蘇興奮 王漢東 林元相 陳伏祥
腦出血引起的繼發(fā)性腦損傷的損傷機(jī)制是多樣的,如紅細(xì)胞及降解產(chǎn)物毒性、谷氨酸興奮性毒性、氧化損傷、炎癥及細(xì)胞死亡通路激活等[1]。腦出血后數(shù)周內(nèi)血紅蛋白在腦實(shí)質(zhì)內(nèi)被氧化、降解,降解產(chǎn)生的毒性產(chǎn)物如氯化血紅素(hemin)和鐵離子可持續(xù)加重腦損傷。血液中大概有2.5 mmol/L的血紅蛋白,在腦組織中降解后可產(chǎn)生約10 mmol/L的hemin[2]。Hemin是親脂性氧化劑,以很高的濃度積聚在血腫內(nèi)損傷神經(jīng)細(xì)胞。已有研究證實(shí),3~30 μmol/L的hemin在4~14 h內(nèi)可以有效殺死60%~70%的神經(jīng)元和星形膠質(zhì)細(xì)胞[3,4]。腦出血后在血腫內(nèi)及血腫周?chē)霈F(xiàn)大量的凋亡細(xì)胞和壞死細(xì)胞。細(xì)胞凋亡是機(jī)體在發(fā)育或病理過(guò)程中細(xì)胞主動(dòng)的,由基因控制的細(xì)胞程序性死亡方式。細(xì)胞凋亡的主要特征有細(xì)胞皺縮、染色質(zhì)凝集、細(xì)胞出芽、DNA片段化及凋亡小體的產(chǎn)生。在凋亡的過(guò)程中,細(xì)胞膜保持完整,不會(huì)引起炎癥反應(yīng)。已有大量的報(bào)道研究細(xì)胞凋亡在腦出血中的作用,而對(duì)于細(xì)胞壞死卻鮮有研究[1,12]。其原因可能是既往認(rèn)為細(xì)胞壞死是一種意外的、不可逆的非程序性細(xì)胞死亡。然而,隨著對(duì)細(xì)胞死亡機(jī)制的不斷深入研究表明細(xì)胞壞死并不全是被動(dòng)的、不受調(diào)控的,近期一些研究揭示一些細(xì)胞壞死可以是主動(dòng)的,受到特定基因及信號(hào)分子的調(diào)控,這類細(xì)胞壞死稱為“necroptosis”或“程序性壞死”[5]。 程序性壞死細(xì)胞具有壞死樣的形態(tài)特征,細(xì)胞膜破壞,細(xì)胞及細(xì)胞器腫脹,線粒體膜電位缺失,引起局部炎癥反應(yīng)等特征。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)這個(gè)過(guò)程受RIP1和RIP3調(diào)控,并可被RIP1特異抑制劑Necrostatin-1(Nec-1)抑制[5]。已有研究證實(shí)程序性壞死在谷氨酸、NMDA誘導(dǎo)的神經(jīng)損傷中發(fā)揮作用[6,7]。但程序性壞死在hemin誘導(dǎo)的細(xì)胞損傷中的作用尚不明確。本研究利用藥物研究Nec-1在hemin誘導(dǎo)的HT-22細(xì)胞死亡中潛在的神經(jīng)保護(hù)作用和基因干預(yù)手段,明確RIP3在hemin誘導(dǎo)的HT-22細(xì)胞死亡中的作用。
小鼠海馬神經(jīng)元細(xì)胞株HT-22購(gòu)自ATCC(美國(guó))。zVAD 購(gòu)自 BD bioscience(美國(guó))。Necrostatin-1、二甲亞砜(dimethyl sulfoxide,DMSO)、 hemin、叔丁基茴香醚(butylated hydroxyanisole,BHA)、Hoechst、碘化丙啶(propidium iodide,PI)購(gòu)自 Sigma(美國(guó))。青霉素/鏈霉素雙抗、MitoSox Red、DMEM、Optimem I培養(yǎng)液和胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)購(gòu)自Invitrogen(美國(guó))。Cell titer glo試劑盒購(gòu)自Promega(美國(guó))。