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      雜交蛋白氧載體光動(dòng)力治療誘導(dǎo)免疫原性細(xì)胞死亡的研究

      2018-09-21 09:45:58陳志寬劉蘭蘭梁銳晶何華美鄭明彬蔡林濤
      集成技術(shù) 2018年5期
      關(guān)鍵詞:免疫原性光敏劑樹突

      陳志寬 劉蘭蘭 梁銳晶 何華美 鄭明彬,3 蔡林濤

      1(中國科學(xué)院深圳先進(jìn)技術(shù)研究院 深圳 518055)

      2(中國科學(xué)院大學(xué) 北京 100049)

      3(廣東醫(yī)科大學(xué) 東莞 523808)

      1 引 言

      光動(dòng)力治療(Photodynamic Therapy,PDT)因其毒副作用小、非侵襲性、高度時(shí)空選擇性等優(yōu)點(diǎn)而被廣泛應(yīng)用于鱗狀細(xì)胞癌、食管癌、膀胱癌等多種癌癥的治療,是一種具有重要臨床應(yīng)用前景的腫瘤治療策略[1]。光敏劑被激光激發(fā)后將氧氣轉(zhuǎn)化成具有細(xì)胞毒性的活性氧,從而產(chǎn)生高效的腫瘤細(xì)胞殺傷效果[2]。盡管 PDT 在腫瘤治療中展現(xiàn)了巨大的優(yōu)勢,但仍然存在許多不足。一方面,大部分光敏劑難溶于水,生物利用率差和腫瘤富集量低[3]。另一方面,實(shí)體瘤嚴(yán)重缺氧,使得 PDT 效果受到了限制[4,5]。因此,開發(fā)能高效包載光敏劑并具有自供氧能力的藥物遞送體系,對(duì)增強(qiáng) PDT 療效具有重要意義。

      蛋白質(zhì)具有良好的生物相容性、生物穩(wěn)定性、功能與結(jié)構(gòu)多樣性,已成為載藥、增氧、靶向等納米藥物遞送平臺(tái)的重要材料[6-8]。人血清白蛋白(Human Serum Albumin,HSA)作為人體內(nèi)源性蛋白,已被美國食品藥品監(jiān)督管理局(FDA)批準(zhǔn)應(yīng)用于臨床。該蛋白具有藥物分子結(jié)合能力強(qiáng)、安全性高、主動(dòng)靶向性強(qiáng)、體內(nèi)循環(huán)穩(wěn)定性好且半衰期長等優(yōu)點(diǎn),在眾多納米載藥系統(tǒng)中具有巨大的優(yōu)勢[8,9]。血紅蛋白(Hemoglobin,Hb)作為血液中紅細(xì)胞的主要組成成分,負(fù)責(zé)氧氣的運(yùn)載,為機(jī)體的組織和細(xì)胞供氧。得益于 Hb 天然的載氧能力和良好的生物相容性,Hb 類氧載體作為一類血液替代品已應(yīng)用于臨床[10],其在腫瘤治療的應(yīng)用也日益受到關(guān)注[11,12]。據(jù)報(bào)道,將兩種功能各異的蛋白質(zhì)合成雜交蛋白納米組裝體,能在一個(gè)體系中同時(shí)實(shí)現(xiàn)兩種蛋白質(zhì)分子生物功能[13,14]。因此,構(gòu)建包載光敏劑的 HSA/Hb 雜交蛋白納米氧載體有望成為一種能實(shí)現(xiàn)腫瘤靶向和增強(qiáng) PDT 療效的新策略。

