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      兔源肺炎克雷伯氏菌重組酶聚合酶擴增檢測方法的建立

      2019-07-13 07:19:36趙巧雅馬秀麗劉存霞史玉穎王貴升蘭鄒然
      中國動物檢疫 2019年7期
      關(guān)鍵詞:氏菌克雷伯菌液

      趙巧雅,馬秀麗,劉存霞,史玉穎,胡 峰,王貴升,蘭鄒然,黃 兵

      (1.山東省農(nóng)業(yè)科學(xué)院家禽研究所,山東濟南 250023;2.山東省動物疫病預(yù)防與控制中心,山東濟南 250022)

      肺炎克雷伯氏菌病是由肺炎克雷伯氏菌(Klebsiella pneumoniae)引起的,以肺炎和其他器官化膿性炎癥為特征的人獸共患散發(fā)性疾病。青年兔、成年兔感染肺炎克雷伯氏菌后,以肺炎及其他器官化膿性病灶為主要病變特征,幼兔則以腹瀉為特征。各種年齡、品種和性別的兔均對本菌易感,但以斷奶前后仔兔以及妊娠母兔易感性最高,危害也最為嚴(yán)重[1],且不同種源的肺炎克雷伯氏菌具有種屬特異性[2]。目前常用的肺炎克雷伯氏菌檢測方法有生化鑒定、免疫學(xué)方法、分子生物學(xué)方法等。傳統(tǒng)方法檢測過程費時費力,且靈敏度較低,而常規(guī)PCR方法必須經(jīng)過變性、退火、延伸3個步驟,需要特殊的基因擴增儀器,因此亟需建立一種快速、簡便的檢測肺炎克雷伯氏菌的方法。

      重組酶聚合酶擴增技術(shù)(recombinase polymerase amplification assay,RPA)作為一種新型的快速檢測技術(shù),對儀器設(shè)備要求較低,在水浴鍋、保溫杯中即可進行反應(yīng),目前已被廣泛應(yīng)用到細(xì)菌、病毒、寄生蟲等多個領(lǐng)域的檢測[3-5]。phoE基因是肺炎克雷伯氏菌的核心基因,其保守區(qū)段可用于基因分型[6]。因此,本研究針對兔源肺炎克雷伯氏菌的phoE基因保守序列設(shè)計特異性引物,建立了適宜于快速準(zhǔn)確檢測兔源肺炎克雷伯氏菌的RPA方法,這為兔場生產(chǎn)中的肺炎克雷伯氏菌鑒定和檢測提供了一個新方向。

      1 材料與方法

      1.1 試驗菌株

      用標(biāo)準(zhǔn)菌株以及本實驗室保存菌株進行試驗(表1)。

      表1 試驗用菌株

      1.2 試劑

      TwistAmp Basic試劑盒:購自北京強欣博瑞生物科技有限公司;DL 2 000 bp DNA Marker:購自 TaKaRa 公司;酵母粉、胰蛋白胨、瓊脂粉等細(xì)菌培養(yǎng)基及其他試劑:購自生工生物工程(上海)股份有限公司。

      1.3 引物設(shè)計

      根據(jù)GenBank中已登錄的兔源肺炎克雷伯氏菌phoE基因序列(CP025636.1)設(shè)計引物,目的片段277 bp。上游引物F:5'-TTCAACAGCGACGCAGGCAGC-3';下游引物R:5'-GCCGTAGTTCTTCAGCTTC-3'。引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。

      1.4 細(xì)菌培養(yǎng)

      將表1所有菌株分別接種到4 mL LB培養(yǎng)液中,置于37 ℃恒溫箱培養(yǎng)18 h。取純培養(yǎng)菌液1 mL,備用。

      1.5 RPA檢測體系優(yōu)化

      以兔源肺炎克雷伯氏菌菌液為模板。RPA反應(yīng)體系:上、下游引物(10 pmol/μL)各 2.4 μL,Rehydration Buffer 29.5 μL、菌液 1 μL、ddH2O 12.2 μL。漩渦混勻,離心;加入2.5 μL 280 mmol/L MgAc,混勻;放入40 ℃水浴鍋內(nèi),分別反應(yīng)10、20、30、40 min;取5 μL擴增產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳分析。

      1.6 特異性和靈敏度檢驗

      根據(jù)建立的最佳反應(yīng)時間,將表1中所列菌株的LB培養(yǎng)液作為模板進行RPA反應(yīng)。取兔源肺炎克雷伯氏菌純菌液1 mL做細(xì)菌計數(shù),用PBS 10倍梯度稀釋至10-8,用RPA進行檢測,同時與常規(guī)PCR方法進行比較。

