耿敬章
(陜西理工大學(xué) 生物科學(xué)與工程學(xué)院,陜西 漢中 723000)
迷迭香屬于唇形科的芳香植物,具有豐富的使用價(jià)值[1,2],在我國(guó)云南、貴州、廣西、海南等地有種植。迷迭香是一種名貴的天然香料植物,在生長(zhǎng)季節(jié)會(huì)散發(fā)一種清香氣味[3,4]。迷迭香是西餐中經(jīng)常使用的香料,經(jīng)常使用在牛排、土豆等料理以及烤制品中。同時(shí),迷迭香還被廣泛用于醫(yī)藥、油炸食品、食品保鮮等[5,6]。研究表明,這些功能主要與迷迭香化學(xué)成分中的酚類(lèi)和揮發(fā)油類(lèi)有關(guān)[7]。迷迭香提取物中除了有熊果酸、α-蒎烯等物質(zhì)外,還有鼠尾草酚、鼠尾草酸、迷迭香酸、迷迭香酚等二萜酚類(lèi)物質(zhì)。其中,二萜酚類(lèi)物質(zhì)具有明顯的抗微生物活性,在抗菌、消炎方面發(fā)揮巨大作用[8]。李斯特菌存在于絕大多數(shù)食品中,肉類(lèi)、蛋類(lèi)、海產(chǎn)品、蔬菜等都已被證實(shí)是李斯特菌的感染源[9-11]。因此,本文研究迷迭香多酚提取工藝及其抑制李斯特菌活性,以期對(duì)迷迭香多酚資源進(jìn)行深層次挖掘和利用。
迷迭香:購(gòu)于當(dāng)?shù)刂兴幉呐l(fā)市場(chǎng);乙醇、沒(méi)食子酸、福林酚試劑、碳酸鈉、石油醚等:中國(guó)醫(yī)藥(上海)化學(xué)試劑公司;胰蛋白胨大豆肉湯(TSB)、胰蛋白胨大豆瓊脂(TSA):上海緣肽生物技術(shù)有限公司;單增李斯特菌種:省農(nóng)科院提供;其他試劑均為分析純。
電動(dòng)攪拌機(jī) 江西安亭儀器設(shè)備廠;HZX-JA100電子天平 北京新陽(yáng)儀器設(shè)備有限公司;DK-8D超級(jí)水浴鍋 華立設(shè)備公司;721G型可見(jiàn)分光光度計(jì) 上海精密科學(xué)儀器有限公司;循環(huán)真空泵 天津貝納儀器設(shè)備有限公司;超聲波發(fā)生儀 北京天輝化工設(shè)備有限公司;旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀、真空干燥箱 安徽高博科學(xué)儀器有限公司。
1.3.1 迷迭香多酚提取工藝流程
迷迭香干葉→篩選→鼓風(fēng)干燥→粉碎→篩分→乙醇→超聲波提取→濾渣再提取→合并濾液→萃取→濃縮→真空干燥→迷迭香多酚提取物[12]。
1.3.2 指標(biāo)測(cè)定
總酚含量:Folin-Ciocalteu法測(cè)定總酚含量[13]。
提取率=(C×V/m)×100%。
式中:C為提取液總酚含量,mg/mL;V為體積,mL;m為原料質(zhì)量,g[14]。
1.3.3 迷迭香多酚抑制李斯特菌活性實(shí)驗(yàn)
TSB培養(yǎng)基接種單增李斯特菌,37 ℃ 200 r/min搖床培養(yǎng)24 h,然后離心,添加生理鹽水,獲得200 CFU/mL菌懸液備用。用移液器吸取迷迭香多酚菌懸液到TSA培養(yǎng)基,然后涂布均勻,再加1%吐溫80,稀釋為200,100,50,25,12.5,6.25 mg/mL 6個(gè)梯度。以1%吐溫80為空白對(duì)照實(shí)驗(yàn),測(cè)抑菌圈直徑,平行實(shí)驗(yàn)3次[15-17]。
設(shè)定提取迷迭香多酚其他各因素條件,選取6,10,14,18,22,26 6個(gè)水平的液料比提取迷迭香多酚,檢測(cè)迷迭香多酚。有效成分提取的過(guò)程實(shí)質(zhì)是一個(gè)傳質(zhì)過(guò)程,因此操作條件中的液料比對(duì)提取效果至關(guān)重要[18]。
圖1 液料比對(duì)提取迷迭香多酚的影響Fig.1 Effect of liquid-material ratio on the extraction of rosemary polyphenols
由圖1可知,液料比小于18時(shí),提取率逐漸提高,這是因?yàn)槊缘愣喾硬粩鄰墓腆w原料向液體溶劑傳質(zhì),溶劑的滲透和有效成分的溶解進(jìn)行較快。當(dāng)液料比為18時(shí),迷迭香多酚提取效果較好,提取率達(dá)到最大。當(dāng)液料比大于18時(shí),提取率反而降低,這可能是因?yàn)檩^高的液料比增加了傳質(zhì)推動(dòng)力,使得提取效果下降。同時(shí)使用大量的溶劑會(huì)對(duì)實(shí)驗(yàn)后處理操作造成負(fù)擔(dān)。因此,綜合考慮,迷迭香多酚提取過(guò)程中,液料比為18較為適宜。
