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      維生素 D受體對(duì) LPS誘導(dǎo)的大鼠小腸隱窩上皮細(xì)胞 IEC-6炎癥模型的保護(hù)機(jī)制 ※

      2019-07-09 06:43:10王海久姚丹華李幼生樊海寧
      關(guān)鍵詞:空白對(duì)照預(yù)處理試劑盒

      許 航,王海久,姚丹華,李幼生*,樊海寧*

      (1.青海大學(xué)附屬醫(yī)院肝膽胰外科,青海 西寧 810000;2.青海省包蟲病研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,青海 西寧 810000;3.上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬第九人民醫(yī)院普外科,上海 200011)

      and the concentration of IFN-γ and IL-6 in the supernatantof IEC-6 by MTT

      如今,越來越多關(guān)于維生素D在腸道中的生理作用被人們所重視。由于維生素D的生物學(xué)作用都是通過維生素D受體(Vitamin D receptor,VDR)來實(shí)現(xiàn)的,活性維生素D可以激活VDR,因此我們認(rèn)為活性維生素D的作用等同于VDR的作用。近幾年來的研究發(fā)現(xiàn),VDR是一個(gè)胃腸道的保護(hù)性受體,并廣泛分布于人體各個(gè)器官,具有抗炎作用[1]。動(dòng)物實(shí)驗(yàn)證實(shí),小腸切除術(shù)后,在膳食中添加維生素D,可以促進(jìn)隱窩的分化和腸上皮細(xì)胞的增殖[2],也可以維持腸上皮細(xì)胞的穩(wěn)態(tài)[3]。同時(shí),VDR下調(diào)可以減輕大鼠結(jié)腸炎癥[4]。但目前維生素D對(duì)緩解腸道炎癥的具體機(jī)制不明,因此,本實(shí)驗(yàn)通過體外建立LPS誘導(dǎo)的大鼠小腸隱窩上皮細(xì)胞IEC-6炎癥模型,觀察VDR對(duì)該模型的影響,探究其可能存在的機(jī)制。

      1 材料與方法

      1.1 試劑與儀器

      IEC-6 細(xì)胞購于富衡生物公司;培養(yǎng)用胎牛血清(Fetal Bovine Serum,F(xiàn)BS)購于Gibco公司;DMEM培養(yǎng)基、胰酶、脂多糖(Lipopolysaccharide,LPS)、1,25二羥維生素D3(1,25-dihydroxy-vitamin D3,1,25D3)購于Sigma公司;INF-γ、IL-6 ELISA試劑盒購于聯(lián)科生物;RNA提取試劑盒GeneJET RNA Purification Kit購于Thermo公司;cDNA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒購于Takara公司;PowerUp SYBR Master Mix購于ABI公司;RIPA細(xì)胞裂解液、BCA蛋白濃度定量試劑盒購于代軒生物公司;Claudin-1一抗購于Abcam公司;Occludin一抗購于Novus公司。

      1.2 實(shí)驗(yàn)方法

      1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng)

      將IEC-6細(xì)胞放在10% FBS的DMEM培養(yǎng)基(37℃,5%CO2,濕潤)上培養(yǎng),每兩天傳代1次。

      1.2.2 實(shí)驗(yàn)細(xì)胞分組及干預(yù)

      取生長良好的IEC-6細(xì)胞做如下分組:空白對(duì)照組(normal control,NC組);LPS組;1nM-1,25D3+ LPS組(1nM組),10nM-1,25D3+ LPS組(10nM組);100nM-1,25D3+ LPS組(100nM組);200nM-1,25D3+ LPS組(200nM組);500nM-1,25D3+ LPS 組(500nM組)??瞻讓?duì)照組正常培養(yǎng),其余各組分別用0、1、10、100、200、500nM的1,25D3預(yù)處理72 h,之后加入LPS,使LPS總濃度達(dá)到10 mg/L,培養(yǎng)24 h后收集細(xì)胞及上清液進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

      1.2.3 MTT實(shí)驗(yàn)

      將預(yù)先接種到96孔板中并處理過的各組細(xì)胞,加入20 μL MTT,孵育4 h后用移液器吸去孔內(nèi)培養(yǎng)液,加150 μL DMSO。

