袁 倩,王 宇,蘇 琳,羅玉龍,蘇日娜,趙麗華,靳 燁*
(內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學食品科學與工程學院,內(nèi)蒙古 呼和浩特 010018)
蘇尼特羊肉具有蛋白質(zhì)和礦物質(zhì)等營養(yǎng)成分含量高、脂肪酸分布合理等諸多優(yōu)點[1]。傳統(tǒng)放牧蘇尼特羊因其肉質(zhì)鮮美備受關(guān)注,近些年由于草場環(huán)境惡化導致其肉質(zhì)下降。因此,尋找能夠改善肉品品質(zhì)的飼養(yǎng)方式和其他改善途徑迫在眉睫。我國綿羊飼養(yǎng)方式主要有舍飼飼養(yǎng)、放牧加舍飼育肥飼養(yǎng)、放牧飼養(yǎng)3 種方式。如果從羊肉的風味和蛋白質(zhì)、還原糖、礦物質(zhì)等營養(yǎng)成分含量來考慮,放牧飼養(yǎng)一般優(yōu)于舍飼飼養(yǎng)[2]。但是,過度放牧使草場條件變差,從而使育肥效果變差、出欄時間加長、羊肉產(chǎn)量減少,降低了經(jīng)濟效益[3]。而放牧結(jié)合舍飼飼養(yǎng)則可通過人工營養(yǎng)搭配,調(diào)控肌內(nèi)脂肪(intramuscular fat,IMF)含量。營養(yǎng)水平對IMF含量的影響最為明顯,營養(yǎng)水平高能增加肌內(nèi)脂肪沉積水平,適當含量的肌內(nèi)脂肪使肉的橫切面呈大理石狀,可以使肉柔軟多汁、口感細嫩,并且可以改善肉及肉制品的保水性、嫩度、風味和質(zhì)地[4]。吉帥等的研究表明,舍飼和半舍飼飼養(yǎng)可以降低羊肉膻味,其在改變羊肉感官品質(zhì)的同時可以產(chǎn)生較好的嫩度和脂肪香味[5]。還有研究表明在放牧飼養(yǎng)條件下,動物可以從牧草中攝入較多的維生素(VA、VC、VE等)和多不飽和脂肪酸,以及具有抗氧化活性的礦物質(zhì)等,從而影響肉品品質(zhì)[6]。Akin等在不同飼養(yǎng)方式對Damascus羊胴體品質(zhì)和肉品品質(zhì)影響的研究中指出,羊所食牧草和飼料中VE含量不同導致羊肉脂肪抗氧化性能不同,進而導致肉品品質(zhì)不同[7]。Priolo等的研究表明舍飼飼養(yǎng)羊肌肉更加柔軟多汁,其保水性更好[8]。
一磷酸腺苷激活蛋白激酶(AMP-activated protein kinase,AMPK)可以通過調(diào)節(jié)動物糖代謝、脂代謝和蛋白質(zhì)代謝等機體代謝影響肉品品質(zhì)[9-13]。目前為止,關(guān)于AMPK表達對肉品品質(zhì)影響的研究大多集中在糖代謝途徑中。馬曉冰研究了飼養(yǎng)方式對宰后蘇尼特羊肉AMPK、糖酵解及肉品品質(zhì)的影響,結(jié)果表明AMPK活化后能夠提高己糖激酶的活力,加速糖酵解進程,導致乳酸含量增加。乳酸含量是影響宰后肌肉pH值的重要因素,進而會影響羊肉品質(zhì)[14]。AMPK通過對脂肪代謝的調(diào)控來影響肉品品質(zhì),其主要是通過調(diào)控脂肪代謝相關(guān)基因和酶的表達影響肌內(nèi)脂肪沉積來實現(xiàn)的,目前對這方面的研究較少。飲食、運動、溫度等因素都可以激活AMPK,活化的AMPK抑制乙酰輔酶A羧化酶(acetyl-CoA carboxylase,ACC),導致丙二酸單酰輔酶A含量減少,減弱了對肉毒堿脂酰轉(zhuǎn)移酶1(carnitine palmitoyltransferase,CPT1)的抑制作用,促進脂肪酸進入線粒體進行氧化分解[13,15],從而使脂肪沉積減少、嫩度降低,進而影響肉品品質(zhì)。因此,本實驗就不同飼養(yǎng)方式對AMPK-ACC-CPT1信號通路的影響進行研究,進而研究AMPK在蛋白水平和基因水平對脂肪代謝的調(diào)節(jié)、IMF含量及肉品品質(zhì)的影響,旨在為通過調(diào)控AMPK活力改善肉品品質(zhì)提供理論依據(jù)。
