促進NH3從水體溢出;或者有利于機體內(nèi)有毒的氨氮轉(zhuǎn)化為無毒的硝酸鹽等,緩解氨毒。

      3.1.3 鹽度

      在一定范圍內(nèi),魚類的排氨率隨水中鹽度的增加而增大[21-23]。魚鰓上皮中的主要用于維持機體水鹽平衡的Na+/NH4+交換系統(tǒng)隨著鹽度的增加而變得活躍,調(diào)動更多NH4+參與該系統(tǒng)而排出體外,使機體的氨氮排泄率升高[24]。海水鹽度較低時不利于氨從魚體排出,使氨在體內(nèi)過量累積,加劇氨氮對機體的負面影響[25,26]。

      3.2 生物本身

      除環(huán)境因素外,水生動物種類、規(guī)格、體質(zhì)等也影響水體氨氮的毒性。水生生物對氨氮的敏感性因種類而異。一般海水生物對氨氮的敏感性高于淡水生物[27],無脊椎生物高于脊椎生物[28],其中淡水貝類高于其他淡水生物。同種生物,通常幼齡期對氨氮較為敏感[29]。

      4 氨氮致毒機理

      水體中NH3含量≤0.02mg/L時,魚類生長、繁殖等生命活動基本不受影響,當(dāng)水體NH3濃度超出該范圍時,則會危害魚體[30]。在水中,NH3容易透過生物膜進入體內(nèi)而迅速轉(zhuǎn)化成NH4+。機體內(nèi)95%的氨氮以NH4+的形式存在[31]。

      關(guān)于魚類氨氮脅迫已做了大量的研究,但其致毒機理至今尚不明確。一般認為NH3是經(jīng)魚的鰓、表皮和腸粘膜等進入機體,使血液pH增加,血液的載氧能力降低。長期接觸氨也會損害鰓組織,導(dǎo)致鰓組織充血、鰓小片彎曲、粘連和融合等,影響鰓的氣體交換[32],抑制機體的呼吸機能,導(dǎo)致個體缺氧甚至死亡。氨擴散進入各組織后,組織氨氮含量升高[33,34],損傷肝腎系統(tǒng),出現(xiàn)充血、水腫、肝昏迷甚至死亡[35]。

      其次,氨還會損害魚類的中樞神經(jīng)系統(tǒng),其中毒機制與哺乳動物肝腦病極為相似。目前發(fā)現(xiàn),哺乳動物氨中毒的機制主要為:氨導(dǎo)致谷氨酰胺(Gln)在體內(nèi)過量積累,使神經(jīng)膠質(zhì)細胞腫大,激活N-甲基-D天冬氨酸受體(NMDA受體)[36]。正常情況下,機體主要通過谷氨酸(Glu)和NH4+生成Gln以去除腦中多余的NH4+。因此,腦中NH4+濃度升高常伴隨著Gln含量升高。而Gln在胞內(nèi)過量增加易導(dǎo)致星型膠質(zhì)細胞腫大,引發(fā)腦水腫[37]并促進Glu釋放進入細胞間。對魚類的研究表明,即使出現(xiàn)谷氨酰胺累積時,也未出現(xiàn)腦水腫現(xiàn)象[38],這與哺乳動物不同。此外,NH4+還能引起神經(jīng)元表面去極化。胞間累積的Glu和去極化的神經(jīng)元二者均能激活位于神經(jīng)元表面的NMDA受體。該受體的過量激活促進NO合成[39,40],激活Na+/K+-ATP酶。Na+/K+-ATP酶的激活會加快腦中能量消耗,過量的NO不僅增加機體氧化應(yīng)激,還易產(chǎn)生高毒性過氧化氮,損害線粒體呼吸,引發(fā)ATP耗竭,導(dǎo)致細胞死亡[41,42]。相關(guān)研究表明,哺乳動物體內(nèi)注射NMDA受體拮抗劑(MK801等)能夠延遲甚至消除氨毒的負面影響[43,44],但MK801并不對所有魚類有效。在氨氮脅迫下,MK801對泥鰍Misgurnus anguillicaudatus具有保護效果[45],同劑量MK801對彈涂魚Periophthalmodon schlosseri和薄氏彈涂魚Boleophthalmus boddaerti卻無效果[46]。