      研究發(fā)現(xiàn),放射治療、光動(dòng)力治療、某些化療藥物(如蒽環(huán)類藥物)能誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞發(fā)生“免疫原性細(xì)胞死亡”。其中,免疫原性細(xì)胞死亡依賴一類被稱作“損傷相關(guān)分子模式”的免疫刺激信號(hào)分子(如鈣網(wǎng)蛋白、高遷移率族蛋白 B1 和三磷酸腺苷等)的釋放來激活和募集抗原遞呈細(xì)胞,隨后活化 T 細(xì)胞產(chǎn)生特異性抗腫瘤免疫應(yīng)答[15]。研究癌癥療法的免疫原性細(xì)胞死亡誘導(dǎo)情況,對(duì)評(píng)估癌癥治療療效、優(yōu)化治療策略具有重要意義。因此,本研究利用性能優(yōu)異的 HSA、天然載氧蛋白 Hb 以及光敏劑 Ce6 為材料,通過二硫鍵共價(jià)偶聯(lián)的方法構(gòu)建包載 Ce6 的雜交蛋白氧載體(C@Hb/HSA),并以結(jié)腸癌細(xì)胞系(CT26.WT)為研究模型,考察其體外 PDT 效應(yīng),探討 C@Hb/HSA 介導(dǎo)的PDT 能否誘導(dǎo) CT26.WT 細(xì)胞產(chǎn)生免疫原性細(xì)胞死亡。

      2 材料與方法

      2.1 材料

      人血清白蛋白(HSA)購自美國 Sigma 公司;血紅蛋白(Hb)和谷胱甘肽均購自合肥博美生物科技有限責(zé)任公司;光敏劑 Ce6 購自北京百靈威科技有限公司;鼠源結(jié)腸癌細(xì)胞(CT26.WT)購自中國科學(xué)院典型培養(yǎng)物保藏委員會(huì)細(xì)胞庫;RPMI-1640 培養(yǎng)基、磷酸鹽緩沖液均購自美國 Hyclone公司;X-Vivo15 培養(yǎng)基購自瑞士 Lonza 公司;粒細(xì)胞巨噬細(xì)胞刺激因子、白細(xì)胞介素-4 均購自美國 PeproTech 公司;胰酶、胎牛血清、青霉素和鏈霉素均購自美國 Gibco 公司;活性氧熒光探針(2′, 7′-二氯二氫熒光素二乙酸酯,DCFHDA)購自美國 Sigma-Aldrich 公司;CCK-8 試劑盒購自上海碧云天生物技術(shù)公司;兔源的 antimouse calreticulin、anti-rabbit-Alexa Fluor 488 抗體均購自美國 Life technologies 公司;anti-mouse MHC II-PE、anti-mouse CD86-Percp 抗體均購自美國 eBioscience 公司;6 周齡 BALB/c 小鼠購自北京維通利華實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心。所有操作均符合中國科學(xué)院深圳先進(jìn)技術(shù)研究院動(dòng)物倫理管理協(xié)議(SIAT-IRB-160223-YYS-ZMB-A0185)的要求。

      2.2 實(shí)驗(yàn)方法

      2.2.1 C@Hb/HSA 納米顆粒的制備

      首先,將 HSA 與還原劑——谷胱甘肽按3∶1 的質(zhì)量比共溶于去離子水中(HSA 的濃度為 60 mg/mL),在室溫下攪拌反應(yīng) 1 h。然后,采用透析法除去反應(yīng)溶液中過量的谷胱甘肽分子,得到還原后的 HSA 溶液。接著,將還原后的 HSA 溶液與預(yù)處理的 Hb 溶液、Ce6 溶液(溶于二甲基亞砜)混合,使 HSA、Hb、Ce6 的質(zhì)量比為 50∶9∶1。溶液充分混合后,將 pH 調(diào)節(jié)至8.0,在劇烈攪拌的條件下,迅速加入 1.5 倍體積的無水乙醇溶液,室溫?cái)嚢璺磻?yīng) 30 min。最后,反應(yīng)溶液通過超濾法(超濾膜截留分子量為 100 kD,離心轉(zhuǎn)速為 4 500 rpm)除去乙醇、游離的 Ce6、Hb 和 HSA,即得 C@Hb/HSA 納米顆粒。