12 月齡健康無病放牧和舍飼飼養(yǎng)蘇尼特羊各12 只,公母各半,由內(nèi)蒙古烏拉特中旗育種園區(qū)提供。
RNAiso Plus試劑、Premix Taq Version2.0(loading dye mix)預混液、PrimeScript RT reagent試劑盒、SYBR Premix Ex Taq II試劑盒、6×loading buffer、Marker DL2000 大連寶生物工程有限公司;RNase-free水北京天根生物技術(shù)有限責任公司;焦碳酸二乙酯(diethy pyrocarbonate,DEPC) 美國Intrivogen公司;核酸染料 北京百泰克生物技術(shù)有限公司;綿羊AMPK酶聯(lián)免疫吸附測定(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)試劑盒、綿羊ACC ELISA試劑盒、綿羊CPT1 ELISA試劑盒、綿羊p-AMPK ELISA試劑盒、綿羊p-ACC ELISA試劑盒 南京建成生物工程研究所有限公司;磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline,PBS) 北京eBio-top技術(shù)有限責任公司。
ZHJH-C1112C超凈工作臺 上海智城分析儀器制造有限公司;5430R低溫臺式冷凍離心機、移液槍 德國Eppendorf公司;BG-power5000型穩(wěn)壓穩(wěn)流電泳儀、水平電泳槽 北京百晶生物技術(shù)有限公司;凝膠成像系統(tǒng)、CFX96實時熒光定量聚合酶鏈式反應(polymerase chain reaction,PCR)儀 美國Bio-Rad公司;普通PCR儀 美國AB公司;H2500R-2高速冷凍離心機長沙湘儀離心機儀器有限公司;電子天平 北京賽多利斯儀器系統(tǒng)有限公司;pH-STAR型胴體直測式pH計德國MATTHAUS公司;制冰機 寧波格蘭特制冷設備制造有限公司;快速混勻儀 常州國華電器有限公司;C-LM3B型數(shù)顯式肌肉嫩度儀 東北農(nóng)業(yè)大學工程學院;TC-P2A全自動測色色差計 北京奧依克光電儀器有限公司。
1.3.1 樣品處理
選取12 月齡健康無病放牧和舍飼飼養(yǎng)蘇尼特羊各12 只,公母各半。放牧飼養(yǎng)組羊白天放牧,晚上不予補飼,牧草種類主要以烏拉特中旗荒漠化草原典型牧草(包括芨芨草、蒙古蔥、中間錦雞兒、沙生冰草、堿韭等10余種)為主。舍飼飼養(yǎng)組羊模擬內(nèi)蒙古限牧政策下的飼養(yǎng)模式,即前9 個月同放牧飼養(yǎng)組,后3 個月舍飼育肥。育肥階段食用農(nóng)區(qū)飼草料(玉米秸稈、葵盤粉、葵花籽皮等,同時補充玉米精料)。兩組實驗羊在共同放牧9 個月后平均體質(zhì)量大致相同。12 個月宰后選取股二頭肌,一部分進行肉品品質(zhì)測定,另一部分分割成小塊放入凍存管后投入液氮速凍,在-80 ℃冰箱保存,待測定酶活力和質(zhì)量濃度以及相關(guān)基因mRNA表達量時使用。
1.3.2 AMPK、ACC、CPT1的活力與質(zhì)量濃度的測定
酶的提取:在10 mL的離心管中加入2.7 mL冰凍的PBS,取冰凍的肌肉樣品0.3 g(冰凍肌肉在-80 ℃保存)。在3 000 r/min下冰浴勻漿,每個樣品勻漿2~3 次,每次1 min,然后將勻漿后的樣品在4 ℃、4 000 r/min下離心15 min,將上清液分裝入1.5 mL離心管待測定時使用。