      5 魚類應(yīng)對策略

      在一定范圍內(nèi),魚類能將體內(nèi)的氨轉(zhuǎn)化為谷氨酰胺和尿素,減少體內(nèi)氨的產(chǎn)生,增加NH3的揮發(fā)和NH4+的排放,減緩或解氨毒(圖1)。

      圖1 魚類的解毒策略Fig.1 The strategy of nitrogen detoxification in fish

      5.1 轉(zhuǎn)化為低毒性的物質(zhì)

      5.1.1 谷氨酰胺

      在高濃度氨的水體中,大多數(shù)魚類能夠?qū)Ⅲw內(nèi)的NH4+轉(zhuǎn)化為無毒的Gln,以迅速解毒。Gln由Glu和NH4+在谷氨酰胺合成酶(GS)的催化下生成,而Glu又可由α-酮戊二酸(α-KG)和NH4+生成。如果以α-KG為合成起點,每合成1mol Gln能消耗2mol NH4+。Sinha等[47]研究表明,暴露在高濃度環(huán)境氨的情況下,虹鱒Oncorhynchus mykiss、金魚Carassius auratus和鯉Cyprinus carpio體內(nèi)Gln水平均高于對照組,但最終維持在一定水平而不再增加。

      5.1.2 尿素

      到目前為止,僅發(fā)現(xiàn)少數(shù)硬骨魚類,如羅非魚Oreochromis grahami、肺魚 Protopterus dolloi、蟾魚Opsanus beta等能利用尿素合成解氨毒,大多數(shù)硬骨魚并不利用該途徑解毒。這可能因為尿素合成是一個極其耗能的過程。在尿素循環(huán)中,每生成1mol尿素要消耗4mol高能磷酸鍵。

      軟骨魚類可以合成尿素增加身體的滲透性,甚至以尿素的形式將大多數(shù)含氮廢物從鰓中排出。組成軟骨魚鰓膜的大量膽固醇和基底細胞膜上的尿素/Na+逆向轉(zhuǎn)運體,通過耦合作用實現(xiàn)對尿素的低滲透性,將尿素轉(zhuǎn)運回血液中,以維持體內(nèi)高濃度的尿素[48]。當(dāng)面臨氨氮脅迫時,魚可以將體內(nèi)的氨以尿素的形式直接經(jīng)鰓排出體外。

      5.2 減少體內(nèi)氨的產(chǎn)生

      魚體內(nèi)源性氨主要來源于蛋白質(zhì)的分解代謝,由肝臟所產(chǎn)生。在劇烈運動時,肌肉中氨基酸和腺苷酸的脫氨基作用也會產(chǎn)生氨。一般魚體內(nèi)產(chǎn)生的氨由鰓排出體外,但在一些極端條件下,如外界高氨、高pH和缺水等,氨的排放會受到抑制而在體內(nèi)積累。有研究表明,在堿和空氣暴露的情況下,魚體能通過降低蛋白質(zhì)和氨基酸的分解代謝避免體內(nèi)氨的過量積累[49,50]。

      5.3 NH3揮發(fā)

      Tsui等[51]研究表明,泥鰍暴露在氨氮和空氣條件下,能以NH3的形式將氨揮發(fā)出體外。在氨氮脅迫、pH顯著升高時,腸道作為泥鰍的輔助呼吸器官,可能是NH3揮發(fā)的位置。在自然界,泥鰍面臨干旱(空氣暴露)時,往往會鉆入泥土中。在空氣暴露下,泥鰍體表的pH顯著升高[52]。體表也可能是NH3揮發(fā)的位置。但到目前為止,NH3揮發(fā)的具體位置尚無定論。