      2.2.2 C@Hb/HSA 納米顆粒的表征

      C@Hb/HSA 的粒徑分布、表面電位由Zetasizer Nano ZS 粒度儀(Malvern)在室溫下測得。C@Hb/HSA 的形貌通過透射電子顯微鏡(FEI Tecnai G2 F20 S-Twin)進(jìn)行表征。采用紫外/可見分光光度計(jì)(Perkin-Elmer Lambda25)測定C@Hb/HSA 的紫外-可見吸收光譜。C@Hb/HSA的氧釋放曲線測定方法如下:C@Hb/HSA 充氧后,將 1 mL 的 C@Hb/HSA (相應(yīng) Hb 濃度為4 mg/mL)注入體積為 10 mL 的低氧水溶液中,插入溶氧儀探頭(Mettler Toledo)后立刻用乙酸乙酯液封,記錄不同時(shí)間點(diǎn)測得的溶氧濃度,并計(jì)算其與本底溶氧濃度的差值。

      2.2.3 小鼠 CT26.WT 細(xì)胞的培養(yǎng)

      選用鼠源的結(jié)腸癌細(xì)胞系 CT26.WT 來開展細(xì)胞實(shí)驗(yàn),CT26.WT 細(xì)胞用 RPMI-1640 完全培養(yǎng)基(含有 10% 胎牛血清,1% 雙抗)進(jìn)行培養(yǎng),培養(yǎng)條件為 37℃、5% CO2。

      2.2.4 小鼠樹突狀細(xì)胞的分離與培養(yǎng)

      BALB/c 小鼠采用頸椎脫臼處死,用 75% 乙醇浸泡消毒后,無菌條件下,取出小鼠的脛骨和股骨,置于含有 2% 胎牛血清的磷酸鹽緩沖液中,并用 1 mL 注射器吸取含血清的磷酸鹽緩沖液將脛骨和股骨內(nèi)的骨髓細(xì)胞吹出。細(xì)胞吹散后,用 200 目的篩網(wǎng)過濾并收集于 15 mL 的離心管內(nèi),4℃、1 400 rpm 下離心 5 min,往細(xì)胞沉淀中加入 1 mL 紅細(xì)胞裂解液,室溫裂解 1 min,然后加入 3 mL RPMI-1640 培養(yǎng)基終止反應(yīng)。低速離心后,細(xì)胞置于含 10% 胎牛血清、鈣鎂離子的 RPMI-1640 中貼壁 6 h。收集未貼壁細(xì)胞,低速離心后,細(xì)胞重懸于 X-Vivo15 培養(yǎng)基(含 10 ng/mL 白細(xì)胞介素-4、20 ng/mL 粒細(xì)胞巨噬細(xì)胞刺激因子、20% 腫瘤細(xì)胞培養(yǎng)上清),并接種到 24 孔板中培養(yǎng)。培養(yǎng)至第 4 天時(shí),用新鮮的 X-Vivo15 培養(yǎng)基進(jìn)行半量換液。培養(yǎng)至第6 天時(shí),收集懸浮未貼壁的細(xì)胞,即為小鼠未成熟的樹突狀細(xì)胞。補(bǔ)充新鮮的培養(yǎng)基,重新接種后,便可用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

      2.2.5 細(xì)胞毒性實(shí)驗(yàn)

      為了研究 C@Hb/HSA 的體外 PDT 效果,CT26.WT 細(xì)胞以 8×103個(gè)/孔的密度接種于 96孔板中,培養(yǎng) 12 h 后更換培養(yǎng)基,分別加入不同劑量的游離 Ce6 和 C@Hb/HSA 納米顆粒(0~1.0 μg/mL)。密封孵育 2 h 后,660 nm 激光照射 2 min (100 mW/cm2),同時(shí)設(shè)置沒有激光處理的對(duì)照組。繼續(xù)培養(yǎng) 24 h 后,余下步驟按照CCK-8 試劑盒的說明書進(jìn)行操作,最后用酶標(biāo)儀(BioTek)測定各孔在 450 nm 處的吸光度值。

      2.2.6 細(xì)胞流式實(shí)驗(yàn)

