曹菲菲,康鵬玲,甄潤(rùn)英,*,郝宗鋒
(1.天津市食品研究所有限公司,天津301609;2.天津農(nóng)學(xué)院食品科學(xué)與生物工程學(xué)院,天津300384;3.天津?yàn)I海高新區(qū)衛(wèi)生監(jiān)督所,天津300384)
天然色素安全性高、色澤自然,而且天然色素在疾病預(yù)防和保健方面具有一定的保健功能[1-2]。花色苷能強(qiáng)烈吸收紫外光,在體內(nèi)起著紫外屏障作用,使細(xì)胞分化和其他生命過(guò)程正常進(jìn)行,同時(shí)能夠預(yù)防冠心病和心肌缺損,推遲癌細(xì)胞的生長(zhǎng),因此是一種具有較好開(kāi)發(fā)與應(yīng)用潛力的天然色素[3-4]。目前以花色苷為主要成分的產(chǎn)品投放到市場(chǎng),用于緩解使用電腦誘發(fā)的眼疲勞等癥狀[5]。
花色苷作為一種天然食用色素,安全、無(wú)毒,在食品領(lǐng)域有著巨大應(yīng)用潛力[6-7]。宋曉波等[8]在紫甘藍(lán)提取色素研究中,在溫度55℃、以25%乙醇為溶劑、pH=2的條件下,使用微波輔助萃取法,提取功率在100 W~600 W下測(cè)定紫甘藍(lán)色素的吸光度值(A525),隨著微波功率的變化,提取液的吸光度值先逐漸升高而后下降,并在功率為300 W時(shí)呈現(xiàn)最大值;孫雪花等[9]采用超聲波輔助提取法,在以蒸餾水為浸提劑,浸提時(shí)間50 min,液固比為 40 ∶1(mL/g),浸提溫度為 40℃,超聲輔助功率80%時(shí),浸提效果最優(yōu)。徐亞民等[10]通過(guò)普魯士藍(lán)法來(lái)測(cè)定總還原力,濃度在0~1 mg/mL時(shí),其還原能力隨著其濃度的增加而增強(qiáng);張會(huì)香等[11]采用DPPH自由基的清除試驗(yàn)測(cè)定其抗氧化活性,將紫甘藍(lán)鮮樣用0.35 mol/L鹽酸溶液,按液固比4∶1(mL/g)浸提,在微波爐中以900W功率浸提120s后測(cè)吸光度值,當(dāng)紫甘藍(lán)中花色苷濃度在0.05 mg/mL~0.15 mg/mL時(shí),清除DPPH自由基的清除率隨著濃度的升高而增大,當(dāng)紫甘藍(lán)色素液濃度為0.15mg/mL時(shí),其清除率最大。
本文以鮮紫甘藍(lán)為原料,采用常規(guī)水浴提取,使用鹽酸水溶液作為提取劑,考察時(shí)間、溫度、提取劑濃度對(duì)浸提效果的影響,進(jìn)而確定最佳提取條件,并進(jìn)一步測(cè)定提取物的抗氧化活性,以期為紫甘藍(lán)色素的充分開(kāi)發(fā)利用奠定一定理論基礎(chǔ)。
新鮮紫甘藍(lán):購(gòu)于天津市王頂?shù)淌卟伺l(fā)市場(chǎng)。
鹽酸(分析純):Sigma;三(羥甲基)氨基甲烷(Tri-( hydroxymethyl)aminomethane,Tris-HCl) 緩沖液、鄰苯三酚溶液、水楊酸-乙醇溶液、FeSO4溶液、抗壞血酸溶液均為分析純。
JJ-2B組織搗碎勻漿機(jī):金壇市榮華儀器制造有限公司;HWS-24電熱恒溫水浴鍋:上海一恒科學(xué)儀器有限公司;DGX-9053B-1電熱鼓風(fēng)干燥箱:上海福瑪實(shí)驗(yàn)設(shè)備有限公司;YP1002N電子天平:上海精密科學(xué)儀器有限公司;WFJ7200可見(jiàn)分光光度計(jì):尤尼柯(上海)儀器有限公司。
1.3.1 紫甘藍(lán)處理
稱(chēng)取一定質(zhì)量的新鮮紫甘藍(lán)切塊(長(zhǎng)×寬=2 cm×2 cm),按1∶1(質(zhì)量比)的比例加入蒸餾水放于組織搗碎勻漿機(jī)中,以10 000 r/min速度打漿3 min,取勻漿,備用。