NegativesiRNA使用siCONTROLnon-targeting siRNA,RIP3 siRNA 使 用 RIP3 ON-TARGET plus SMART pool siRNA,均購(gòu)自Dharmacon(美國(guó))。 細(xì)胞轉(zhuǎn)染試劑Lipofectamine 2000購(gòu)自Invitrogen(美國(guó))。 小鼠 RIP3抗體 (Proscience, 美國(guó)),β-actin(Sigma-Aldrich,美國(guó))用于Western蛋白印跡實(shí)驗(yàn)。
將HT-22細(xì)胞接種培養(yǎng)于含10%FBS(Invitrogen,美國(guó))的DMEM培養(yǎng)基中,并置于37℃含5%CO2的細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。在實(shí)驗(yàn)前使用0.25%胰酶消化分離HT-22細(xì)胞,培養(yǎng)基更換為2%FBS的DMEM,計(jì)數(shù)后細(xì)胞以3000個(gè)/孔接種于96孔板中。過(guò)夜后進(jìn)行實(shí)驗(yàn)分組(每組3個(gè)孔)及藥物處理。首先,將HT-22細(xì)胞分為4組(每組3個(gè)孔),分別加入 0、25、50、100 μmol/L 的 hemin 處理 24 h,然后使用PI/Hoechst染色,統(tǒng)計(jì)各組細(xì)胞中PI陽(yáng)性細(xì)胞的比例及細(xì)胞存活率。而后分別用DMSO、zVAD(20μmol/L)、Nec-1(30 μmol/L)、hemin(50 μmol/L)、hemin+zVAD、hemin+zVAD+Nec-1、hemin+Nec-1 和 hemin+BHA(100 μmol/L)處理 HT-22 細(xì)胞 24 h 后加 PI/Hoechst染色并統(tǒng)計(jì)PI+細(xì)胞比例,同時(shí)測(cè)定細(xì)胞存活率。
Cell titer glo試劑盒是通過(guò)檢測(cè)細(xì)胞三磷酸腺苷(adenosine triphosphate,ATP)水平來(lái)定量細(xì)胞存活率。根據(jù)試驗(yàn)試劑盒的使用說(shuō)明書(shū),在96孔板中培養(yǎng)的各實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞進(jìn)行相應(yīng)處理24 h后,每個(gè)需要檢測(cè)的孔內(nèi)加入30 μL的cell titer glo試劑,在培養(yǎng)箱內(nèi)孵育10 min,然后靜置10 min并在Wallac VictorⅡ讀板器上檢測(cè)化學(xué)發(fā)光值。
實(shí)驗(yàn)組中加入PI和Hoechst,其終濃度為2 μg/mL,在培養(yǎng)箱內(nèi)避光孵育10 min,然后在熒光顯微鏡下每個(gè)孔分別隨機(jī)拍攝3張200倍視野的PI和Hoechst照片,使用Image J軟件進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù)。 PI+(%)=PI+/Hoechst+。
MitoSox Red是活性氧(reactive oxy gen species,ROS)敏感的指示劑,使用MitoSox Red檢測(cè)線粒體ROS水平。在DMSO、hemin和hemin+Nec-1組細(xì)胞中分別加入MitoSox Red及Hoechst,然后在培養(yǎng)箱內(nèi)避光孵育10 min,然后用磷酸鹽緩沖液(phosphate buffer saline,PBS)洗滌3次,在熒光顯微鏡下觀察并拍照。