      (1)細(xì)胞內(nèi)活性氧的檢測

      首先,將 CT26.WT 細(xì)胞接種于 24 孔板(5×104個(gè)/孔)中,培養(yǎng) 12 h,使細(xì)胞充分貼壁生長。細(xì)胞的培養(yǎng)基分別替換為 RPMI-1640 培養(yǎng)基、含游離 Ce6(1.0 μg/mL Ce6)或 C@Hb/HSA(1.0 μg/mL Ce6)的培養(yǎng)基。然后,密封孵育 2 h,660 nm 激光照射 2 min (100 mW/cm2),同時(shí)設(shè)置沒有激光照射的 C@Hb/HSA 組作對(duì)照。最后,快速加入活性氧檢測探針 DCFH-DA(20 μM),繼續(xù)孵育 30 min 后,收集細(xì)胞并使用流式細(xì)胞分析儀(FACS CANTO II,BD)分析細(xì)胞中活性氧的產(chǎn)生情況。

      (2)細(xì)胞表面鈣網(wǎng)蛋白的暴露

      將 CT26.WT 細(xì)胞以 5×104個(gè)/孔的密度,接種于 24 孔板中。培養(yǎng) 12 h 后,分別更換為RPMI-1640 培養(yǎng)基、含游離 Ce6(1.0 μg/mL Ce6)或 C@Hb/HSA(1.0 μg/mL Ce6)的培養(yǎng)基,密封孵育 2 h 后,100 mW/cm2的 660 nm 激光照射2 min,同時(shí)設(shè)置沒有激光處理的 C@Hb/HSA 組作對(duì)照。繼續(xù)培養(yǎng) 24 h 后,收集細(xì)胞,先加入抗小鼠鈣網(wǎng)蛋白抗體(Anti-mouse Calreticulin),在4℃ 避光孵育 2 h。隨后,細(xì)胞經(jīng)過洗滌后,加入 anti-rabbit-Alexa Fluor 488 抗體,孵育 1 h。最后,經(jīng)緩沖液洗滌后,采用流式細(xì)胞分析儀分析各組細(xì)胞的鈣網(wǎng)蛋白暴露水平。

      (3)樹突狀細(xì)胞的體外成熟誘導(dǎo)

      CT26.WT 細(xì)胞接種在 24 孔板中,細(xì)胞數(shù)為5×104個(gè)/孔。培養(yǎng) 12 h 后,分別替換為不加藥物的培養(yǎng)基、含 1.0 μg/mL Ce6 或載有 1.0 μg/mL Ce6的 C@Hb/HSA 的培養(yǎng)基,密封孵育 2 h 后,660 nm 激光處理(100 mW/cm2,2 min)細(xì)胞,同時(shí)設(shè)置沒有激光處理的 C@Hb/HSA 組作對(duì)照。繼續(xù)培養(yǎng) 24 h 后,各組細(xì)胞與分離后培養(yǎng)到第 6 天狀態(tài)良好的小鼠未成熟樹突狀細(xì)胞(5×105個(gè)/孔)共培養(yǎng)。24 h 后,收集樹突狀細(xì)胞,加入 anti-mouse MHC II-PE、anti-mouse CD86-Percp 抗體,4℃ 避光孵育 30 min。洗滌細(xì)胞后,采用流式細(xì)胞分析儀分析各組樹突狀細(xì)胞表面分子 MHC II、CD86 的表達(dá)情況。

      2.2.7 統(tǒng)計(jì)分析

      使用 Origin2015 軟件處理實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù),實(shí)驗(yàn)結(jié)果均以“平均值±標(biāo)準(zhǔn)差”(n=3)表示。組間差異采用單因素方差分析(One-way ANOVA)和Tukey 檢驗(yàn)進(jìn)行分析。其中,P<0.001 表示有極其顯著的統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。