      5.4 NH4+的排放

      Wilson和Taylor[53]發(fā)現(xiàn),在高濃度氨環(huán)境下,虹鱒在淡水和海水中分別能進行NH4+/H+和NH4+/Na+交換,將體內(nèi)部分氨排出體外,以應(yīng)對水中高濃度的氨。Randall等[55]也發(fā)現(xiàn),無論在高濃度的氨水中或暴露于空氣中,彈涂魚均能排放NH4+。Wilson等[56]提出,鰓復(fù)雜結(jié)構(gòu),充滿大量血液,與外界接觸面積很大,是進行氣體交換的重要位置,很可能與NH4+的排放有關(guān)。因為在鰓上皮泌氯細胞的基底外側(cè)膜上,含有大量氨敏感型的Na+/K+ATP酶和Na+/K+/Cl-協(xié)同轉(zhuǎn)運蛋白,兩者能將NH4+轉(zhuǎn)入泌氯細胞內(nèi),進入細胞的NH4+可通過Na+/H+(NH4+)交換載體排出體外(圖2)。

      圖2 魚類鰓上皮細胞NH4+交換模型Fig.2 NH4+exchange model in gill epithelial cells of fish

      6 結(jié)語

      氨為一種有毒物質(zhì),對魚類的致毒機理尚不明晰,不同魚類緩解氨毒的能力也不盡相同。目前,通過飼料添加劑,如維生素C、維生素E、γ-氨基丁酸、殼聚糖等提高魚體的抗氧化和免疫能力,提高機體抗氨氮脅迫能力[56-61]的研究已有不少。但在日糧中添加營養(yǎng)調(diào)控劑,補償尿素合成的能量消耗,促進尿素合成以緩解魚類氨氮脅迫,以及通過平衡飼料氨基酸,減少含氮物質(zhì)的產(chǎn)生,減緩魚類氨氮脅迫還有待進一步研究。

      [1]李波,樊啟學(xué),楊凱,等.慢性氨氮脅迫對黃顙魚攝食、生長及血液指標的影響[J].應(yīng)用與環(huán)境生物學(xué)報,2011,17(6):824-828.

      [2]肖煒,李大宇,徐楊,等.慢性氨氮脅迫對吉富羅非魚幼魚生長、免疫及代謝的影響[J].南方水產(chǎn)科學(xué),2015,11(4):81-87.

      [3]黃厚見.攝食水平、氨氮脅迫對梭魚幼魚生長的影響及其毒理效應(yīng)研究[D].上海:上海海洋大學(xué),2012.

      [4]Lemarié G,Dosdat A,Covès D,et al.Effect of chronic ammonia exposure on growth of European seabass(Dicentrarchus labrax)juveniles [J].Aquaculture,2004,229(1):479-491.

      [5] Foss A,Siikavuopio S I,S?ther B S,et al.Effect of chronic ammonia exposure on growth in juvenile Atlantic cod[J].Aquaculture,2004,237(1-4):179-189.

      [6]Kolarevic J,Selset R,Felip O,et al.Influence of long term ammonia exposure on Atlantic salmon(Salmo salar,L.)parr growth and welfare[J].Aquaculture Research,2013,44(11):1649-1664.

      [7]Wang X,Wang L,Yao C,et al.Alternation of immune parameters and cellular energy allocation of Chlamys farreri under ammonia-N exposure and Vibrio anguillarum challenge [J].Fish&Shellfish Immunology,2012,32(5):741-749.

      [8]王鑫,李榮,劉東超,等.氨氮對紅鰭東方鲀生長及能量收支的影響[J].水產(chǎn)科學(xué),2014,33(7):433-437.

      [9]Chen J C&Lee Y.Effects of nitrite exposure on acid-base balance,respiratory protein,and ion concentrations of giant freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii at low pH[J].Archives ofEnvironmental Contamination&Toxicology,1997,33(3):290-297.