細(xì)胞按每孔2×105個(gè)接種于6孔板過(guò)夜。將Negative和RIP3 siRNA和Lipofectamine 2000分別稀釋到等體積OptimemⅠ培養(yǎng)基中并在室溫放置平衡10 min,然后將兩者混合并輕輕混勻,在室溫放置20 min,然后將混合液加入到六孔板細(xì)胞培養(yǎng)基中,siRNA終濃度為 60 nmol/L,Lipofectamine為2 μL/mL。細(xì)胞置于培養(yǎng)箱中轉(zhuǎn)染4 h后,加入新鮮的常規(guī)培養(yǎng)基。細(xì)胞轉(zhuǎn)染48 h后將細(xì)胞消化下來(lái),以3000個(gè)/孔接種于96孔板過(guò)夜后進(jìn)行藥物處理,分為不加 hemin刺激的對(duì)照 Control組及 50 μmol/L hemin刺激組,其余細(xì)胞培養(yǎng)至72 h后收集進(jìn)行Western blot分析。
將細(xì)胞從6孔板刮下,離心機(jī)1500 r/min、4℃離心5 min,用冷PBS洗滌1次,再次離心后加入500 μL預(yù)冷的細(xì)胞裂解緩沖液,冰上用超聲細(xì)胞破碎儀超聲破碎5 s,然后置于離心機(jī)13 000 r/min、4℃離心15 min,取上清為細(xì)胞裂解液,并進(jìn)行蛋白定量,然后進(jìn)行Western蛋白印跡分析。取50 μg蛋白加入相應(yīng)的5×上樣緩沖液,混勻后于100℃水浴變性5 min,離心后取蛋白于10%SDS聚丙烯酰胺凝膠電泳進(jìn)行分離,然后將凝膠上的蛋白質(zhì)電轉(zhuǎn)至醋酸纖維素膜。將膜置于TBST配置的含5%脫脂奶粉封閉液中,室溫?fù)u晃封閉2 h,洗滌后加入按相應(yīng)比例稀釋的一抗(RIP3 1∶1000,β-actin 1∶2000),4℃包被過(guò)夜。用TBST洗滌3次,每次10 min。然后加入辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的與一抗對(duì)應(yīng)的二抗搖晃孵育1 h,用TBST洗3次,每次10 min。隨后加入增強(qiáng)化學(xué)發(fā)光溶液,于暗室中用X光膠片自顯影。膠片經(jīng)顯影、定影、晾干、掃描,獲得目標(biāo)蛋白條帶,分析實(shí)驗(yàn)結(jié)果。用Image J軟件進(jìn)一步分析條帶密度。
采用SPSS19.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,使用方差分析及Tukey進(jìn)行多重比較。所有實(shí)驗(yàn)至少重復(fù)3次,數(shù)據(jù)表達(dá)為均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s),使用 GraphPad Prism5軟件進(jìn)行作圖。P<0.05為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
圖1A和B所示,隨著hemin濃度的增加,PI+細(xì)胞比例也梯度增加,當(dāng)hemin濃度為50 μmol/L時(shí)其PI陽(yáng)性細(xì)胞比例為52.4%±6.0%。進(jìn)一步使用Cell titer glo測(cè)定各組細(xì)胞ATP含量即細(xì)胞存活率。圖1C所示,隨著hemin濃度增加,HT-22細(xì)胞存活率梯度下降,50 μmol/L hemin處理使得HT-22的存活率下降到47.2%±2.8%。