      3 結(jié)果與分析

      3.1 C@Hb/HSA 納米顆粒的表征

      本文采用分子間二硫鍵共價(jià)偶聯(lián)方法將Hb 與 HSA 進(jìn)行雜交結(jié)合,構(gòu)建包載 Ce6 的C@Hb/HSA 納米顆粒。C@Hb/HSA 的透射電鏡圖顯示納米顆粒呈近似球形,分散性較好(圖1(a)中的插圖)。納米顆粒的粒徑分布圖如圖 1(a)所示,通過粒度儀測得納米顆粒的平均粒徑為(25.8±5.0)nm,Zeta 電位為(-30.9±0.9)mV。由圖 1(b)紫外-可見吸收光圖譜可知,C@Hb/HSA的特征吸收峰與游離 Ce6 基本一致,僅在 662 nm處有 2 nm 的紅移,表明 Ce6 被包載后,基本保持其光學(xué)特性。為了評(píng)價(jià) C@Hb/HSA 的攜氧能力,本文測定了其在低氧水溶液中的氧釋放曲線,結(jié)果如圖 1(c)所示。C@Hb/HSA 在 20 min內(nèi)氧氣快速釋放,隨后進(jìn)入緩釋狀態(tài);在 60 min時(shí),溶氧濃度差達(dá) 3.3 mg/L,表明 C@Hb/HSA能夠?qū)崿F(xiàn)長期持續(xù)的供氧。

      圖1 C@Hb/HSA 納米顆粒的表征Fig. 1 The characterization of C@Hb/HSA nanoparticles

      3.2 C@Hb/HSA 納米顆粒的體外 PDT 效果評(píng)價(jià)

      活性氧作為 PDT 中直接殺傷腫瘤細(xì)胞的關(guān)鍵物質(zhì),其產(chǎn)生水平與 PDT 效果直接相關(guān)。因此,本文以 DCFH-DA 分子作為活性氧的檢測探針,流式定量分析各組細(xì)胞的活性氧產(chǎn)生水平(DCFH-DA 被活性氧分子氧化成具有熒光信號(hào)的DCF(二氯熒光素))。如圖 2 所示,C@Hb/HSA給藥的細(xì)胞(C@Hb/HSA(+)組)經(jīng)激光照射后,其 DCF 的平均熒光強(qiáng)度分別為 Control(+)組(光照處理無藥物)、Ce6(+)組、C@Hb/HSA 組(無激光照射)的 2.9、2.8、3.2 倍。以上結(jié)果表明,在激光照射且較低的藥物濃度(1.0 μg/mL Ce6)下,Ce6 經(jīng)過雜交蛋白氧載體包載后,通過增氧能顯著增強(qiáng)其在 CT26.WT 細(xì)胞的活性氧產(chǎn)生水平。

      圖2 不同處理組的細(xì)胞內(nèi)活性氧產(chǎn)生水平Fig. 2 Intracellular reactive oxygen species generation of different treated groups

      C@Hb/HSA 在光照條件下對(duì) CT26.WT 細(xì)胞的殺傷效果采用 CCK-8 試劑盒進(jìn)行測定。由圖 3(a)可知,當(dāng) Ce6 濃度為 1.0 μg/mL 時(shí),C@Hb/HSA(+)組的細(xì)胞存活率僅為(17.8±5.5)%,而 Ce6(+)組則高達(dá)(82.6±3.0)%。然而,當(dāng)沒有激光照射、C@Hb/HSA 在 Ce6 濃度小于 1.0 g/mL時(shí),對(duì) CT26.WT 細(xì)胞的存活率沒有影響(圖3(b))。以上結(jié)果表明,在較低的藥物濃度(Ce6為 1.0 μg/mL)下,自供氧 C@Hb/HSA 在體外水平能顯著增強(qiáng) PDT 效果,且在沒激光照射時(shí)表現(xiàn)出優(yōu)良的生物相容性。

      3.3 免疫原性細(xì)胞死亡標(biāo)志分子——鈣網(wǎng)蛋白的暴露

      圖3 C@Hb/HSA 對(duì) CT26.WT 細(xì)胞的 PDT 效果與生物相容性評(píng)價(jià)Fig. 3 PDT eff i cacy and biocompatibility evaluation of C@Hb/HSA in CT26.WT cells