      1.7 臨床樣本檢測

      采集55份有鼻炎癥狀的兔鼻腔拭子,加入1 mL生理鹽水震蕩后取上清作為模板,采用已建立的RPA方法進行檢測,分別與傳統(tǒng)細(xì)菌分離、常規(guī)PCR方法進行比較。

      2 結(jié)果

      2.1 反應(yīng)時間優(yōu)化

      對RPA反應(yīng)時間進行優(yōu)化。優(yōu)化結(jié)果顯示,在277 bp處均有1條特異性條帶。反應(yīng)溫度為40 ℃,反應(yīng)30 min后,擴增效率無明顯變化(圖1),因此將最佳反應(yīng)時間確定為30 min。

      圖1 RPA條件優(yōu)化結(jié)果

      2.2 特異性檢驗

      試驗結(jié)果顯示,只有兔源肺炎克雷伯氏菌出現(xiàn)單一目的條帶,巴氏桿菌、波氏桿菌、大腸桿菌、金黃色葡萄球菌、鏈球菌等均為陰性(圖2)。

      2.3 靈敏性檢驗

      將肺炎克雷伯氏菌液稀釋至8.3×101CFU/mL后,RPA方法仍能檢出,而常規(guī)PCR方法的最低檢出量為8.3×103CFU/mL(圖3)。

      2.4 臨床樣本檢測

      對55份樣品進行肺炎克雷伯氏菌檢測,發(fā)現(xiàn)RPA與PCR方法的檢出率一致(表2),與細(xì)菌分離的陽性符合率均為91.67%。

      表2 55份臨床樣本檢測結(jié)果

      圖3 RPA與PCR的靈敏度比較

      3 討論

      肺炎克雷伯氏菌是引起人畜食物中毒的重要感染源,可引起小兒腹瀉甚至死亡,導(dǎo)致成人肺炎、肝膿腫、敗血癥、腦膜炎等[7-9]。動物感染可導(dǎo)致肺炎、子宮炎以及化膿性炎癥等[10-11],危害廣泛、嚴(yán)重。目前肺炎克雷伯氏菌的檢測主要依靠傳統(tǒng)檢測方法和分子生物學(xué)方法[12-13]。傳統(tǒng)方法費時費力,且靈敏度較低,而PCR方法較為快速,但需要昂貴的檢測儀器,在現(xiàn)場快速檢測方面存在一定的限制。

      Cross priming amplification(CPA)或 Loopmediated isothermal amplification(LAMP)方法需要在反應(yīng)中使用多對引物[14-15],引物設(shè)計要求較高,導(dǎo)致有些疾病的基因可能不適合使用此方法。RPA等溫檢測方法操作簡單、反應(yīng)快速,核心試劑以凍干顆粒形式保存,因而無需冷藏保存和冷鏈運輸;且因反應(yīng)時間短,可用于現(xiàn)場快速檢測和診斷[4-6]。本研究建立的兔源肺炎克雷伯氏菌RPA等溫檢測法,反應(yīng)10 min即可出現(xiàn)目的條帶,30、40 min的產(chǎn)物沒有明顯差異。由于反應(yīng)體系內(nèi)的重組酶聚合酶活性隨反應(yīng)時間延長而降低或失活,因此本試驗最終確認(rèn)30 min為最佳反應(yīng)時間。該方法的菌液最低檢出量為8.3×101CFU/mL,比傳統(tǒng)PCR高100倍。通常引起兔鼻炎或肺炎的細(xì)菌有巴氏桿菌、波氏桿菌、葡萄球菌、肺炎克雷伯氏菌、變形桿菌等。本研究結(jié)果顯示,所建立的方法特異性強,僅能檢測出兔源肺炎克雷伯氏菌,因而有利于上述細(xì)菌的鑒別診斷。有文獻(xiàn)[16]報道,RPA的陽性檢出率高于普通PCR。臨床樣品檢測結(jié)果顯示,本方法與細(xì)菌分離的陽性符合率達(dá)到91.67%。

      4 結(jié)論

      本研究建立的RPA檢測方法特異性強,只有兔源肺炎克雷伯氏菌出現(xiàn)單一目的條帶;靈敏性高,最低檢出量為8.3×101CFU/mL,高出傳統(tǒng)PCR 100倍,臨床樣品檢測結(jié)果同PCR的符合率為100%;操作簡單,不需要特殊的基因擴增設(shè)備。因此,本方法適用于基層實驗室對兔肺炎克雷伯氏菌的快速檢測,為生產(chǎn)中的兔源肺炎克雷伯氏菌現(xiàn)場快速檢測提供了一種新方法。

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