韓新月 陳營(yíng)
尋找菌株S1發(fā)酵海帶時(shí)海藻酸鈉裂解酶活力較高的條件,將海藻酸鈉裂解酶提取并將其接入在不同條件的培養(yǎng)基中,選出能夠裂解海藻多糖和使海帶液化的最佳條件。
方法? 用酶活檢測(cè)的方法檢測(cè)出菌株S1在何時(shí)產(chǎn)生海藻酸鈉裂解酶活力最強(qiáng);在235nm下檢測(cè)海帶發(fā)酵液中海藻寡糖的含量。
結(jié)果 海帶分解75%時(shí)海藻酸鈉裂解酶活力為8.5,內(nèi)裝有氯化鈉、維氏鹽、氯化銨、30%海帶的三角瓶中且溫度為37℃在160rpm下一直搖動(dòng)海帶在三天內(nèi)液化85%。海帶分解75%時(shí)海藻酸鈉裂解酶活力較高,在此時(shí)提取的海藻酸鈉裂解酶接入內(nèi)裝有氯化鈉、維氏鹽、氯化銨、30%海帶的三角瓶中且溫度為37℃在160rpm下一直搖動(dòng)海帶液化速度最快且產(chǎn)生海藻寡糖的量最多。
隨著科技的進(jìn)步,研究發(fā)現(xiàn)海藻寡糖在食品、日用化工、化妝品、醫(yī)藥、軍工、農(nóng)業(yè)等領(lǐng)域具有重要意義。如海藻糖可以代替蔗糖用于食品領(lǐng)域,海藻糖與蔗糖相比甜味更為平和,使血糖升高的速度也更為緩慢,海藻寡糖也可以添加到海藻面膜等化妝品中具有良好的保濕效果,在軍工領(lǐng)域海藻寡糖可用于防輻射止血,是天然的好材料,在醫(yī)藥領(lǐng)域海藻寡糖可以用于保存生物制劑維持生物大分子的活性,還可以附著在細(xì)胞表面維持細(xì)胞的活性,在農(nóng)業(yè)領(lǐng)域海藻寡糖可以作為植物生長(zhǎng)的營(yíng)養(yǎng)液使植物具有獨(dú)特的生長(zhǎng)優(yōu)勢(shì)。獲得海藻寡糖方法主要有物理降解法、化學(xué)降解法以及生物降解法。物理法主要采取輻射的方式,操作復(fù)雜且降解條件難以控制;化學(xué)法目前采用,但存在目標(biāo)寡糖的產(chǎn)量少,副產(chǎn)物多及回收率低等問題;微生物發(fā)酵法條件溫和,成本低、操作簡(jiǎn)單,但菌種易污染,微生物利用有益產(chǎn)物導(dǎo)致產(chǎn)量降低。酶特異性降解法具有專一性強(qiáng)、寡糖得率高且條件溫和等優(yōu)點(diǎn),目前已報(bào)道的海藻寡糖裂解酶可以很快將海藻多糖裂解且得到大量海藻寡糖,因此提取海藻寡糖裂解酶及其作用條件有很大研究?jī)r(jià)值。本實(shí)驗(yàn)從海帶發(fā)酵液中通過酶活檢測(cè)找到S1菌何時(shí)產(chǎn)生海藻酸鈉裂解酶的酶活最強(qiáng),并通過微孔濾膜注射器分離出海藻酸鈉裂解酶,并將海藻酸鈉裂解酶應(yīng)用在不同條件的以海帶為底物的培養(yǎng)基中,挑選出最適合海藻酸鈉裂解酶作用的條件,目的是最大程度地提取和利用以寡糖為主的海帶有效成分。
一、材料與方法
1、 材料
(1)樣品? 采于山東煙臺(tái)長(zhǎng)島縣海帶養(yǎng)殖場(chǎng)的新鮮海帶。
(2)實(shí)驗(yàn)菌種
S1為得到一株能夠裂解海藻多糖的菌株,我們可以從腐爛的海藻如海帶中尋找,挑取腐爛的海藻在以海藻酸鈉為唯一碳源的選擇培養(yǎng)基中培養(yǎng)平板劃線分離,挑取單菌落接種至另一個(gè)相同的培養(yǎng)基中平板劃線,取單菌落接種至海帶富集培養(yǎng)基中,若其能使海帶液化,則證明其為所需要的菌株,然后對(duì)其進(jìn)行16SrRNA鑒定。
(3)培養(yǎng)基? 富集培養(yǎng)基(g/L):新鮮海帶塊(1 cm2以下)300 g,硫酸銨5 g,氯化鈉10 g,維氏鹽溶液50 mL,pH 6-7(維氏鹽溶液:K2HPO4·3H2O 6.50 g,MgSO4·7H2O 2.50 g,NaCl 2.50 g,F(xiàn)eSO4·7H2O 0.05 g,MnSO4·H2O 0.04 g,蒸餾水1000 mL)。
(3)實(shí)驗(yàn)方法