      鈣網(wǎng)蛋白(Calreticulin,CRT)作為免疫原性細(xì)胞死亡的一種關(guān)鍵生物標(biāo)志分子。在腫瘤細(xì)胞發(fā)生免疫原性細(xì)胞死亡時(shí),鈣網(wǎng)蛋白會(huì)外翻暴露于細(xì)胞的表面,產(chǎn)生“吃我”的信號(hào),刺激抗原遞呈細(xì)胞對(duì)腫瘤細(xì)胞的識(shí)別與吞噬[16]。因此,為了探討 C@Hb/HSA 介導(dǎo) PDT 的免疫原性細(xì)胞死亡誘導(dǎo)效果,CT26.WT 細(xì)胞與C@Hb/HSA 孵育加以激光照射后,采用流式細(xì)胞儀分析鈣網(wǎng)蛋白陽性細(xì)胞比例。圖 4(a)、(b)顯示,CT26.WT 細(xì)胞在經(jīng)過 C@Hb/HSA加激光處理(C@Hb/HSA(+)組)后,其鈣網(wǎng)蛋白陽性細(xì)胞的比例高達(dá)(72.0±15.4)%,分別為Ce6(+)組、Control(+)組、C@Hb/HSA 組(無激光照射)的 20.0、22.5、21.8 倍。以上結(jié)果表明,C@Hb/HSA 介導(dǎo)的 PDT 能顯著促進(jìn)鈣網(wǎng)蛋白的細(xì)胞表面暴露,增強(qiáng) CT26.WT 細(xì)胞的免疫原性。

      3.4 樹突狀細(xì)胞的體外成熟誘導(dǎo)

      樹突狀細(xì)胞作為一種重要的抗原遞呈細(xì)胞,其成熟是腫瘤細(xì)胞發(fā)生免疫原性細(xì)胞死亡,誘導(dǎo)抗腫瘤免疫效應(yīng)的關(guān)鍵[17]。CT26.WT 細(xì)胞與C@Hb/HSA 孵育并加以激光照射后,與未成熟的樹突狀細(xì)胞共培養(yǎng),隨后通過流式細(xì)胞儀分析樹突狀細(xì)胞表面的 MHC II、CD86 的表達(dá)來反映樹突狀細(xì)胞的成熟情況。如圖 5(a)、(b)所示,C@Hb/HSA 加激光處理的 CT26.WT 細(xì)胞(C@Hb/HSA(+)組)能夠誘導(dǎo)(42.5±5.1)% 的樹突狀細(xì)胞成熟,明顯高于 Ce6(+)組的(22.5±0.7)%、Control(+)組的(20.1±0.4)% 以及 C@Hb/HSA組(無激光照射)的(19.1±3.1)%。以上結(jié)果表明,C@Hb/HSA 介導(dǎo)的 PDT 所誘導(dǎo)的 CT26.WT細(xì)胞死亡,表現(xiàn)出較強(qiáng)的免疫原性,能夠在體外水平促進(jìn)樹突狀細(xì)胞成熟。

      4 討 論

      圖4 CT26.WT 細(xì)胞經(jīng)過不同處理后的鈣網(wǎng)蛋白暴露評(píng)估Fig. 4 The assessment of calreticulin (CRT) exposure on CT26.WT cells after various treatments