1.3.2 紫甘藍(lán)色素提取的單因素試驗(yàn)
稱(chēng)取一定質(zhì)量的紫甘藍(lán)勻漿,然后選用鹽酸水溶液作為提取劑,考察提取劑的濃度、提取時(shí)間、提取溫度對(duì)紫甘藍(lán)色素提取效果的影響。
1.3.2.1 鹽酸濃度對(duì)紫甘藍(lán)色素提取的影響
分別稱(chēng)取9份10g紫甘藍(lán)勻漿置于燒杯中,編號(hào)后按勻漿 ∶鹽酸=1 ∶5(體積比)加入濃度 0、0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、0.30、0.35、0.40 mol/L 鹽酸溶液,在 60 ℃水浴鍋中浸提1 h,過(guò)濾后取10 mL濾液,用0.05 mol/L的鹽酸溶液定容至100 mL,搖勻后測(cè)波長(zhǎng)在526 nm下的吸光度值。
1.3.2.2 提取時(shí)間對(duì)紫甘藍(lán)色素提取的影響
分別稱(chēng)取6份10 g紫甘藍(lán)勻漿置于燒杯中,編號(hào)后按勻漿∶鹽酸=1∶5(體積比)加入0.30 mol/L鹽酸溶液,在 60 ℃的水浴鍋中分別浸提 0.5、1、1.5、2、2.5、3 h,過(guò)濾后取10 mL濾液,用0.05 mol/L鹽酸溶液定容至100 mL,搖勻后測(cè)波長(zhǎng)在526 nm下的吸光度值。
1.3.2.3 提取溫度對(duì)紫甘藍(lán)色素提取的影響
分別稱(chēng)取6份10 g紫甘藍(lán)漿液置于燒杯中,編號(hào)后按勻漿∶鹽酸=1∶5(體積比)加入0.30 mol/L鹽酸溶液,分別在 30、40、50、60、70、80 ℃的水浴鍋中浸提 1 h,過(guò)濾后取10 mL濾液,用0.05 mol/L鹽酸溶液定容至100 mL,搖勻后測(cè)波長(zhǎng)在526 nm下的吸光度值。
1.3.3 正交試驗(yàn)
在單因素的基礎(chǔ)上,設(shè)計(jì)了三因素三水平的正交試驗(yàn),以紫甘藍(lán)色素的吸光度值為指標(biāo),對(duì)工藝條件進(jìn)行優(yōu)化,因素及水平見(jiàn)表1。
表1 正交試驗(yàn)因素水平表Table 1 Orthogonal test factor level table
1.3.4 提取率計(jì)算
根據(jù)正交試驗(yàn)得出的最優(yōu)工藝進(jìn)行多次重復(fù)試驗(yàn),并對(duì)提取物進(jìn)行濃縮、干燥,稱(chēng)量提取物的重量,然后計(jì)算提取率。
式中:A1為提取后樣品吸光度值;A0為提取前的樣品吸光度值。
1.3.5 紫甘藍(lán)色素提取物抗氧化活性試驗(yàn)
1.3.5.1 紫甘藍(lán)色素提取物對(duì)超氧陰離子清除試驗(yàn)
1)鄰苯三酚自氧化法:配制濃度分別為 2、4、6、8、10、12、14、16、18 mg/mL 紫甘藍(lán)色素提取物溶液,進(jìn)行下列抗氧化試驗(yàn)。
2)樣品的測(cè)定過(guò)程:向試管中加入9 mL 50 mmol/L的Tris-Hcl緩沖液,在25℃水浴下保溫10 min后加入1 mL蒸餾水,最后加入250 μL 45 mmol/L鄰苯三酚溶液,立刻計(jì)時(shí)。搖勻后,倒入1 cm比色皿中,測(cè)定波長(zhǎng)在420nm下的吸光度值,記錄為A自氧化,然后用1mL待測(cè)樣品代替1 mL蒸餾水,按上述同樣的方法測(cè)定吸光度值,記錄為A加樣。每個(gè)濃度組平行測(cè)定3次,取其平均值,然后按下式計(jì)算抑制率。
1.3.5.2 紫甘藍(lán)色素提取物對(duì)羥自由基清除試驗(yàn)
