白 皓, 杜偉立, 路宏朝, 王 令, 張 濤
(陜西理工大學(xué) 生物科學(xué)與工程學(xué)院, 陜西 漢中 723000)
亞硫酸鹽轉(zhuǎn)運蛋白(SSU1)屬于TDT(Tellurite-resistance/dicarboxylate transporter family)家族[1],以亞硫酸外流泵的形式結(jié)合于細胞膜,調(diào)節(jié)細胞內(nèi)亞硫酸鹽的外排[2-4]。一般來說,如果胞內(nèi)亞硫酸鹽濃度積累過高,亞硫酸鹽不能及時排至胞外會導(dǎo)致胞內(nèi)鹽離子濃度過高,從而影響細胞代謝,造成細胞損傷等問題。在釀酒過程中SO2積累所轉(zhuǎn)化的亞硫酸鹽與膜受體結(jié)合會引起膜損傷[5],細胞內(nèi)容物外流,抑制ATP合成,同時亞硫酸還通過與酶或代謝產(chǎn)物結(jié)合的多個代謝途徑[6]等多個水平影響微生物的活性,并由此導(dǎo)致細胞生長滯后、誘導(dǎo)孢子生成或細胞死亡等一系列異常表現(xiàn),所以在釀酒業(yè)中釀酒酵母菌株對SO2耐受性的選擇是一項重要的指標(biāo)[7-8]。Avram等[9]研究了SSU1基因與FZF1轉(zhuǎn)錄因子之間的關(guān)系,發(fā)現(xiàn)FZF1的破壞導(dǎo)致亞硫酸鹽的敏感性,并闡述了FZF1對SSU1基因具有正向調(diào)節(jié)作用。Nardi T等[10]對生長在不同環(huán)境下的釀酒酵母進行發(fā)酵試驗,驗證了SSU1基因所控制表達的亞硫酸鹽轉(zhuǎn)運蛋白可以調(diào)節(jié)亞硫酸鹽代謝,進而證明酵母的SSU1基因可以促使亞硫酸外排,并是引起酵母菌株產(chǎn)生耐受性差異的主要原因之一。
為了進一步獲得高水平表達亞硫酸鹽轉(zhuǎn)運蛋白的釀酒酵母菌株,本研究運用基因工程技術(shù),構(gòu)建多拷貝SSU1基因的釀酒酵母工程菌株,增加亞硫酸鹽轉(zhuǎn)運蛋白表達量,從而使其結(jié)合在細胞膜上并將亞硫酸鹽排出細胞外,避免亞硫酸鹽的積累對細胞的損傷。為生產(chǎn)實踐中開發(fā)亞硫酸鹽耐受性強的優(yōu)良工程菌株提供理論基礎(chǔ)。
真核表達載體JMB440、釀酒酵母AH109和大腸桿菌E.coliTop10感受態(tài)細胞由陜西理工大學(xué)分子遺傳研究室保存;RNA酶、Ex-Taq DNA聚合酶、T4 DNA連接酶、限制性內(nèi)切酶BamH Ⅰ、Xho Ⅰ、蝸牛裂解酶和氨芐西林,購自寶生物工程(大連)有限公司。DL-2000 Marker、低分子質(zhì)量蛋白標(biāo)準,購自Thermo Fisher公司。質(zhì)粒提取試劑盒、DNA純化試劑盒,購自BioFlux公司。基因序列測序和引物合成由北京奧科鼎盛生物有限公司完成。
1.2.1 引物的設(shè)計
1.2.2 釀酒酵母SSU1基因的擴增
復(fù)蘇及培養(yǎng)釀酒酵母AH109,采用珠磨法提取酵母基因組DNA。以基因組DNA為模板,以SSU1 F,R為引物,PCR擴增釀酒酵母SSU1基因,其PCR反應(yīng)體系(50 μL):Taq酶緩沖液5 μL,Mg2+6 μL,dNTP 5 μL,F(xiàn),R引物各2 μL,模板1 μL,Taq酶0.3 μL,水28.7 μL。PCR反應(yīng)條件:95 ℃預(yù)變性5 min;95 ℃變性30 s,63 ℃退火30 s,72 ℃延伸2 min,共34個循環(huán);72 ℃延伸10 min,12 ℃保存。PCR產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測,DNA純化試劑盒回收SSU1基因片段。
1.2.3 JMB440-SSU1真核表達載體的構(gòu)建
BamH Ⅰ和Xho Ⅰ雙酶切純化SSU1基因片段和骨架載體JMB440,然后用T4連接酶將SSU1基因和JMB440連接,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化至E.coliTop10感受態(tài)細胞。以SSU1F,R為引物采用菌落PCR,BamH Ⅰ和Xho Ⅰ雙酶切以及測序鑒定,獲得重組載體JMB440-SSU1。
1.2.4 酵母轉(zhuǎn)化以及SSU1基因表達檢測
通過酵母一步轉(zhuǎn)化法將表達載體JMB440-SSU1轉(zhuǎn)化至釀酒酵母AH109,涂布于缺少亮氨酸的酵母營養(yǎng)缺陷型固體培養(yǎng)基(Synthetic Dropout Medium,SD),30 ℃培養(yǎng)48 h。挑取酵母單克隆至3 mL無亮氨酸的SD液體培養(yǎng)基,在30 ℃,2000 r/min的搖床培養(yǎng)。以相同條件培養(yǎng)野生型AH109作為對照。當(dāng)酵母培養(yǎng)液OD600(在600 nm處溶液的吸光值)約0.5 h,收集菌體,磷酸緩沖液(PBS)重懸,加SDS-PAGE上樣緩沖液沸水浴10 min,冷凍離心取蛋白上清液,12% SDS-PAGE電泳檢測蛋白表達情況。