      [10]黎慶,龔詩雁,黎明.慢性氨氮暴露誘發(fā)黃顙魚幼魚谷氨酰胺積累、氧化損傷及免疫抑制的研究[J].水產(chǎn)學(xué)報,2015,39(5):728-734.

      [11]趙海濤.氨氮對南方鯰(Silurus meridionalis Chen)幼魚血液生理、生化及非特異性免疫指標的影響[D].重慶:西南大學(xué),2006.

      [12]周鑫,董云偉,王芳,等.急性氨氮脅迫對于草魚sod和hsp90基因表達及鰓部結(jié)構(gòu)的影響[J].水生生物學(xué)報,2013,37(2):321-328.

      [13]張武肖,孫盛明,戈賢平,等.急性氨氮脅迫及毒后恢復(fù)對團頭魴幼魚鰓、肝和腎組織結(jié)構(gòu)的影響[J].水產(chǎn)學(xué)報,2015,39(2):233-244.

      [14]Emerson K,Russo R C,Lund R E,et al.Aqueous ammonia equilibrium calculations:effect of pH and temperature[J].Journal De L’office Des Recherches Sur Les Pêcheries Du Canada,2011,32(12):2379-2383.

      [15]羅杰,杜濤,劉楚吾,等.不同鹽度、pH條件下氨氮對管角螺稚貝毒性影響[J].動物學(xué)雜志,2010,45(3):102-109.

      [16]Weirich C R,Tomasso J R&Smith T I J.Toxicity of ammonia and nitrite to sunshine bass in selected environments[J].Journal ofAquatic Animal Health,1993,5(1):64-72.

      [17]Ktr M,Kumlu M&Eroldo an O T.Effects of temperature on acute toxicity of ammonia to Penaeus semisulcatus,juveniles[J].Aquaculture,2004,241(1-4):479-489.

      [18]Mummert A K,Neves R J,Newcomb T J,et al.Sensitivity ofjuvenile freshwater mussels(Lampsilis fasciola,Villosa iris)to total and un-ionized ammonia[J].Environmental Toxicology&Chemistry,2003,22(11):2545-2553.

      [19]Thurston R V,Russo R C&Vinogradov G A.Ammonia toxicitytofishes.Effect ofpH on the toxicity ofthe unionized ammonia species[J].EnvironmentalScience&Tech-nology,1981,15(7):837-840.

      [20]李波,樊啟學(xué),張磊,等.不同溶氧水平下氨氮和亞硝酸鹽對黃顙魚的急性毒性研究[J].淡水漁業(yè),2009,39(3):31-35.

      [21]唐賢明,隋曌,田景波,等.鹽度對大菱鲆幼魚耗氧率和排氨率的影響[J].南方水產(chǎn)科學(xué),2006,2(4):54-58.

      [22]Chen J C&Nan F H.Changes ofoxygen consumption and ammonia-N excretion by Penaeus chinensis Osbeck at different temperature and salinity levels [J].Journal of Crustacean Biology,1993,13(4):706-712.

      [23]柴學(xué)軍,胡則輝,徐君卓,等.鹽度和pH對日本黃姑魚幼魚耗氧率和排氨率的影響[J].浙江海洋學(xué)院學(xué)報:自然科學(xué)版,2009,28(2):146-150.

      [24]江敏,黃宗群,彭自然,等.異育銀鯽氨氮排泄與耗氧的研究[J].上海海洋大學(xué)學(xué)報,2007,16(1):28-32.

      [25]胡賢德,孫成波,蔡鶴翔,等.不同鹽度條件下氨氮對斑節(jié)對蝦的毒性試驗[J].廣西科學(xué),2009,16(2):206-209.

      [26]呂富,黃金田,呂林蘭,等.不同鹽度條件下氨氮對雙齒圍沙蠶的毒性研究[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2009,37(7):2986-2987.

      [27] Randall D J&Tsui T K.Ammonia toxicity in fish[J].Marine Pollution Bulletin,2002,45(1-12):17-23.

