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      X射線致人骨髓間充質(zhì)干細胞放射損傷細胞模型的建立

      2019-03-01 06:36:40孔祥波鐘婉珍房思煉
      關(guān)鍵詞:成骨X射線克隆

      孔祥波,尹 萍,任 婕,鐘婉珍,劉 仰,李 潔,房思煉

      (1.中山大學孫逸仙紀念醫(yī)院口腔科,廣東廣州510120;2.中山大學附屬第六醫(yī)院口腔頜面外科,廣東廣州510655)

      放射性頜骨壞死(osteoradionecrosis of the jaws,ORNJ)是頭頸頜面部腫瘤放射治療后所導致的嚴重并發(fā)癥,發(fā)病率約為5%~15%[1-2]。ORNJ的發(fā)生和發(fā)展相對緩慢,往往在放療后數(shù)年乃至10余年才出現(xiàn)如軟硬組織壞死糜爛、瘺管形成和病理性骨折等結(jié)局,嚴重影響患者的生存質(zhì)量,其發(fā)病機制至今尚未完全明確[3]。骨髓是對放射線較為敏感的組織器官之一,骨髓間充質(zhì)干細胞(bone marrow mesenchymal stem cells,BMMSC)來源于骨髓,是一類具有自我更新和多向分化潛能的前體細胞,在不同條件的誘導下可向成骨細胞、軟骨細胞和脂肪細胞等成體細胞分化[4-5]。BMMSC是骨組織中對放射線較為敏感的細胞之一,同時也是骨組織放射損傷的主要靶細胞之一。有研究表明,高劑量的放射線可導致BMMSC染色體受損,細胞增殖率降低,并破壞細胞的基因穩(wěn)定性[6]。目前,細胞模型由于影響因素少、實驗條件可控性強等優(yōu)點而被廣泛應(yīng)用于某一類疾病的體外研究中。因此,本研究擬通過采用X射線照射建立人骨髓間充質(zhì)干細胞(human bone marrow mesenchymal stem cells,hBMMSC)放射損傷的細胞模型,并利用該模型評價X射線對hBMMSC自噬、凋亡、克隆形成、多潛能干性和成骨分化能力的影響,以期將其應(yīng)用于ORNJ的相關(guān)研究中。所檢測指標中Beclin1是一種自噬相關(guān)蛋白,也是控制自噬途徑的關(guān)鍵分子;克隆形成反映了細胞群體依賴性和增殖能力的性狀;Sox2和Nanog是代表干細胞多分化潛能特性的細胞因子;RUNX2和OGN是骨代謝相關(guān)因子。經(jīng)多方面證實hBMMSC放射損傷的細胞模型的成功建立。

      1 材料與方法

      1.1 試劑和儀器

      人骨髓間充質(zhì)干細胞(hBMMSC)和成骨誘導分化培養(yǎng)基購自賽業(yè)生物科技有限公司,胎牛血清(FBS)、高糖達爾伯克改良伊格爾培養(yǎng)基(DMEM)購自美國Gibco公司,Annexin V/PI雙染試劑盒購自凱基生物,龍膽紫染液購自美國Sigma公司,堿性磷酸酶檢測試劑盒購自南京建成,兔抗人Beclin1、Sox2、Nanog單克隆抗體和鼠抗人GAPDH單克隆抗體購自美國Proteintech公司,山羊抗兔二抗、山羊抗鼠二抗購自聯(lián)科生物,兔抗人RUNX2多克隆抗體購自美國Cell Signaling Technology公司,鼠抗人OGN單克隆抗體購自美國Santa Cruz公司,PCR引物購自上海生工,逆轉(zhuǎn)錄和實時熒光定量PCR試劑盒購自日本TaKaRa公司;二氧化碳培養(yǎng)箱、生物安全柜、酶標儀購自美國Thermo公司,倒置顯微鏡購自日本Nikon公司,電泳槽、轉(zhuǎn)印槽、超高靈敏度化學發(fā)光成像系統(tǒng)購自美國BIO-RAD公司,實時熒光定量PCR儀購自瑞士Roche公司,流式細胞儀購自美國Becton Dickinson公司,X射線輻照儀購自美國Rad Source公司。