1)水楊酸捕捉羥自由基法:配制濃度分別為0.2、0.4、0.6、0.8、1 mg/mL紫甘藍(lán)色素提取物溶液,進(jìn)行下列抗氧化試驗(yàn)。
2)樣品的測(cè)定過(guò)程:分別向5支試管中加入1 mL 8.8 mmol/L FeSO4、1 mL 9.1 mmol/L 水楊酸-乙醇溶液、1 mL樣品液和5 mL蒸餾水,再加入1 mL 0.06%H2O2啟動(dòng)反應(yīng),立即放入37℃水浴鍋中保溫30 min后,測(cè)定波長(zhǎng)在510nm下的吸光度值,記為A1。用1 mL的蒸餾水代替1 mL的H2O2,按上述同樣的方法測(cè)定吸光度值,記錄為A2。用1 mL蒸餾水代替1 mL樣品,按上述同樣的方法測(cè)定吸光度值,記錄為A3,每個(gè)濃度組平行測(cè)定3次,取其平均值,測(cè)定結(jié)果以清除率表示。
1.3.5.3 IC50的計(jì)算
采用Origin軟件計(jì)算紫甘藍(lán)色素提取物與抗壞血酸對(duì)超氧陰離子及羥自由基清除作用的IC50值。
2.1.1 鹽酸濃度對(duì)紫甘藍(lán)色素提取的影響
不同鹽酸濃度對(duì)紫甘藍(lán)色素提取效果的影響結(jié)果見(jiàn)圖1。
圖1 鹽酸濃度對(duì)紫甘藍(lán)色素提取液吸光度的影響Fig.1 Effect of hydrochloric acid concentration on absorbance of purple cabbage pigment extract
由圖1可知,鹽酸濃度在0~0.2 mol/L時(shí)紫甘藍(lán)色素提取液的吸光值變化不大,在0.2 mol/L~0.25 mol/L時(shí)迅速增大,并且當(dāng)鹽酸濃度為0.25 mol/L時(shí),紫甘藍(lán)色素提取液的吸光度值達(dá)到最大,隨后呈下降趨勢(shì),因此選擇濃度為0.25、0.3、0.35 mol/L進(jìn)行正交試驗(yàn)。
2.1.2 提取時(shí)間對(duì)紫甘藍(lán)色素提取的影響
不同提取時(shí)間對(duì)紫甘藍(lán)色素提取效果的影響結(jié)果,見(jiàn)圖2。
圖2 提取時(shí)間對(duì)紫甘藍(lán)色素提取液吸光度的影響Fig.2 Effect of extraction time on absorbance of purple cabbage pigment extract
由圖2可知,紫甘藍(lán)色素提取液的吸光度在0~0.5 h時(shí)迅速增大,在0.5 h~1.5 h時(shí)紫甘藍(lán)色素提取液的吸光度隨著提取時(shí)間的增加而緩慢增大,但超過(guò)1.5 h后,紫甘藍(lán)色素提取液的吸光度有緩慢下降的趨勢(shì),因此,選擇1、1.5、2 h進(jìn)行正交試驗(yàn)。
2.1.3 提取溫度對(duì)紫甘藍(lán)色素提取效果的影響
不同提取溫度對(duì)紫甘藍(lán)色素提取效果的影響,見(jiàn)圖3。
圖3 提取溫度對(duì)紫甘藍(lán)色素提取液吸光度的影響Fig.3 Effect of extraction temperature on absorbance of purple cabbage pigment extract
由圖3可知,紫甘藍(lán)色素提取液的吸光度在0℃~30℃時(shí)迅速增大,在30℃~60℃時(shí)紫甘藍(lán)色素提取液的吸光度緩慢增大,并且到60℃時(shí)達(dá)到最高點(diǎn),隨后呈緩慢下降的趨勢(shì),因此,選擇40、50、60℃進(jìn)行正交試驗(yàn)。