      [28]劉炎.環(huán)境因子對氨氮毒性影響及氨氮水生生物基準校驗[D].南京:南京大學(xué),2014.

      [29]EPA-822-D-09-001,Draft 2009 Update of Aquatic Life Ambient Water QualityCriteria for Ammonia-Freshwater[S].Washington,DC,2009.

      [30]GB11607-89,中華人民共和國漁業(yè)水質(zhì)標準[S].北京:中國標準出版社,1990.

      [31]Ip YK,ChewSF&Randall D J.Ammonia toxicity,tolerance,and excretion[J].Fish Physiology,2001,20(1):109-148.

      [32]Benli A C K,K?ksal G&?zkul A.Sublethal ammonia exposure of Nile tilapia (Oreochromis niloticus L.):effects on gill,liver and kidneyhistology[J].Chemosphere,2008,72(9):1355-1358.

      [33]Wilkie M P,Pamenter M E,Duquette S,et al.The relationship between NMDA receptor function and the high ammonia tolerance ofanoxia-tolerant goldfish [J].Journal ofExperimental Biology,2011,214(24):4107-4120.

      [34]李波,樊啟學(xué),楊凱,等.慢性氨氮脅迫對黃顙魚攝食、生長及血液指標的影響[J].應(yīng)用與環(huán)境生物學(xué)報,2011(6):824-828.

      [35]喬順風(fēng),李紅順.水體生物急性氨中毒的成因和調(diào)控技術(shù)[J].河北漁業(yè),2005(2):27-29.

      [36]Wee NLJ,TngY Y M,ChengH T,et al.Ammonia toxicity and tolerance in the brain of the African sharptooth catfish,Clarias gariepinus[J].Aquatic Toxicology,2007,82(3):204-213.

      [37] Jayakumar A R&Norenberg M D.The Na-K-Cl co-transporter in astrocyte swelling[J].Metabolic Brain Disease,2010,25(1):31-38.

      [38] Veauvy C M,Mcdonald M D,Van Audekerke J,et al.Ammonia affects brain nitrogen metabolism but not hydration status in the gulf toadfish (Opsanus beta)[J].Aquatic Toxicology,2005,74(1):32-46.

      [39] Rao V L R.Nitric oxide in hepatic encephalopathy and hyperammonemia[J].NeurochemistryInternational,2002,41(2-3):161-170.

      [40]Rodrigo R,Erceg S&Felipo V.Neurons exposed to ammonia reproduce the differential alteration in nitric oxide modulation of guanylate cyclase in the cerebellum and cortex of patients with liver cirrhosis[J].Neurobiology of Disease,2005,19(1-2):150-161.

      [41]Rodrigo R,Cauli O,Boix J,et al.Role ofNMDA receptors in acute liver failure and ammonia toxicity:therapeutical implications[J].Neurochemistry International,2009,55(1-3):113-118.

      [42]Braissant O,Mclin V A&Cudalbu C.Ammonia toxicityto the brain [J].Journal of Inherited Metabolic Disease,2012,36(4):595-612.

      [43]Klejman A,W?grzynowiczM,Szatmari E M,et al.Mechanisms of ammonia-induced cell death in rat cortical neurons:roles ofNMDAreceptors and glutathione[J].NeurochemistryInternational,2005,47(1-2):51-57.

      [44] Brusilow S W.Hyperammonemic encephalopathy[J].Medicine,2002,81(3):240-249.

      [45] Tsui T K N,Randall D J,Hanson L,et al.Dogmas and controversies in the handling of nitrogenous wastes:ammonia tolerance in the oriental weatherloach Misgurnus anguillicaudatus[J].JournalofExperimentalBiology,2004,207(12):1977-1983.

      [46]Ip Y K,Leong MW F,Sim MY,et al.Chronic and acute ammoniatoxicity in mudskippers,Periophthalmodon schlosseri and Boleophthalmus boddaerti:brain ammonia and glutamine contents,and effects of methionine sulfoximine and MK801 [J].Journal of Experimental Biology,2005,208(10):1993-2004.