      1.2 hBMMSC細胞的培養(yǎng)

      使用含體積分數(shù)10%胎牛血清、1%青-鏈霉素的DMEM培養(yǎng)基,置于37℃、體積分數(shù)為5%的CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),觀察并記錄細胞的生長狀態(tài)。每3天換液一次,待細胞匯合度達到80%~90%時按1∶3進行傳代,取第4代細胞進行實驗。

      1.3 細胞照射

      細胞處于對數(shù)生長期時進行X射線照射,采用中山大學醫(yī)學實驗中心RAD SOURCE RS 2000型X-ray生物學輻照儀進行照射,工作電壓160 kV,電流25 mA,劑量率1.24 Gy/min(加反射體),照射劑量分別為0、2、4、8 Gy劑量,所有樣品照射均在室溫下進行,照射完成后細胞重新放回培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng)。

      1.4 Western blotting

      將對數(shù)生長期的hBMMSC接種于6孔板中,用RIPA裂解液裂解各組細胞提取總蛋白,用蛋白濃度測定試劑盒測定樣品的蛋白濃度,配平。取20 μg蛋白樣品上樣,經(jīng)SDS-PAGE電泳分離后,將待測蛋白轉(zhuǎn)移至PVDF膜上,用5%脫脂奶粉溶液于室溫下封閉1 h,加入一抗于4℃孵育過夜。次日用TBST洗膜3次,加入二抗室溫下孵育1 h。TBST洗膜3次后,化學發(fā)光法顯影采集目的條帶圖像。

      1.5 RT-qPCR

      將對數(shù)生長期的hBMMSC接種于6孔板中,采用Trizol提取細胞總RNA,定量后將細胞RNA逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,使用實時熒光定量PCR分析各組mRNA的表達水平,配制20 μL的反應(yīng)體系:上、下游引物(10 μmol/L)各 0.8 μL、SYBR Green 10 μL,DNA 模板 2 μL、dH2O 6.4 μL。反應(yīng)條件為:95 ℃ 30 s,1個循環(huán);95 ℃ 5 s、60 ℃ 30 s,40個循環(huán)。每組樣品設(shè)置3個復(fù)孔。采用2-ΔΔCt相對定量法進行分析,使用GAPDH進行校正,計算目的基因的相對表達量,所使用的引物序列見表1。

      表1 引物序列Table 1 The sequences of the primers

      1.6 細胞凋亡

      將對數(shù)生長期的hBMMSC接種于6孔板中,加入不含EDTA的胰酶1 mL,消化后收集細胞,PBS重懸,再次離心。去上清,500 μL Binding Buffer重懸細胞,調(diào)整細胞濃度為1×106個/mL。分別加入5 μL Annexin-V和5 μL PI,室溫下避光孵育15 min,上流式細胞儀檢測,采用Flowjo軟件進行分析。

      1.7 克隆形成

      將對數(shù)生長期的hBMMSC接種于6 cm培養(yǎng)皿中,培養(yǎng)2周后吸走細胞培養(yǎng)基,PBS洗滌2次,加入40 g/L的多聚甲醛溶液固定20 min,吸走多聚甲醛,ddH2O洗滌2次,0.1%結(jié)晶紫染色15 min,漂洗后烘干水漬,拍照觀察。

      1.8 成骨誘導分化

      當hBMMSC匯合度達到70%時,將完全培養(yǎng)基更換為成骨誘導分化培養(yǎng)基(DMEM+10%胎牛血清,10 mmol/L β-甘油磷酸鈉,50 mg/L抗壞血酸,1 μmol/L地塞米松,100 U/mL青-鏈霉素),每3天進行換液。

      1.9 堿性磷酸酶活性測定

      將對數(shù)生長期的hBMMSC接種于12孔板中,每孔加入200 μL TritonX-100裂解液,4℃裂解過夜。完成后取30 μL裂解液,按照試劑盒說明書進行操作,使用酶標儀于520 nm波長處測定吸光度A520nm。另取10 μL裂解液用BCA法測定蛋白濃度,計算每克蛋白所含有的堿性磷酸酶活性。