①海藻酸鈉裂解酶的制備方法
干海帶浸泡四個(gè)小時(shí)后將海帶切成細(xì)小的碎塊,放入500ml三角瓶中,每瓶加入30g海帶碎塊、100ml富集培養(yǎng)基,即海帶濃度為30%。高壓蒸汽滅菌(121℃,30min),取冰箱里保存的海帶發(fā)酵液按10%接種量接入富集培養(yǎng)基,設(shè)置兩組平行實(shí)驗(yàn)和一組空白實(shí)驗(yàn)。將接種后的富集培養(yǎng)基放入搖床(溫度:37℃、轉(zhuǎn)速:160rpm)搖瓶培養(yǎng)。與對(duì)照組對(duì)比,觀察海帶分解程度,并在海帶分解50%、75%、100%、100%放置一天、兩天時(shí),分別取發(fā)酵液經(jīng)5000rpm離心10min后,將上清液經(jīng)過微孔濾膜注射器過濾除菌后即可制成海藻酸鈉裂解酶粗酶提取液。
②海藻酸鈉裂解酶酶活性及海藻寡糖的含量的檢測(cè)方法
檢測(cè)海藻寡糖含量的具體方法:取4ml發(fā)酵液,在500r/min的離心速下,離心10-15min,然后取1ml上清液液適當(dāng)稀釋,在235nm處測(cè)量其光吸收值,以此值乘上稀釋倍數(shù)來代表1ml發(fā)酵液中海藻寡糖的含量。
檢測(cè)海藻酸鈉裂解酶活性的具體方法:取4ml發(fā)酵液,在500r/min的離心速下,離心10-15min,然后取1ml上清液液適當(dāng)稀釋,測(cè)量稀釋后上清液在235nm下OD值然后把稀釋的上清液在40℃水浴中加熱10min,再迅速煮沸15min使酶滅活,再次測(cè)量235nm下的OD值。規(guī)定:40℃水浴加熱10 min,吸光值增加0.1為一個(gè)酶活力單位U。測(cè)量前后兩次OD值的差值再乘以稀釋倍數(shù)最后除以0.1即為1ml發(fā)酵液或反應(yīng)液的酶活。公式表達(dá)為:1ml發(fā)酵液的酶活=[(OD值后-OD值前)·稀釋倍數(shù)]/0.1
③不同發(fā)酵產(chǎn)酶時(shí)間對(duì)酶解反應(yīng)的影響
將所制得的酶液按照10%接入量,接入內(nèi)裝有100ml富集培養(yǎng)基的500ml的三角瓶中。將接入酶液后的富集培養(yǎng)基放入搖床(溫度:37℃、轉(zhuǎn)速:160rpm)搖瓶培養(yǎng),進(jìn)行酶解反應(yīng)使海帶分解,每隔一天測(cè)量一次各組反應(yīng)液中的酶活及海藻寡糖的含量并且觀察海帶分解情況,一共培養(yǎng)四天。將海帶分解情況拍照記錄并記錄跟蹤檢測(cè)的數(shù)據(jù),最后選出海帶分解情況最好的一組,由此即可確定哪一海帶分解度時(shí)所制得的酶液為使海帶分解的最適酶液。
④體系不同成分對(duì)酶解反應(yīng)的影響
海藻酸鈉裂解酶粗酶提取液與海帶的酶解反應(yīng)過程中,培養(yǎng)基中的氯化銨、酵母浸膏、海藻酸鈉與細(xì)菌生長(zhǎng)有關(guān),氯化銨和酵母浸膏中的成分是否影響酶解反應(yīng)未知。海藻酸鈉裂解酶活性的發(fā)揮需要離子為已知。在含有離子(氯化鈉和維氏鹽)的幾組培養(yǎng)基中分別加入酵母膏、硫酸銨、酵母膏和硫酸銨并設(shè)置純水對(duì)照組,制取海帶發(fā)酵分解75%時(shí)的海藻酸鈉裂解酶粗酶提取液進(jìn)行實(shí)驗(yàn),搖瓶(溫度:37℃、轉(zhuǎn)速:160rpm)培養(yǎng)三天后觀察各組海帶分解情況并測(cè)量各組中的酶活和海藻寡糖含量。
⑤不同溫度與搖動(dòng)時(shí)間對(duì)酶解反應(yīng)的影響
將實(shí)驗(yàn)溫度設(shè)置為42℃,設(shè)置42℃靜置、42℃分段搖動(dòng)、42℃一直搖動(dòng)三個(gè)實(shí)驗(yàn)組。由于實(shí)驗(yàn)室條件所限,對(duì)照組選擇為1.2.3中的最優(yōu)組,酶解反應(yīng)體系成分均采用1.2.3中最優(yōu)組成分。培養(yǎng)三天后觀察海帶分解度及測(cè)定酶活性和海藻寡糖含量。比較數(shù)據(jù)得出結(jié)論找到工藝優(yōu)化的最適溫度和體系搖動(dòng)時(shí)間。