      用酶標(biāo)儀在490 nm波長處測定各孔的吸光值。

      1.2.4 炎癥因子檢測

      吸取各組細(xì)胞上清液至1.5 mL EP管中,離心(12000g)5 min去除細(xì)胞碎片,然后吸取1 mL細(xì)胞上清液至新的1.5 mL EP管中,后續(xù)按照ELISA試劑盒說明書檢測炎癥因子INF-γ、IL-6。

      1.2.5 實(shí)時(shí)熒光定量PCR實(shí)驗(yàn)

      提取細(xì)胞的總RNA,測定其濃度,采用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒合成cDNA,反應(yīng)總體系為Total RNA 500 ng、5×PrimeScript RT Master Mix 2 μL,補(bǔ)充RNase Free dH2O至10 μL。進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR實(shí)驗(yàn),反應(yīng)總體系為:2× PowerUp SYBR Green Master Mix 5 μL,正向引物和反向引物濃度為500nM,cDNA模板10 ng,補(bǔ)充ddH2O至10 μL。引物見表1。

      表1 PCR引物Table1 PCR primer

      1.2.6 Western blot 實(shí)驗(yàn)

      用RIPA裂解液提取細(xì)胞蛋白,用BCA法測定濃度;之后進(jìn)行電泳、轉(zhuǎn)膜,用5%脫脂奶粉封閉過夜(4℃)。室溫孵育一抗抗體Claudin-1、Occludin和內(nèi)參抗體GAPDH 2 h,洗膜。室溫孵育二抗抗體2 h,洗膜,加入顯影液后在顯影儀器中曝光顯影。

      1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

      2 結(jié)果

      2.1 用MTT法檢測細(xì)胞生長情況

      與空白對(duì)照組相比,加入LPS處理24 h的各組細(xì)胞存活率均有不同程度下降。在不同濃度1,25D3預(yù)處理的各組細(xì)胞間隨著預(yù)處理1,25D3濃度的增加,細(xì)胞存活率呈現(xiàn)梯度增長趨勢(shì)。見表2。

      表2 細(xì)胞平均存活率及ELISA實(shí)驗(yàn)檢測細(xì)胞上清中IFN-γ和IL-6濃度結(jié)果 Table2 Detection of the cell survival rate of IEC-6 by MTT experiment

      #:與NC組比較,P<0.05;*:與LPS組比較,P<0.05;▲:與1nM組比較P<0.05;△:與10nM組比較,P<0.05;◆:與100nM組比較,P<0.05

      2.2 用ELISA法檢測細(xì)胞上清液中IL-6、IFN-γ表達(dá)情況

      與空白對(duì)照組相比,LPS組細(xì)胞上清液中的IFN-γ和IL-6濃度顯著上升(P<0.05)。用不同濃度1,25D3預(yù)處理72 h之后的各組細(xì)胞的上清液中IFN-γ和IL-6的濃度隨著預(yù)處理1,25D3濃度的上升而逐漸下降,到達(dá)500nM后不再下降。見表2。

      2.3 用實(shí)時(shí)熒光定量PCR情況

      用LPS處理后,1,25D3預(yù)處理與未預(yù)處理各組間VDR、TLR4、MyD88、NF-κB mRNA的表達(dá)情況見表3。表3顯示,TLR4、MyD88、NF-κB mRNA的表達(dá)水平經(jīng)LPS刺激24 h后顯著增高(P<0.05)。

      表3 VDR、TLR 4、NF-κB、MyD 88 mRNA的相對(duì)表達(dá)量 Table3 mRNA relative expression of

      #:與NC組比較,P<0.05;*:與LPS組比較,P<0.05;▲:與1nM組比較,P<0.05;△:與10nM組比較,P<0.05;◆:與100nM組比較,P<0.05

      2.4 緊密連接蛋白的Western blot結(jié)果

      結(jié)果顯示,LPS組緊密連接蛋白Occudin和Claudin-1較空白對(duì)照組表達(dá)減弱,200nM組緊密連接蛋白較LPS組表達(dá)有所增強(qiáng)。見圖1。