提取工藝的正交試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表2。
表2 正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果Table 2 Design and result of orthogonal test
根據(jù)表2由極差分析結(jié)果可以看出:對(duì)紫甘藍(lán)色素提取效果的影響因素主次順序依次為:提取溫度>鹽酸濃度>提取時(shí)間,即提取溫度是最主要因素,鹽酸濃度是次要因素,提取時(shí)間的影響效果不明顯。根據(jù)正交試驗(yàn)分析得出的最佳組合是A3B3C2,而表中直觀分析得到的最佳組合也是A3B3C2。
通過(guò)計(jì)算得到紫甘藍(lán)色素提取物的提取率為1.67%。
2.3.1 不同濃度紫甘藍(lán)色素提取物對(duì)超氧陰離子清除試驗(yàn)
紫甘藍(lán)色素提取物對(duì)超氧陰離子清除效果見(jiàn)圖4。
圖4 紫甘藍(lán)色素提取物對(duì)超氧陰離子的清除能力Fig.4 Scavenging capacity of purple cabbage pigment to superoxide anion
由圖4可知,紫甘藍(lán)色素提取物濃度在0~12mg/mL時(shí)紫甘藍(lán)色素清除超氧陰離子的能力隨著濃度的增加而增大,隨后呈下降趨勢(shì)。
抗壞血酸對(duì)超氧陰離子清除效果見(jiàn)圖5。
圖5 抗壞血酸對(duì)超氧陰離子的清除能力Fig.5 Scavenging ability of ascorbic acid to superoxide anion
由圖5可知,抗壞血酸濃度在0~0.8 mg/mL時(shí)抗壞血酸清除超氧陰離子的能力隨著濃度的增加而增大,隨后呈下降趨勢(shì)。
紫甘藍(lán)色素提取物與抗壞血酸清除超氧陰離子的 IC50,見(jiàn)圖6。
圖6 紫甘藍(lán)色素提取物與抗壞血酸清除超氧陰離子的IC50比較Fig.6 IC50comparison between purple cabbage pigment extract and ascorbic acid scavenging superoxide anion
由圖6可以看出,紫甘藍(lán)色素提取物清除超氧陰離子的IC50=2.301 mg/mL,抗壞血酸清除超氧陰離子的IC50=0.029 35 mg/mL。所以,紫甘藍(lán)色素提取物對(duì)超氧陰離子的清除能力小于抗壞血酸對(duì)超氧陰離子的清除能力。
2.3.2 不同濃度紫甘藍(lán)色素提取物對(duì)羥自由基清除試驗(yàn)
紫甘藍(lán)色素提取物對(duì)羥自由基清除效果見(jiàn)圖7。
圖7 紫甘藍(lán)色素提取物對(duì)羥自由基清除能力Fig.7 Scavenging capacity of purple cabbage pigment extracts to hydroxyl radicals
由圖7可知,濃度在0~0.6 mg/mL的范圍內(nèi),紫甘藍(lán)色素清除羥自由基的能力隨著濃度的增加而增大,隨后下降并趨于穩(wěn)定。
抗壞血素對(duì)羥自由基清除效果見(jiàn)圖8。
圖8 抗壞血酸對(duì)羥自由基清除能力Fig.8 Scavenging ability of ascorbic acid to hydroxyl radicals
由圖8可知,濃度在0~0.8 mg/mL時(shí),抗壞血酸清除羥自由基的能力隨著濃度的增加而增大,到0.8mg/mL后下降。
紫甘藍(lán)色素提取物與抗壞血酸清除羥自由的IC50,見(jiàn)圖9。