圖2所示,與DMSO組相比,hemin處理后PI+(46.0%±5.0%)顯著升高,細(xì)胞存活率(44.6%±12.7%)也顯著減低;與hemin組相比,Nec-1處理后明顯減少 PI+細(xì)胞(18.5%±14.0%),細(xì)胞存活率(76.7%±14.3%)顯著增加,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。另外,與hemin組比較,hemin+zVAD并不能減低 PI+細(xì)胞(46.6%±2.3%)或提高細(xì)胞存活率(41.1%±9.9%);而與 hemin+Nec-1組相比,hemin+zVAD+Nec-1也沒(méi)有進(jìn)一步減少 PI+(16.7%±5.7%)或增加細(xì)胞存活(71.1%±14.8%),差異均無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。
圖3所示,HT-22細(xì)胞經(jīng)hemin刺激后細(xì)胞內(nèi)的ROS水平明顯升高,而Nec-1處理明顯減少了細(xì)胞內(nèi)ROS水平。進(jìn)一步使用BHA處理細(xì)胞,結(jié)果顯示BHA能顯著減輕hemin誘導(dǎo)的細(xì)胞壞死(圖4)。
使用siRNA敲低細(xì)胞中RIP3蛋白的表達(dá),使用Western blot技術(shù)在轉(zhuǎn)染72 h后檢測(cè)細(xì)胞內(nèi)RIP3蛋白水平,結(jié)果顯示RIP3蛋白明顯下調(diào)(圖5A)。各組分別給予相應(yīng)刺激24 h,行PI和Hoechst染色,如圖5B所示,RIP3敲低組PI+細(xì)胞明顯減少。進(jìn)一步統(tǒng)計(jì)各組細(xì)胞PI+率及細(xì)胞存活率,結(jié)果顯示與Negative siRNA+hemin組比較,RIP3被敲低以后PI+細(xì)胞數(shù)也明顯減少(圖5C),細(xì)胞存活率明顯升高(圖 5D),差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。
腦出血后血液成分被釋放到腦實(shí)質(zhì)中,紅細(xì)胞降解為血紅蛋白,隨后血紅蛋白降解為hemin[12]。Hemin是親脂性氧化劑,以高達(dá)毫摩爾濃度水平積聚在血腫內(nèi),能夠損傷多種神經(jīng)細(xì)胞,例如神經(jīng)元和星型膠質(zhì)細(xì)胞[4,12]。本研究首次顯示hemin以濃度依賴的方式誘導(dǎo)HT-22的細(xì)胞死亡,并且大多數(shù)死亡細(xì)胞為PI+的壞死細(xì)胞。筆者選擇濃度為50 μmol/L的hemin進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。
圖1 氯化血紅素劑量依賴性的誘導(dǎo)HT-22細(xì)胞死亡
圖2 Nec-1和zVAD對(duì)氯化血紅素誘導(dǎo)的HT-22細(xì)胞死亡的影響
圖3 Nec-1對(duì)氯化血紅素誘導(dǎo)HT-22細(xì)胞產(chǎn)生的活性氧的影響
圖4 活性氧清除劑叔丁基羥基茴香醚對(duì)氯化血紅素誘導(dǎo)HT-22細(xì)胞死亡的影響
程序性壞死在多種疾病中發(fā)揮作用,包括腦缺血、腦外傷、腦出血等[14-16]。程序性壞死是受調(diào)控的細(xì)胞壞死,具有壞死細(xì)胞的形態(tài)特征,其受特定的通路調(diào)控,包括RIP1和RIP3[5,13]。RIP1是程序性壞死的促發(fā)蛋白。Nec-1是RIP1的特異性抑制劑,特異性的抑制RIP1的活性[17]。既往的研究顯示Nec-1可抑制谷氨酸誘導(dǎo)的HT-22細(xì)胞死亡[6]。同時(shí)有研究證明Nec-1可抑制hemin誘導(dǎo)的星形膠質(zhì)細(xì)胞死亡[4]。