      1:LPS組;2:200nM組;3:空白對(duì)照組
      圖1Occludin和Claudin-1蛋白表達(dá)圖
      Figure1The expression of Occludin and Claudin-1protein

      3 討論

      本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,在IEC-6細(xì)胞中,VDR可以通過抑制TLR4/NF-κΒ 信號(hào)通路,減少NF-κΒ的表達(dá),從而減輕腸道炎癥反應(yīng),保護(hù)腸粘膜。

      炎癥因子是反應(yīng)炎癥程度的重要指標(biāo),MTT實(shí)驗(yàn)可以反映細(xì)胞活力。因此本研究在體外用LPS誘導(dǎo)IEC-6細(xì)胞后,通過測量細(xì)胞上清中炎癥因子濃度和細(xì)胞活力來驗(yàn)證體外炎癥模型是否成功。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,用LPS誘導(dǎo)IEC-6細(xì)胞成功建立了細(xì)胞炎癥模型。之后,用1,25D3按照濃度從1nM至500nM預(yù)處理72 h,VDR mRNA呈現(xiàn)出梯度增加的趨勢(shì)。隨著VDR的上調(diào),炎癥反應(yīng)得到了抑制,表現(xiàn)在ICE-6細(xì)胞分泌的相關(guān)炎癥因子IFN-γ、IL-6以及TLR4/NK-κB信號(hào)通路上相關(guān)mRNA較空白對(duì)照組顯著下降,并且細(xì)胞存活率上升。而在不同濃度1,25D3的處理下,根據(jù)濃度梯度,呈現(xiàn)出規(guī)律性變化。本實(shí)驗(yàn)觀察到,隨著1,25D3預(yù)處理濃度上升,對(duì)TLR4信號(hào)通路的抑制程度逐漸加強(qiáng)。到500nM后,與200nM相比無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P>0.05)。我們認(rèn)為,200nM是對(duì)IEC-6細(xì)胞的最適濃度。在幼建鯉腸道細(xì)胞中,給予1~200 pM 1,25D3,可以調(diào)節(jié)TLR4/NF-κΒ 信號(hào)通路,抑制LPS誘導(dǎo)的腸上皮細(xì)胞的炎癥反應(yīng)[5]。而在SKCO15細(xì)胞中,5~40nM 1,25D3可以保護(hù)緊密連接蛋白[6]。因此,在不同細(xì)胞中,1,25D3的有效濃度不同。

      維生素D有抑制炎癥反應(yīng)的作用。已有實(shí)驗(yàn)證實(shí)維生素D在炎癥性結(jié)腸癌細(xì)胞模型中減輕炎癥的作用是通過TLR4通路介導(dǎo)的[7]。而VDR的減少會(huì)增加炎癥風(fēng)險(xiǎn)[8],也會(huì)導(dǎo)致緊密連接蛋白Claudin-1、Occludin等的破壞[9,10],其機(jī)制是炎癥反應(yīng)激活了TLR4/NF-κB信號(hào)通路[11],破壞了腸屏障功能。在血管內(nèi)皮細(xì)胞炎癥模型中,上調(diào)VDR可以抑制炎癥[12]。在潰瘍性結(jié)腸炎的病人血清中,活性維生素D的濃度與炎癥程度呈負(fù)相關(guān)[13]。在許多文獻(xiàn)中也指出,VDR在NF-κB信號(hào)通路[14]和腸粘膜屏障的保護(hù)中有著至關(guān)重要的作用[15],這與本研究中所示緊密連接蛋白Occludin和Claudin-1表達(dá)情況相符。

      綜上所述,本實(shí)驗(yàn)初步證實(shí)了在IEC-6細(xì)胞中通過上調(diào)VDR,抑制了MyD88依賴的TLR4/NF-κB信號(hào)通路,減輕了炎癥反應(yīng),從而保護(hù)了腸粘膜屏障。本研究仍有一些不足之處,首先,只在IEC-6細(xì)胞中做了相關(guān)干預(yù),這不能證明VDR在其他腸道上皮細(xì)胞中也有相同的作用;其次,只對(duì)VDR進(jìn)行了上調(diào),沒有對(duì)VDR進(jìn)行沉默。

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