酶活力和質(zhì)量濃度的測定(以AMPK為例):采用生物素雙抗體夾心ELISA法測定樣品中AMPK的質(zhì)量濃度。向預先包被了AMPK單克隆抗體的酶標孔中加入AMPK,溫育后加入生物素標記的抗AMPK抗體,再與鏈酶親和素-過氧化物酶結(jié)合,形成免疫復合物,經(jīng)過溫育和洗滌去除未結(jié)合的酶,然后加入試劑盒中底物A、B,產(chǎn)生藍色,并在酸的作用下最終轉(zhuǎn)化成黃色,其顏色深淺與樣品中AMPK的質(zhì)量濃度呈正相關(guān)。ACC、CPT1、p-AMPK、p-ACC質(zhì)量濃度的測定方法同上。
測定流程為:準備試劑、樣品和標準品→加入準備好的樣品和標準品,37 ℃反應90 min→洗板2 次,加入生物素抗體工作液,37 ℃反應60 min→洗板3 次,加入親和素-過氧化物酶復合工作液,37 ℃反應30 min→洗板5 次,加入TMB顯色工作液,37 ℃避光反應30 min→加入TMB終止液→30 min之內(nèi)讀取OD值→計算樣品和標準品待測因子質(zhì)量濃度。
1.3.3 實時熒光定量PCR測定
采用TRIzol法提取總RNA,采用瓊脂糖凝膠法和紫外-分光光度計檢測總RNA的完整性和質(zhì)量濃度。cDNA采用反轉(zhuǎn)錄試劑盒制備,置于-20 ℃保存待用。目的基因和管家基因的引物參照NCBI中提供的序列進行設計(表1)。實時熒光定量PCR程序為:95 ℃、30 s;95 ℃、5 s,57 ℃、30 s,72 ℃、30 s,共35 個循環(huán);72 ℃、10 min,4 ℃、24 h。按照SYBR Premix Ex Taq II試劑盒說明書中CFX96實時熒光定量PCR儀步驟操作。以AMPKα1、AMPKα2、ACC和CPT1作為實驗基因,18S RNA作為管家基因,分別做3 個平行。
表1 實時熒光定量PCR引物序列Table1 Primers used for relative quantif i cation by real time PCR
1.3.4 肉品品質(zhì)的測定
動物屠宰前禁食12 h、禁水2 h,屠宰后選擇股二頭肌進行肉品品質(zhì)測定。pH值利用pH-STAR型胴體直測式pH計測定。在宰后45 min時測定初始pH值,記作pH0,靜置排酸24 h時測定最終pH值,記作pH24[16]。將肉樣修整成3 cm×3 cm×1 cm的形狀,使用TC-P2A全自動測色色差儀測定肉品顏色[17],結(jié)果分別用亮度(L*)、紅度(a*)和黃度(b*)表示。將肉樣修整成2.5 cm×3 cm×5 cm大小的肉塊,密封后置于75 ℃水浴鍋中煮45 min,取出后待肉塊變涼,順著肌纖維方向?qū)⑷鈮K修成大小為3 cm×1 cm×1 cm的條狀,測定剪切力以表征其嫩度[18]。稱取肉樣30.0~50.0 g置于沸水中煮45 min,取出后置于室溫自然冷卻30~40 min,瀝干水分再次稱質(zhì)量,以煮后質(zhì)量與煮前質(zhì)量比值的百分數(shù)表示熟肉率。IMF含量的測定采用索氏抽提法[19]。
p-AMPK質(zhì)量濃度代表AMPK的磷酸化程度,p-AMPK質(zhì)量濃度/AMPK質(zhì)量濃度表示AMPK的活力,其值越大表示AMPK活力越高;相似地,p-ACC質(zhì)量濃度代表ACC的磷酸化程度,p-ACC質(zhì)量濃度/ACC質(zhì)量濃度代表ACC活力的倒數(shù),其值越大表示ACC活力越低[20]。
圖1 飼養(yǎng)方式對AMPK-ACC-CPT1通路相關(guān)酶質(zhì)量濃度(A)和酶活力(B)的影響Fig.1 Effects of feeding systems on enzyme concentrations (A) and activities (B) related to the AMPK-ACC-CPT1 pathway