設(shè)定提取迷迭香多酚其他各因素條件,選取50%、55%、60%、65%、70%、75% 6個(gè)水平的乙醇濃度提取迷迭香多酚,檢測(cè)迷迭香多酚。乙醇作為一種極性較強(qiáng)的溶劑,能提取出極性強(qiáng)或極性較弱的有效物質(zhì)[19]。乙醇濃度的變化能影響提取物密度、黏度、介電常數(shù)等物理性質(zhì),進(jìn)而影響提取率。
圖2 乙醇濃度對(duì)提取迷迭香多酚的影響Fig.2 Effect of ethanol concentration on extraction of rosemary polyphenols
由圖2可知,迷迭香多酚的提取率隨乙醇濃度的提高先增大后減小。當(dāng)乙醇濃度分別為50%、55%時(shí),迷迭香多酚提取率逐漸提高,當(dāng)乙醇濃度提高到60%時(shí),迷迭香多酚提取率達(dá)到最高,說(shuō)明乙醇對(duì)提取多酚效果較好。當(dāng)乙醇濃度大于60%時(shí),迷迭香多酚提取率反而下降,這可能是由于其他一些弱極性成分溶出量增加,減緩了酚類(lèi)物質(zhì)向乙醇溶劑的擴(kuò)散。因此,迷迭香多酚提取過(guò)程中,乙醇濃度為60%較為適宜。
設(shè)定提取迷迭香多酚其他各因素條件,選取200,250,300,350,400,450 W 6個(gè)水平的超聲波功率提取迷迭香多酚,檢測(cè)迷迭香多酚。超聲波輔助提取是天然產(chǎn)物中有效成分提取的一個(gè)好方法,它操作簡(jiǎn)單,節(jié)省能耗,提取效果有保證[20]。
圖3 超聲波功率對(duì)提取迷迭香多酚的影響Fig.3 Effect of ultrasonic power on extraction of rosemary polyphenols
由圖3可知,隨著超聲波功率提高,迷迭香多酚提取率呈先上升后下降的趨勢(shì),當(dāng)超聲波功率為350 W時(shí),迷迭香多酚提取率達(dá)到最高。這是由于隨著超聲功率提高,超聲波引起的“空化效應(yīng)”加強(qiáng),迷迭香多酚滲透速率加快。但是,當(dāng)超聲波功率大于350 W時(shí),高壓環(huán)境致使迷迭香多酚的結(jié)構(gòu)受損,且雜質(zhì)溶出嚴(yán)重,導(dǎo)致迷迭香多酚提取率降低。因此,迷迭香多酚提取過(guò)程中,超聲波功率為350 W較為適宜。
設(shè)定提取迷迭香多酚其他各因素條件,選取10,20,30,40,50,60 min 6個(gè)水平的超聲波時(shí)間提取迷迭香多酚,檢測(cè)迷迭香多酚。
圖4 超聲波時(shí)間對(duì)提取迷迭香多酚的影響Fig.4 Effect of ultrasonic time on extraction of rosemary polyphenols
由圖4可知,超聲時(shí)間低于40 min時(shí),迷迭香多酚提取率逐漸上升,當(dāng)超聲波時(shí)間為40 min時(shí),提取率最大,之后逐漸下降。這可能是因?yàn)槌曁崛¢_(kāi)始時(shí),細(xì)胞破碎逐漸增加,因此迷迭香多酚含量不斷提高。當(dāng)超聲40 min后,超聲時(shí)間過(guò)長(zhǎng),迷迭香多酚已基本溶出且部分被損壞,所以提取率下降。因此,迷迭香多酚提取過(guò)程中,超聲波時(shí)間為40 min較為適宜。
表1 響應(yīng)面優(yōu)化提取條件的因素和水平 Table 1 Factors and levels of optimizing the extraction conditions by response surface methodology
表2 迷迭香多酚提取條件實(shí)驗(yàn)結(jié)果Table 2 Experimental results of extraction conditions of rosemary polyphenols
續(xù) 表
由表1可知,迷迭香多酚提取條件中,液料比、乙醇濃度、超聲波功率、超聲波時(shí)間對(duì)結(jié)果影響顯著。以下為提取率二次回歸擬合方程:
提取率(%)=4.22—0.065A-0.10B+0.50C+0.080D-0.028AB-0.10AC-0.095AD-0.42BC+0.016BD+0.086CD-0.50A2-0.16B2-0.57C2-0.45D2。
式中:A是液料比,B是乙醇濃度,C是超聲波功率,D是超聲波時(shí)間。迷迭香多酚提取條件實(shí)驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)表2,響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)結(jié)果分析見(jiàn)表3。