新近文獻(xiàn)報(bào)道在hemin誘導(dǎo)的神經(jīng)元死亡中RIP1 mRNA和蛋白表達(dá)增加,Nec-1處理可抑制RIP1的表達(dá)和減輕細(xì)胞死亡,另外在小鼠腦出血模型中在抑制RIP1的活性可減輕細(xì)胞死亡和改善功能預(yù)后[19,20]。因此,筆者推測(cè)RIP1可能在hemin誘導(dǎo)的HT-22細(xì)胞死亡中起作用。本文首先研究Nec-1是否能抑制hemin誘導(dǎo)的HT-22細(xì)胞死亡,結(jié)果顯示hemin誘導(dǎo)的HT-22細(xì)胞死亡可被Nec-1抑制,卻不能被凋亡抑制劑z-VAD所抑制,表明hemin誘導(dǎo)的HT-22細(xì)胞死亡可能主要是通過(guò)RIP1激酶的作用。
研究證明ROS在程序性壞死的執(zhí)行中起關(guān)鍵作用[8,13]。在本文的hemin誘導(dǎo)HT-22神經(jīng)細(xì)胞損傷模型中,當(dāng)給予hemin處理后HT-22細(xì)胞中的ROS水平顯著增高,并可以被Nec-1抑制。而hemin引起的HT-22細(xì)胞死亡可進(jìn)一步被ROS清除劑BHA所抑制。Nec-1并非ROS清除劑,卻可以抑制ROS。這些結(jié)果證明ROS積聚是hemin誘導(dǎo)的HT-22細(xì)胞死亡的一個(gè)重要因素。RIP3的調(diào)控是TNF誘導(dǎo)細(xì)胞壞死的ROS的另一個(gè)重要來(lái)源[8]。RIP3和多種參與谷氨酰胺代謝和糖原分解相關(guān)的代謝酶相互作用,最終過(guò)度激活線粒體呼吸鏈,能量耗竭,并產(chǎn)生大量細(xì)胞毒性的ROS[8]。在程序性壞死中ROS的釋放極為劇烈,是細(xì)胞凋亡的幾倍甚至數(shù)十倍。大量產(chǎn)生的ROS導(dǎo)致脂質(zhì)過(guò)氧化、溶酶體膜通透化等,并直接損傷破壞線粒體膜、溶酶體膜及細(xì)胞膜,細(xì)胞器和細(xì)胞水腫、崩解,呈現(xiàn)細(xì)胞壞死的形態(tài)學(xué)特征,導(dǎo)致細(xì)胞壞死[5]。但HT-22細(xì)胞是如何通過(guò)ROS來(lái)執(zhí)行hemin誘導(dǎo)的程序性壞死還需要進(jìn)一步研究。
圖5 敲低受體相互作用蛋白激酶3水平抑制氯化血紅素誘導(dǎo)HT-22細(xì)胞死亡
RIP3是調(diào)控細(xì)胞壞死的另一特異性蛋白分子[9-11]。在壞死信號(hào)刺激下,RIP3被募集到RIP1上形成穩(wěn)定的RIP1-RIP3復(fù)合物,激活RIP3下游信號(hào)通路,進(jìn)而啟動(dòng)程序性壞死[9-13]。因此,本研究進(jìn)一步通過(guò)基因干預(yù)手段研究RIP3是否在hemin誘導(dǎo)的HT-22細(xì)胞死亡中也發(fā)揮作用。結(jié)果顯示在hemin誘導(dǎo)的HT-22死亡模型中通過(guò)siNRA敲低RIP3后壞死細(xì)胞明顯減少,細(xì)胞存活率明顯升高。已有研究報(bào)道小鼠腦出血后RIP1、RIP3蛋白表達(dá)顯著升高,相互作用形成RIP1-RIP3復(fù)合體,RIP1激酶特異性抑制劑Nec-1抑制RIP1與RIP3的相互作用,進(jìn)而減輕腦血腫周?chē)?xì)胞壞死,減輕腦水腫,改善神經(jīng)功能預(yù)后[16]。RIP3基因敲除可顯著地減少血腫內(nèi)和血腫周?chē)膲乃兰?xì)胞數(shù)量[18]。這些研究表明程序性壞死及其通路RIP1/RIP3在腦出血后的繼發(fā)腦損傷中起到重要的作用。
綜上所述,RIP1和RIP3可能是hemin誘導(dǎo)HT-22細(xì)胞死亡的重要干預(yù)靶點(diǎn),Nec-1可能是有效的治療手段,但其具體機(jī)制及療效有待于進(jìn)一步研究。
中華神經(jīng)創(chuàng)傷外科電子雜志2018年5期