由圖1可知,放牧飼養(yǎng)組股二頭肌的AMPK質(zhì)量濃度、AMPK活力和CPT1質(zhì)量濃度顯著高于舍飼飼養(yǎng)組,ACC活力顯著小于舍飼飼養(yǎng)組(P<0.05),而二者ACC質(zhì)量濃度差異不顯著(P>0.05)。Kido等的研究表明,運動使p-AMPKα蛋白表達與磷酸化水平和p-ACC蛋白表達水平顯著增加,表示運動在蛋白水平上可以顯著增加AMPK-ACC信號轉(zhuǎn)導通路的表達[21],這與本研究結(jié)果一致。Yook等[22]對小鼠的實驗和Granlund等[23]對豬的實驗均證明運動在蛋白水平上可以激活AMPK,增加AMPK蛋白表達量。由于放牧飼養(yǎng)羊的運動量遠多于舍飼飼養(yǎng)羊,所以放牧飼養(yǎng)條件下其股二頭肌的AMPK質(zhì)量濃度顯著高于舍飼飼養(yǎng)。除此之外,也有研究表明放牧飼養(yǎng)羊所食牧草中不飽和脂肪酸含量較舍飼飼養(yǎng)組高,不飽和脂肪酸也有激活AMPK、促進AMPK表達的作用[24-25]。AMPK的激活對ACC的表達有抑制作用,ACC被抑制后會釋放CPT1攜帶長鏈脂肪酸進入細胞膜,進而促進脂肪酸β氧化,從而減少脂肪沉積[26-27]。
2.2.1 總RNA提取結(jié)果
圖2 總RNA提取結(jié)果Fig.2 Electrophoresis of total RNA
由圖2可知,28S、18S處條帶清晰明亮,總RNA完整無降解。經(jīng)紫外分光光度計檢測其吸光度均在1.8~2.1之間,可知RNA純度高,可用于后續(xù)反轉(zhuǎn)錄實驗。
2.2.2 AMPK-ACC-CPT1通路相關(guān)基因mRNA表達量測定結(jié)果
表2 飼養(yǎng)方式對AMPK-ACC-CPT1通路相關(guān)基因mRNA表達量的影響Table2 Effects of feeding systems on mRNA expression of genes related to the AMPK-ACC-CPT1 pathway
由表2可知,放牧飼養(yǎng)組AMPKα2 mRNA表達量顯著大于舍飼飼養(yǎng)組(P<0.05),而ACC mRNA表達量顯著小于舍飼飼養(yǎng)組(P<0.05),AMPKα1、CPT1 mRNA表達量在兩種飼養(yǎng)方式間無顯著差異。張凱杰的研究表明,抗阻運動訓練可以增加AMPKα1和AMPKα2的mRNA表達量[28]。梁俊芳在基因敲除對小鼠骨骼肌代謝的研究中發(fā)現(xiàn),AMPKα2敲除后,AMPK活力顯著下降,AMPK-ACC通路受阻[20]。Hu Xiyi等在限制飲食對雞骨骼肌AMPK通路影響的研究中也發(fā)現(xiàn),限制飲食可以激活骨骼肌AMPK,進而激活AMPK-ACC通路,且在基因水平上對調(diào)控此通路起主要作用的是AMPKα2[29],與本研究結(jié)果一致。由此可見,在基因水平上對AMPK-ACC-CPT1通路起主要調(diào)控作用的是AMPKα2。
圖3 不同飼養(yǎng)方式對IMF含量的影響Fig.3 Effects of feeding systems on IMF content
由圖3可知,放牧飼養(yǎng)蘇尼特羊肉中的IMF含量顯著低于舍飼飼養(yǎng)組(P<0.05)。這可能是由于運動可以激活AMPK-ACC-CPT1通路,促進脂肪酸氧化,減少脂肪的合成。張潔等在對AMPK在機體骨骼肌運動代謝適應方面的研究中得出結(jié)論,運動可以激活AMPK[30]。AMPK-ACC-CPT1通路激活后,脂肪沉積減少。Niu Yanmei等在對改善小鼠骨骼肌胰島素抵抗的研究過程中也發(fā)現(xiàn),有氧運動可以激活AMPKα-ACC-CPT1信號通路[31]。黃進寶在對茶多酚對肉雞脂肪代謝的影響的研究中得出結(jié)論,AMPK-ACC-CPT1通路被激活后可以促進脂肪酸氧化,減少脂肪合成[32]。George等的研究表明舍飼飼養(yǎng)羊IMF含量顯著高于放牧飼養(yǎng)羊[33],與本研究結(jié)果一致。