⑥不同海帶濃度對(duì)酶解反應(yīng)的影響
進(jìn)行實(shí)驗(yàn)來探究最佳海帶濃度。選擇已經(jīng)探索并得出結(jié)論的最優(yōu)實(shí)驗(yàn)條件,從起始30%海帶做起,到40%、50%、60%、70%,并設(shè)置平行組,最后只看分解效果和測(cè)量235nm的OD值。按海帶量的10%接入酶液。放置最優(yōu)條件下培養(yǎng)三天,觀察各組海帶分解程度。
二、結(jié)? 果
1、發(fā)酵產(chǎn)酶的最佳時(shí)間
將海帶達(dá)到各個(gè)分解度的發(fā)酵液過濾除菌制得無(wú)菌的海藻酸鈉裂解酶粗酶提取液,將海藻酸鈉裂解酶粗酶提取液按10%的接入量加入到滅菌后的海帶培養(yǎng)基中搖瓶培養(yǎng)4天,每隔一天檢測(cè)一次酶活及海藻寡糖的含量并觀察記錄分解情況。
2、 酶解反應(yīng)體系的最佳成分
酶解反應(yīng)體系中的最佳成分是離子(氯化鈉和維氏鹽)和氯化銨,它們的存在可以促進(jìn)海帶的分解,有利于酶解反應(yīng)。取各組的反應(yīng)液離心取上清液檢測(cè)反應(yīng)液中的酶活性及海藻寡糖的含量 ,如表2
3、酶解反應(yīng)的最適溫度與搖動(dòng)時(shí)
反應(yīng)體系成分:海帶、氯化鈉、維氏鹽、氯化銨、酶液
分段搖動(dòng)為每天定時(shí)搖動(dòng)2h
4、酶解反應(yīng)的最佳海帶濃度
最優(yōu)實(shí)驗(yàn)條件:溫度:37℃,160r/min,酶促體系成分為氯化鈉、維氏鹽、氯化銨,從起始30%海帶做起,到40%、50%、60%、70%,設(shè)兩個(gè)平行,最后只看分解效果和測(cè)量235nm的光吸收值,按海帶量的10%接入酶液。
三、討論
1、發(fā)酵工藝優(yōu)化分析? 在進(jìn)行傳統(tǒng)的發(fā)酵方法制備海藻寡糖時(shí),我們發(fā)現(xiàn)發(fā)酵液中海藻寡糖的含量是先上升后下降的,在海帶完全液化分解之時(shí),發(fā)酵液中海藻寡糖的含量并非最高。我們的研究目的有兩個(gè),一是盡快使海帶完全分解液化,二是使發(fā)酵液中海藻寡糖最高。但由于微生物在分解海藻酸產(chǎn)生海藻寡糖之時(shí)也會(huì)利用海藻寡糖,所以為了得到盡可能多的海藻寡糖,我們將傳統(tǒng)的發(fā)酵法工藝進(jìn)行優(yōu)化。優(yōu)化分為兩個(gè)階段,第一階段是海帶發(fā)酵階段,此階段的主要目的是制備酶活性最高的無(wú)菌海藻酸裂解酶粗酶提取酶液,第二階段的主要目的是利用所制得的酶液使海帶分解產(chǎn)生海藻寡糖。由于第二階段的反應(yīng)體系中沒有菌體細(xì)胞存在,因此只要酶的活性足夠,在底物充足的情況下便會(huì)一直積累產(chǎn)生海藻寡糖而無(wú)消耗,這樣便可達(dá)到工藝優(yōu)化提高產(chǎn)量的目的。
2、小結(jié)? 本次研究收獲的是已經(jīng)掌握了制備無(wú)菌酶液的方法即微孔濾膜除菌法,目前可以制得純凈的無(wú)菌酶液。找到了一種測(cè)量酶活及海藻寡糖含量的簡(jiǎn)便有效的方法,即以發(fā)酵液自身來測(cè)酶活,測(cè)定235nm下的OD值。探索出了海帶發(fā)酵分解至75%這一分解度時(shí)所制得的粗酶液能夠使固體海帶以最快的速度分解且分解效果徹底。探索出了工藝優(yōu)化的最佳條件。更為重要的是提高了海藻寡糖的產(chǎn)量,在相同條件下利用工藝優(yōu)化的方法生產(chǎn)海藻寡糖比傳統(tǒng)菌種發(fā)酵的方法產(chǎn)量提高了25%。
(作者單位:264005煙臺(tái)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院)