      1.1 0 統(tǒng)計學分析

      采用SPSS 20.0軟件進行分析,結(jié)果以均數(shù)±標準差(mean±SD)表示,所有實驗獨立重復(fù)3次。兩組間采用兩獨立樣本t檢驗,多組間采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用Dunnett-t檢驗法,雙側(cè)檢驗,以P<0.05代表差異有統(tǒng)計學意義。

      2 結(jié)果

      2.1 X射線對hBMMSC Beclin1蛋白和mRNA表達的影響

      與0 Gy對照組相比,hBMMSC經(jīng)2、4、8 Gy X射線照射后,Beclin1的蛋白水平表達呈劑量依賴性上調(diào),多組間根據(jù)單因素方差分析,差異具有統(tǒng)計學意義(F=128.40,P<0.001),Dunnett-t檢驗法兩兩比較顯示不同劑量照射組與0 Gy對照組相比,差異均有統(tǒng)計學意義(P=0.025 vs 2 Gy;P=0.009 vs 4 Gy,P=0.005 vs 8 Gy;圖 1);Beclin1 的mRNA水平表達亦呈劑量依賴性升高,多組間根據(jù)單因素方差分析,差異具有統(tǒng)計學意義(F=79.31,P<0.01),Dunnett-t檢驗法兩兩比較顯示不同劑量照射組與0 Gy對照組相比,差異均有統(tǒng)計學意義(P=0.010 vs 2 Gy;P<0.001 vs 4 Gy,P<0.001 vs 8 Gy;圖2)。

      2.2 X射線對hBMMSC凋亡率的影響

      與0 Gy對照組相比,hBMMSC經(jīng)2、4、8 Gy X射線照射后,細胞凋亡率隨著照射劑量的增加而逐漸升高,依次為(1.96±0.91)%、(4.28±0.83)%、(5.65±0.64)%、(14.64±1.57)%。根據(jù)單因素方差分析,差異具有統(tǒng)計學意義(F=84.34,P<0.001),Dunnett-t檢驗法兩兩比較顯示不同劑量照射組與0 Gy對照組相比,2、4 Gy照射組的差異均無統(tǒng)計學意義,8 Gy照射組與0 Gy對照組相比,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.001;圖3)。

      圖1 不同劑量X射線對hBMMSC Beclin1蛋白表達的影響Fig.1 Effect of different doses of X-ray on Beclin1 protein expression in hBMMSC

      2.3 X射線對hBMMSC克隆形成率的影響

      克隆形成實驗結(jié)果顯示,hBMMSC經(jīng)8 Gy X射線照射后克隆形成率為(11.32±2.08)%,空白對照組克隆形成率為(31.25±2.97)%,照射后細胞克隆形成率顯著下降,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.001;圖4)。

      圖2 不同劑量X射線對hBMMSC Beclin1 mRNA表達的影響Fig.2 Effect of different doses of X-ray on Beclin1 mRNA expression in hBMMSC

      2.4 X射線對hBMMSC Sox2、Nanog蛋白和mRNA表達的影響

      與0 Gy對照組相比,hBMMSC經(jīng)8 Gy X射線照射后,Sox2和Nanog的蛋白水平表達下調(diào)(Sox2:P=0.009;Nanog:P<0.001;圖5);同時Sox2和Nanog的mRNA水平表達亦降低,差異均具有統(tǒng)計學意義(Sox2:P<0.001;Nanog:P<0.001;圖6)。

      圖3 不同劑量X射線對hBMMSC凋亡率的影響Fig.3 Effect of different doses of X-ray on apoptosis rate in hBMMSC

      圖4 不同劑量X射線對hBMMSC克隆形成率的影響Fig.4 Effect of different doses of X-ray on CFU-F efficiency in hBMMSC

      圖5 不同劑量X射線對hBMMSC Sox2和Nanog蛋白表達的影響Fig.5 Effect of different doses of X-ray on Sox2 and Nanog protein expression in hBMMSC