      [47]Sinha A K,Giblen T,AbdElgawad H,et al.Regulation of amino acid metabolism as a defensive strategy in the brain of three freshwater teleosts in response to high environmental ammonia exposure[J].Aquatic Toxicology,2013,130-131(2):86-96.

      [48]P?rt P,Wright P A and Wood C M.Urea and water permeability in dogfish(Squalus acanthias)gills[J].Comparative Biochemistry&Physiology Part A Molecular&Integrative Physiology,1998,119(1):117-123.

      [49]Wilson J M,Iwata K,Iwama G K,et al.Inhibition of ammonia excretion and production in rainbow trout during severe alkaline exposure[J].Comparative Biochemistry&Physiology B Comparative Biochemistry,1998,121(1):99-109.

      [50]Lim C B,ChewS F,Anderson P M,et al.Reduction in the rates of protein and amino acid catabolism to slow down the accumulation of endogenous ammonia:a strategy potentially adopted by mudskippers(Periophthalmodon schlosseri and Boleophthalmus boddaerti)during aerial exposure in constant darkness[J].Journal ofExperimental Biology,2001,204(9):1605-1614.

      [51]Tsui T K,Randall D J,Chew S F,et al.Accumulation of ammonia in the body and NH3 volatilization from alkaline regions of the body surface during ammonia loading and exposure to air in the weather loach Misgurnus anguillicaudatus[J].J Exp Biol Journal of Experimental Biology,2002,205(5):651-659.

      [52]ChewS F,Jin Y&Ip Y K.The loach Misgurnus anguillicaudatus reduces amino acid catabolism and accumulates alanine and glutamine during aerial exposure[J].2001,74(2):226-237.

      [53]Wilson R W&Taylor E W.Transbranchial ammonia gradients and acid-base responses to high external ammonia concentration in rainbow trout(Oncorhynchus mykiss)acclimated todifferentsalinities[J].Journal ofExperimental Biology,1992,166(1):95-112.

      [54]Randall D J,Wilson J M,Peng K W,et al.The mudskipper,Periophthalmodon schloesseri,actively transports NH4+against a concentration gradient[J].American Journal ofPhysiology,2000,277(6):1562-1567.

      [55]Wilson J M,Randall DJ,DonowitzM,et al.Immunolocalization of ion-transport proteins to branchial epithelium mitochondria-rich cells in the mudskipper(Periophthalmodon schlosseri)[J].Journal ofExperimental Biology,2000,203(15):2297-2310.

      [56]Liu H,Xie S,Zhu X,et al.Effects of dietary ascorbic acid supplementation on the growth performance,immune and stress response in juvenile Leiocassis longirostris,Günther exposed to ammonia[J].Aquaculture Research,2008,39(15):1628-1638.

      [57] 陳秀梅.γ-氨基丁酸對建鯉生長、免疫和抗氨氮脅迫的影響[D].長春:吉林農(nóng)業(yè)大學(xué),2015.

      [58]張艷亮.維生素E對云紋石斑魚幼魚生長、免疫及抗脅迫能力的影響[D].上海:上海海洋大學(xué),2015.

      [59]胡毅,黃云,文華,等.維生素C對青魚幼魚生長、免疫及抗氨氮脅迫能力的影響[J].水產(chǎn)學(xué)報,2013,37(4):565-573.

      [60]羅娜,丁志麗,張易祥,等.飼料亞麻酸含量對日本沼蝦生長、抗氧化能力、非特異性免疫性能及抗氨氮脅迫能力的影響[J].動物營養(yǎng)學(xué)報,2017,29(1):134-146.

      [61]宋超,牛翠娟,陳欣然.殼聚糖對急性氨氮脅迫下中華鱉稚鱉非特異性免疫反應(yīng)的影響[J].動物學(xué)報,2007,53(2):270-277.

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