      近年來,Hb 類氧載體展現(xiàn)出增強(qiáng)腫瘤 PDT療效的潛能。Wang 等[7]利用聚合物膠束偶聯(lián)的 Hb 氧載體包裹光敏劑 ZnPc 后在細(xì)胞水平上表現(xiàn)出較強(qiáng)的光毒性。隨后,本文作者課題組采用聚合物(PLGA)包載光敏劑 ICG-Hb 復(fù)合物,并覆蓋磷脂層,構(gòu)建了具備穩(wěn)定供氧功能的“納米人工紅細(xì)胞”,并在動(dòng)物水平上證明其能有效增強(qiáng)腫瘤 PDT 療效[18]。然而,磷脂、聚合物作為外源物質(zhì)且不具主動(dòng)靶向性,因而聚合物偶聯(lián)或包載的納米顆粒容易被機(jī)體的肝、腎等組織清除而降低納米顆粒的腫瘤富集效率,最終影響了治療效果[19]。本研究構(gòu)建了包載光敏劑 Ce6 的雜交蛋白氧載體(C@Hb/HSA)。細(xì)胞實(shí)驗(yàn)表明,Ce6 經(jīng)過雜交蛋白氧載體包載后,其體外 PDT 效果因?yàn)樵鲅醯玫搅孙@著的提升,展現(xiàn)了雜交蛋白氧載體的優(yōu)良供氧性能。此外,基于HSA 良好的載藥能力、生物相容性以及主動(dòng)靶向性[8,20],雜交蛋白氧載體可能具有實(shí)現(xiàn)藥物和氧氣腫瘤靶向遞送的潛力,這有待進(jìn)一步研究。

      研究發(fā)現(xiàn),PDT 不僅能通過活性氧直接殺傷腫瘤細(xì)胞、損傷腫瘤血管的方式消除腫瘤,而且能通過觸發(fā)免疫反應(yīng)和炎癥達(dá)到二次殺傷效果[21],但其抗腫瘤免疫的詳細(xì)機(jī)制仍沒有完全了解。免疫原性細(xì)胞死亡概念的提出,解釋了許多癌癥療法所產(chǎn)生的抗腫瘤免疫效應(yīng),可為腫瘤治療提供新的依據(jù)和方向[22]。研究表明,在免疫原性細(xì)胞死亡過程中,活性氧能以刺激腫瘤細(xì)胞產(chǎn)生內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激而暴露鈣網(wǎng)蛋白的方式增加腫瘤細(xì)胞的免疫原性,引發(fā)抗腫瘤免疫響應(yīng)[16,23]。本研究發(fā)現(xiàn),CT26.WT 細(xì)胞經(jīng)過 C@Hb/HSA 介導(dǎo)的 PDT 處理后,細(xì)胞內(nèi)的活性氧水平顯著上升,并且與后續(xù)的細(xì)胞表面鈣網(wǎng)蛋白的暴露趨勢一致。隨后的樹突狀細(xì)胞體外成熟實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步證明了 C@Hb/HSA 介導(dǎo)的 PDT 能增強(qiáng) CT26.WT細(xì)胞的免疫原性。這表明 C@Hb/HSA 介導(dǎo)的PDT 不僅能直接增強(qiáng)腫瘤細(xì)胞的殺傷,而且可能以觸發(fā)特異性抗腫瘤免疫應(yīng)答的方式進(jìn)一步殺傷腫瘤,抑制轉(zhuǎn)移和復(fù)發(fā),后續(xù)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)將進(jìn)一步評(píng)價(jià)。

      5 結(jié) 論

      本研究以 HSA、Hb 為材料,通過二硫鍵偶聯(lián)的方法,成功構(gòu)建了具備包載光敏劑和良好供氧能力的雜交蛋白氧載體(C@Hb/HSA)。雜交蛋白氧載體能顯著提升 Ce6 分子在細(xì)胞內(nèi)的活性氧產(chǎn)生水平,并且在較低的藥物濃度(Ce6為 1.0 μg/mL 時(shí))下能夠有效殺傷 CT26.WT 細(xì)胞。通過細(xì)胞表面鈣網(wǎng)蛋白的暴露實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),C@Hb/HSA 在增強(qiáng) PDT 效果的同時(shí)也能顯著增強(qiáng)細(xì)胞表面鈣網(wǎng)蛋白的暴露,鈣網(wǎng)蛋白陽性細(xì)胞比例高達(dá) (72.0±15.4)%。同時(shí),CT26.WT 細(xì)胞經(jīng) C@Hb/HSA 介導(dǎo)的 PDT 處理后,能夠在體外水平促進(jìn)樹突狀細(xì)胞成熟,證明 C@Hb/HSA 介導(dǎo)的 PDT 能夠增強(qiáng) CT26.WT 細(xì)胞的免疫原性。

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