      2.5 X射線對hBMMSC成骨誘導分化后RUNX2、OGN蛋白和mRNA表達的影響

      與0 Gy對照組相比,hBMMSC經(jīng)2、4、8 Gy X射線照射后,成骨誘導分化第7天RUNX2和第14天OGN的蛋白水平表達均呈劑量依賴性下調(diào),分別對各組進行單因素方差分析,差異具有統(tǒng)計學意義(RUNX2:F=70.4,P<0.001;OGN:F=64.07,P<0.001),利用Dunnett-t檢驗兩兩比較顯示:與0 Gy對照組相比,2 Gy照射組的RUNX2和OGN蛋白水平表達差異無統(tǒng)計學意義外(RUNX2:P=0.059,OGN:P=0.067),4 Gy和8 Gy照射組差異均有統(tǒng)計學意義(RUNX2:P=0.002 vs 4 Gy,P=0.002 vs 8 Gy ;OGN:P=0.025 vs 4 Gy,P=0.009 vs 8 Gy;圖7);RUNX2和OGN的mRNA水平表達亦呈劑量依賴性降低,根據(jù)單因素方差分析,差異具有統(tǒng)計學意義(RUNX2:F=51.92,P<0.01;OGN:F=58.16,P<0.01),Dunnett-t檢驗兩兩比較顯示與0 Gy對照組相比,除2 Gy照射組的RUNX2水平表達差異無統(tǒng)計學意義外(P=0.075),其余各組差異均有統(tǒng)計學意義(RUNX2:P=0.002 vs 4 Gy,P=0.0002 vs 8 Gy;OGN:P=0.003 vs 2 Gy,P=0.001 vs 4 Gy,P=0.0004 vs 8 Gy;圖8)。

      2.6 X射線對hBMMSC成骨誘導分化后堿性磷酸酶活性的影響

      與0 Gy對照組相比,hBMMSC經(jīng)2、4、8 Gy X射線照射后,成骨誘導分化第7天堿性磷酸酶活性呈劑量依賴性降低,根據(jù)單因素方差分析,差異具有統(tǒng)計學意義(F=47.97,P<0.001),Dunnett-t檢驗法兩兩比較顯示不同劑量照射組與0 Gy對照組相比,2 Gy照射組的差異無統(tǒng)計學意義(P=0.068),4、8 Gy照射組差異具有統(tǒng)計學意義(P=0.011 vs 4 Gy,P=0.0004 vs 4 Gy;圖9)。

      3 討論

      圖6 不同劑量X射線對hBMMSC Sox2和Nanog mRNA表達的影響Fig.6 Effect of different doses of X-ray on Sox2 and Nanog mRNA expression in hBMMSC

      圖7 不同劑量X射線對hBMMSC RUNX2和OGN蛋白表達的影響Fig.7 Effect of different doses of X-ray on RUNX2 and OGN protein expression in hBMMSC

      圖8 不同劑量X射線對hBMMSC RUNX2和OGN mRNA表達的影響Fig.8 Effect of different doses of X-ray on RUNX2 and OGN mRNA expression in hBMMSC

      圖9 不同劑量X射線對hBMMSC堿性磷酸酶活性的影響Fig.9 Effect of different doses of X-ray on alkaline phosphatase activity in hBMMSC

      放射治療是目前頭頸部惡性腫瘤的主要治療手段之一,但放療所致頜面部組織的損傷卻給患者帶來嚴重的并發(fā)癥,其中以O(shè)RNJ最為嚴重[7]。ORNJ的發(fā)病機制至今尚未能完全明確,其病理學轉(zhuǎn)歸大多表現(xiàn)為放射區(qū)域的組織細胞受到破壞,同時氧自由基大量形成,引起細胞外基質(zhì)堆積和微血管血栓,最終骨重塑平衡被打破造成骨壞死[8]。頜骨組織的形成主要包括hBMMSC定向分化為成骨祖細胞和后續(xù)向成熟成骨細胞分化的過程,hBMMSC是存在于骨髓中一類具有多向分化潛能和自我更新能力的干細胞,是髓腔內(nèi)的“種子細胞群”,同時也是骨組織中對放射線敏感的細胞之一。本研究通過采用輻照儀對細胞進行不同劑量X射線照射,從而建立hBMMSC放射損傷的細胞模型。