表3 響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)結(jié)果分析Table 3 Analysis of experimental results of response surface methodology
注:若“Prob>F”<0.05,表示因素為顯著因素。
迷迭香多酚提取實(shí)驗(yàn)失擬項(xiàng)不顯著,P值為0.8867,模型極顯著,P值<0.0001,所以能對(duì)提取迷迭香多酚的條件進(jìn)行預(yù)測(cè)。得到迷迭香多酚提取的最佳條件為液料比15,乙醇濃度56%,超聲波功率376 W,超聲波時(shí)間38 min。
圖5 液料比和乙醇濃度的相互作用Fig.5 Interaction between liquid-material ratio and ethanol concentration
由圖5可知,液料比與乙醇濃度的相互作用對(duì)提取迷迭香多酚的影響顯著,隨著液料比與乙醇濃度的增大,提取率先增后減,變化幅度不大。
圖6 液料比和超聲波功率的相互作用Fig.6 Interaction between liquid-material ratio and ultrasonic power
由圖6可知,液料比與超聲波功率的相互作用對(duì)提取迷迭香多酚的影響顯著,隨著液料比與超聲波功率的提高,提取率先增后減,變化幅度較大。
圖7 液料比和超聲波時(shí)間的相互作用Fig.7 Interaction between liquid-material ratio and ultrasonic time
由圖7可知,液料比與超聲波時(shí)間相互作用對(duì)提取迷迭香多酚的影響顯著,隨著液料比與超聲波時(shí)間的提高,提取率先增后減,變化幅度不大。
圖8 乙醇濃度和超聲波功率的相互作用Fig.8 Interaction between ethanol concentration and ultrasonic power
由圖8可知,乙醇濃度與超聲波功率的相互作用對(duì)提取迷迭香多酚的影響顯著,隨著乙醇濃度與超聲波功率的提高,提取率先增后減,變化幅度較大。
圖9 乙醇濃度和超聲波時(shí)間的相互作用Fig.9 Interaction between ethanol concentration and ultrasonic time
由圖9可知,乙醇濃度與超聲波時(shí)間的相互作用對(duì)提取迷迭香多酚的影響顯著,隨著乙醇濃度與超聲波時(shí)間的提高,提取率先增后減。
圖10 超聲波功率和超聲波時(shí)間的相互作用Fig.10 Interaction between ultrasonic power and ultrasonic time
由圖10可知,超聲波功率與超聲波時(shí)間的相互作用對(duì)提取迷迭香多酚的影響顯著,隨著超聲波功率與超聲波時(shí)間的提高,提取率先增后減。
設(shè)計(jì)表4來(lái)驗(yàn)證響應(yīng)面優(yōu)化得到的提取迷迭香多酚的最佳條件的可靠性。
表4 結(jié)果驗(yàn)證Table 4 Verification of results
由表4可知,實(shí)驗(yàn)4的提取率最高,因此提取迷迭香多酚的最佳條件是液料比15,乙醇濃度56%,超聲波功率376 W,超聲波時(shí)間38 min。
圖11 迷迭香多酚抑制李斯特菌活性結(jié)果Fig.11 Results of antibacterial activity of Listeria monocytogene by rosemary polyphenols
由圖11可知,迷迭香多酚提取物是抑制李斯特菌的有效物質(zhì),且抑菌程度有所不同[21-23]。隨著迷迭香多酚提取物濃度逐漸提高,抑菌圈直徑逐漸增大,當(dāng)濃度為200 mg/mL時(shí),抑菌圈直徑達(dá)到最大。這可能是因?yàn)槊缘愣喾訐p傷李斯特菌的細(xì)胞壁和細(xì)胞膜,又或者是影響了李斯特菌的呼吸能量代謝,甚至影響了李斯特菌的DNA,進(jìn)而抑制了李斯特菌的活性[24,25]。
響應(yīng)面優(yōu)化提取迷迭香多酚的實(shí)驗(yàn)?zāi)P秃蛯?shí)際情況擬合度比較好,結(jié)果可用,迷迭香多酚提取的二次回歸擬合方程如下:提取率(%)=4.22—0.065A-0.10B+0.50C+0.080D-0.028AB-0.10AC-0.095AD-0.42BC+0.016BD+0.086CD-0.50A2-0.16B2-0.57C2-0.45D2(式中:A是液料比,B是乙醇濃度,C是超聲波功率,D是超聲波時(shí)間)。迷迭香多酚提取的最佳條件是液料比15,乙醇濃度56%,超聲波功率376 W,超聲波時(shí)間38 min。
迷迭香多酚能在一定程度上抑制李斯特菌的活性,且隨著迷迭香多酚的濃度提高,抑制程度增大。