表3 飼養(yǎng)方式對肉品品質(zhì)的影響Table3 Effects of feeding systems on meat quality
由表3可知,放牧飼養(yǎng)組羊股二頭肌pH24顯著低于舍飼飼養(yǎng)組(P<0.05)。對于色澤來說,股二頭肌的L*值和b*值均為放牧飼養(yǎng)組顯著高于舍飼飼養(yǎng)組(P<0.05)。肌肉亮度越低,肉表面反射的光越少,表明肉表面越干燥。Castellini[34]和張惠[35]等對草場散養(yǎng)肉雞肌肉品質(zhì)進行研究,發(fā)現(xiàn)由于散養(yǎng)組雞肉的持水力降低,肌肉中大量水分到達肌肉表面,使得肌肉的亮度顯著增加,這與本研究結(jié)果一致。本研究中放牧飼養(yǎng)組羊股二頭肌黃度顯著大于舍飼飼養(yǎng)組,此類的相關(guān)報道較少,其機理有待進一步研究。放牧飼養(yǎng)組羊股二頭肌剪切力顯著大于舍飼飼養(yǎng)組,表明放牧飼養(yǎng)組羊肉嫩度顯著小于舍飼飼養(yǎng)組(P<0.05),這可能是由于放牧可以在一定程度上激活AMPK,同時激活AMPK-ACC-CPT1通路,促進脂肪酸氧化,抑制脂肪沉積,使得放牧飼養(yǎng)組羊肉IMF含量顯著低于舍飼飼養(yǎng)組,由于IMF含量與嫩度呈正相關(guān)[19],最終使放牧飼養(yǎng)羊肉嫩度顯著低于舍飼飼養(yǎng)。
不同飼養(yǎng)方式對AMPK表達具有影響,放牧飼養(yǎng)較舍飼飼養(yǎng)可以促進AMPK表達,激活AMPK-ACC-CPT1通路,減少蘇尼特羊肉脂肪沉積,進而影響其色澤、嫩度等諸多肉品品質(zhì)指標。在當前草場載畜力不足的情況下,研究既能改善肉品品質(zhì)又能滿足草場可持續(xù)發(fā)展要求的新型限牧養(yǎng)殖模式具有重大意義。與此同時,通過調(diào)控AMPK的活力改變肌內(nèi)脂肪沉積水平,進而改善不同飼養(yǎng)方式下的肉品品質(zhì),為未來養(yǎng)殖提供了新思路。
放牧飼養(yǎng)組羊股二頭肌AMPK質(zhì)量濃度、AMPK活力和CPT1質(zhì)量濃度顯著高于舍飼飼養(yǎng)組,ACC活力顯著小于舍飼飼養(yǎng)組(P<0.05),說明放牧飼養(yǎng)可以在蛋白水平上激活AMPK-ACC-CPT1通路。放牧飼養(yǎng)組羊AMPKα2 mRNA表達量顯著高于舍飼飼養(yǎng)組(P<0.05),ACC mRNA表達量顯著低于舍飼飼養(yǎng)組(P<0.05),說明在基因表達水平上對AMPK-ACC-CPT1通路起主要調(diào)控作用的是AMPKα2亞基。放牧飼養(yǎng)蘇尼特羊肉中的IMF含量顯著低于舍飼飼養(yǎng)組(P<0.05),說明運動可以激活AMPK-ACC-CPT1通路,促進脂肪酸氧化,減少脂肪的合成。放牧飼養(yǎng)組羊股二頭肌剪切力顯著大于舍飼飼養(yǎng)組(P<0.05),表明放牧飼養(yǎng)組羊肉嫩度小于舍飼飼養(yǎng)組,說明放牧飼養(yǎng)可以一定程度上激活AMPK,同時激活AMPK-ACC-CPT1通路,促進脂肪酸氧化,抑制脂肪沉積,進而使得放牧飼養(yǎng)組羊肉IMF含量顯著低于舍飼飼養(yǎng)組,最終使其嫩度顯著低于舍飼飼養(yǎng)組,影響肉品品質(zhì)。