圖9 紫甘藍(lán)色素提取物與抗壞血酸清除羥自由的IC50Fig.9 Purple cabbage pigment extract and ascorbic acid scavenging hydroxyl free IC50
圖9可以看出,紫甘藍(lán)色素提取物清除氫自由基的IC50=0.956 9 mg/mL,抗壞血酸清除氫自由基的IC50=0.046 76 mg/mL。所以,抗壞血酸清除羥自由基的能力要比紫甘藍(lán)色素提取物的清除能力強(qiáng)。
2.3.3 抗氧化試驗(yàn)的結(jié)果討論
試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),提取物對(duì)羥自由基的清除作用比較強(qiáng),而對(duì)超氧陰離子的清除作用比較弱。此外,在相對(duì)較低的濃度下,紫甘藍(lán)色素提取物對(duì)超氧陰離子和氫自由基的清除作用隨著其濃度的增加而明顯增強(qiáng),但是達(dá)到一定濃度后對(duì)超氧陰離子和氫自由基的清除效果呈緩慢下降趨勢(shì)。這是因?yàn)榭寡趸瘎┍旧順O易被氧化,若添加過(guò)量,被氧化了的抗氧化劑反而可能有助氧化的作用[12-14]。因此,如果作為天然抗氧化劑在實(shí)際生產(chǎn)中應(yīng)用時(shí),要選擇適宜的劑量范圍,以達(dá)到最佳的抗氧化效果。
鹽酸濃度:花色苷在pH≤3的酸性條件下穩(wěn)定,而當(dāng)pH值升高時(shí),花色苷會(huì)轉(zhuǎn)化為醇型假堿式結(jié)構(gòu),若pH值再提高,則會(huì)導(dǎo)致假堿開(kāi)環(huán)降解,尤其當(dāng)pH>7時(shí),極不穩(wěn)定[15]。因此,紫甘藍(lán)色素適合在酸性條件下浸提。
提取溫度:在溫度升高的一定范圍內(nèi),花色苷會(huì)向吡喃陽(yáng)離子轉(zhuǎn)變,而當(dāng)溫度繼續(xù)升高的時(shí),花色苷極不穩(wěn)定,因?yàn)楦邷貢?huì)促使花色苷向假堿式轉(zhuǎn)變以致開(kāi)環(huán)降解[16]。因此,隨著溫度的變化,紫甘藍(lán)色素提取液的吸光值先逐漸升高,然后下降。
提取時(shí)間:隨著提取時(shí)間的增長(zhǎng),紫甘藍(lán)色素的提取量逐漸增加,且在1.5 h時(shí)達(dá)到最大,出現(xiàn)這種結(jié)果可能是因?yàn)樵诙虝r(shí)間內(nèi),60℃保溫淀粉不會(huì)糊化,隨著時(shí)間的延長(zhǎng)淀粉也會(huì)出現(xiàn)糊化現(xiàn)象,淀粉糊化影響花色苷的溶出,從而影響提取效率[12]。
根據(jù)表2正交試驗(yàn)結(jié)果,直觀分析和極差分析即提取溫度60℃,提取時(shí)間2 h,鹽酸濃度為0.3 mol/L的條件下,紫甘藍(lán)色素的提取率為1.67%。
1)以新鮮紫甘藍(lán)勻漿[紫甘藍(lán) ∶水=1 ∶1(g/mL)]∶鹽酸=1∶5(體積比)加入0.3 mol/L的鹽酸溶液,在60℃下浸提2 h,紫甘藍(lán)色素的提取率為1.67%。
2)在濃度0~12 mg/mL范圍內(nèi),隨著濃度的增加,紫甘藍(lán)色素提取物對(duì)超氧陰離子的清除能力增強(qiáng),對(duì)超氧陰離子清除能力的IC50為2.301 mg/mL。
3)在濃度0~0.6 mol/mL的范圍內(nèi),隨著濃度的增加,紫甘藍(lán)色素提取物對(duì)羥自由基的清除能力增強(qiáng),對(duì)氫自由基清除能力的IC50為0.956 9 mg/mL。
4)紫甘藍(lán)色素提取物對(duì)氫自由基的清除效果強(qiáng)于超氧陰離子的清除效果。