      hBMMSC在缺氧、細胞毒藥物以及放射等應(yīng)激狀態(tài)之下,會激發(fā)自噬從而維持細胞內(nèi)環(huán)境的穩(wěn)定。有研究顯示,當細胞經(jīng)各類射線照射后,細胞中最主要的反應(yīng)為生物膜、細胞器和細胞核等在結(jié)構(gòu)或者功能上受到損傷,細胞死亡是其中最為嚴重的結(jié)局,自噬與凋亡是細胞對損傷剌激的適應(yīng)反應(yīng)[9]。Beclin1作為參與自噬形成的重要基因,其表達水平在一定程度上能反應(yīng)細胞的自噬情況[10]。細胞凋亡則是維持正常組織形態(tài)和一定功能的主動自殺過程,是在基因控制下按照一定程序進行的細胞死亡[11-12]。我們在研究中分別給予單次照射劑量0、2、4、8 Gy,照射后Western blot與RT-qPCR檢測結(jié)果均顯示,正常hBMMSC中Beclinl呈弱表達,而在照射后表達則呈劑量依賴性升高,其中在8 Gy時表達最高;此外,我們在0、2、4、8 Gy的X射線照射劑量下檢測hBMMSC的凋亡率,結(jié)果顯示照射組的凋亡率與空白對照組相比均有升高,經(jīng)8 Gy單次照射后hBMMSC的凋亡率與空白對照組凋亡率差異最為顯著。

      細胞克隆形成率即細胞接種存活率,表示細胞接種后貼壁細胞成活并形成克隆的數(shù)量,反映了細胞群體依賴性和增殖能力兩個重要性狀[13]。根據(jù)本實驗中克隆形成結(jié)果顯示,hBMMSC經(jīng)8 Gy X射線照射后克隆形成率為(11.32±2.08)%,未照射空白對照組克隆形成率為(31.25±2.97)%,表明照射后細胞克隆形成率顯著下降。

      Sox2和Nanog是代表干細胞多分化潛能特性的細胞因子,對于維持干細胞的功能起關(guān)鍵作用[14-15]。當這些細胞因子處于受損狀態(tài)下,干細胞的多潛能分化特性就會受到影響。RUNX2是調(diào)控成骨分化早期階段的重要轉(zhuǎn)錄因子[16];OGN稱為骨誘導因子,是骨組織的一種分泌蛋白[17];堿性磷酸酶是成骨細胞的早期標志性物質(zhì)[18]。我們的研究表明,8 Gy X射線照射后hBMMSC Sox2和Nanog的表達降低,這提示干細胞的多潛能特性受到損傷,后續(xù)有望繼續(xù)開展相應(yīng)X射線照射后體外誘導hBMMSC成骨誘導,成脂誘導及成軟骨誘導的細胞實驗,以及在臨床ORNJ樣本中檢測成骨相關(guān)基因的表達變化差異。此外,不同劑量X射線照射后hBMMSC成骨分化基因RUNX2和OGN的表達下調(diào),堿性磷酸酶活性降低,其中以8 Gy照射組最為明顯,這說明X射線能抑制hBMMSC的成骨分化能力,影響新生骨組織形成,打破放射后骨組織內(nèi)平衡以及體內(nèi)骨髓微環(huán)境的穩(wěn)定性,從而增進破骨細胞介導的骨吸收過程,導致了骨缺損的形成。

      綜上所述,本研究建立的hBMMSC放射損傷細胞模型分別從細胞的自噬、凋亡、克隆形成、多潛能干性和成骨分化能力等方面驗證了X射線對hBMMSC的放射性損傷,充分說明該細胞模型的構(gòu)建是成功的,并為ORNJ發(fā)病機制等的實驗研究提供新的研究對象,也對開展抗輻射藥物對hBMMSC的保護作用的驗證以及藥物通過信號通路發(fā)揮作用的深入探討具有重要意義。

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