通過珠磨法提取高質(zhì)量的釀酒酵母基因組DNA(圖1),以此DNA為模板,PCR擴增SSU1基因,其片段約為1600 bp,瓊脂糖凝膠電泳顯示與預(yù)期的SSU1基因目標(biāo)片段1563 bp一致(圖2),由此可以證明成功獲得SSU1基因片段。
M.DNA標(biāo)準DL2000;1—3.釀酒酵母基因組DNA M.DNA標(biāo)準DL2000;1—5.SSU1基因 圖1 酵母基因組DNA檢測結(jié)果 圖2 SSU1基因擴增結(jié)果
圖3 構(gòu)建JMB440-SSU1
BamH Ⅰ和Xho Ⅰ雙酶切純化SSU1基因片段和骨架載體JMB440,然后用T4連接酶將SSU1基因和JMB440連接獲得重組載體JMB440-SSU1(圖3),連接產(chǎn)物JMB440-SSU1轉(zhuǎn)化至E.coliTop10感受態(tài)細胞于37 ℃過夜培養(yǎng),挑取12個單克隆進行菌落PCR鑒定。經(jīng)電泳檢測,10個泳道均有單一清晰條帶,其大小約為1600 bp,與SSU1基因長度1563 bp相一致(圖4);然后選取2,3號單克隆,提取質(zhì)粒進行雙酶切鑒定,結(jié)果表明能切出1600 bp的SSU1基因和骨架載體兩條帶,與預(yù)期的結(jié)果相一致(圖5)。
將這兩個陽性克隆測序,結(jié)果表明:SSU1基因準確地插入JMB440酵母表達載體,但是存在一個突變位點(圖6),其SSU1的活性不會受到影響。為了進一步了解SSU1的功能,本研究對SSU1蛋白三維結(jié)構(gòu)預(yù)測,結(jié)果如圖7所示:SSU1蛋白與陽性克隆蛋白進行比對,SSU1蛋白是由α螺旋和少量無規(guī)則卷曲組成的同型三聚體,無配體,結(jié)構(gòu)簡單,可能擁有更直接的功能作用。
M.DNA標(biāo)準DL2000;1—12.單克隆菌落 M.DNA2000 Marker DL;1—2.兩個單克隆提取的質(zhì)粒雙酶切鑒定圖4 菌落PCR 圖5 質(zhì)粒酶切檢測結(jié)果
P1-SSU1是質(zhì)粒中SSU1基因序列;SSU1是NCBI中公布的基因序列圖6 測序結(jié)果與SSU1基因序列比對
P1-SSU1是質(zhì)粒中SSU1基因蛋白三維結(jié)構(gòu)預(yù)測;SSU1是SSU1序列蛋白結(jié)構(gòu)預(yù)測 M.蛋白質(zhì)分子質(zhì)量標(biāo)準;1.空白對照菌株;2—3.工程菌株圖7 陽性克隆預(yù)測蛋白與SSU1預(yù)測蛋白比對 圖8 SDS-PAGE檢測
通過SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳檢測SSU1基因表達,上樣量20 μL。結(jié)果表明在約45 KD處有一條與預(yù)期的SSU1基因所表達的蛋白分子量相一致,但是實驗組與對照組在相同水平下處理,其實驗組蛋白表達量比對照組高(圖8)。因此可以證明本研究成功構(gòu)建能夠高效表達SSU1基因重組釀酒酵母菌株AH109-JMB440-SSU1。
SSU1蛋白是一種參與釀酒酵母亞硫酸鹽代謝、調(diào)控亞硫酸鹽外流的質(zhì)膜蛋白[11]。在酵母細胞硫代謝過程中,SSU1基因編碼的亞硫酸鹽轉(zhuǎn)運蛋白會以亞硫酸鹽外流泵的形式錨定于細胞膜,當(dāng)酵母細胞中亞硫酸鹽過度積累,過量的亞硫酸鹽可以通過亞硫酸鹽外流泵從細胞內(nèi)運輸?shù)郊毎?,減少其對酵母細胞的毒害作用[12]。
研究發(fā)現(xiàn),SSU1無效突變體相比野生型,能夠積累更多的亞硫酸鹽,而表達多拷貝SSU1的酵母細胞積累顯著更少,同時多拷貝SSU1基因也能將一些不相關(guān)的亞硫酸鹽敏感菌株的亞硫酸鹽抗性提高3~8倍[13]。
本研究利用酵母表達載體可產(chǎn)生多拷貝基因的優(yōu)勢,成功構(gòu)建了JMB440-SSU1重組真核表達載體,測序鑒定結(jié)果與NCBI公布的SSU1基因序列一致。同時發(fā)現(xiàn)SSU1基因存在較高的多態(tài)性,有利于酵母細胞的繁殖和代謝。然后將其轉(zhuǎn)化至AH109菌株中,完成了對釀酒酵母的優(yōu)化。通過成功構(gòu)建高水平表達SSU1的優(yōu)良酵母,一方面為獲得亞硫酸鹽耐受性強的優(yōu)良工程菌株起到指導(dǎo)作用,另一方面也為釀酒酵母在其他基因方面的優(yōu)化奠定理論基礎(chǔ)。