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      黃野螟中性肽鏈內(nèi)切酶基因表達的時空動態(tài)

      2019-09-10 07:22:44呂子豪王春燕林同
      江蘇農(nóng)業(yè)學(xué)報 2019年3期

      呂子豪 王春燕 林同

      摘要:從黃野螟(Heortia vitessoides Moore)轉(zhuǎn)錄組文庫中成功篩選到具有完整ORF框的黃野螟中性肽鏈內(nèi)切酶基因( NEP)序列,命名為HvNEP(登錄號:MH298329)。該序列ORF框長2 310 bp,共編碼769個氨基酸。同源比對分析結(jié)果表明,HvNEP蛋白氨基酸序列與棉鈴蟲(Helicoverpa armigera Hubner) NEP蛋白氨基酸序列的同源性最高,達79%。RT-qPCR結(jié)果顯示,HvNEP在黃野螟成蟲中表達量最高,為卵(對照)的113. 77倍。HvNEP在黃野螟不同組織間存在表達差異,幼蟲階段在頭部表達量最高,為體壁(對照)的5.28倍。成蟲階段,HvNEP在翅中表達量最高,為腹(對照)的11.06倍,在足中最低(0.11倍)。分析黃野螟NEP時空表達動態(tài)發(fā)現(xiàn),HvNEP可能與昆蟲行為的調(diào)控及神經(jīng)系統(tǒng)的完善有關(guān)。在60 ng/μl和120 ng/μl的20-羥基蛻皮激素(20E)脅迫下,HvNEP表達量均高于對照,表明HvNEP作為蛻皮激素的次級應(yīng)答基因,其表達受20-羥基蛻皮激素調(diào)節(jié)。

      關(guān)鍵詞:黃野螟;中性肽鏈內(nèi)切酶;蛻皮激素

      中圖分類號: S435.79

      文獻標(biāo)識碼:A

      文章編號: 1000-4440( 2019) 03-0573-08

      黃野螟(Heortia vitessoides)屬鱗翅目(Lepi-doptera)草螟科(Crambidae)齒螟亞科(Odonti-inae),是植物土沉香(Aquilaria sinensis)的重要食葉害蟲[1-2]。該蟲在中國南部分布廣泛,主要活動范圍在廣東省、廣西省、海南省、云南省、福建省以及中國臺灣和香港等地[1]。其幼蟲生長發(fā)育迅速,在爆發(fā)時期,蟲口密度大,食量大,短時間內(nèi)便可吃光被害樹葉片,嚴(yán)重影響土沉香的產(chǎn)量和結(jié)香質(zhì)量[3]。近年來,隨著廣東和海南等地大規(guī)模種植土沉香,黃野螟蟲害問題愈發(fā)嚴(yán)重。

      蛋白酶在多種生理系統(tǒng)中起著關(guān)鍵作用,其中M13家族的中性肽鏈內(nèi)切酶(NEP)參與神經(jīng)肽和肽激素的加工,主要由膜結(jié)合鋅蛋白酶組成[4]。NEP屬于M13鋅金屬蛋白酶家族,是一種Ⅱ型整合細胞膜糖蛋白[5],存在于多種細胞膜上。1974年,Ma等首次在兔腎小管的刷狀緣發(fā)現(xiàn)NEP[6]。2001年,Zhao等在一種無脊椎動物家蠶(Bombyx mori)中克隆出中性肽鏈內(nèi)切酶24.11 -like基因,并將其命名為bmNEP-l[7]。隨后Butler研究發(fā)現(xiàn),NEP在果蠅胸側(cè)板、背側(cè)和腹側(cè)鉸鏈中均有表達[8]。NEP與昆蟲頭部和足部的再生有關(guān)[9]。

      M13金屬蛋白酶參與調(diào)控哺乳動物的疾病,例如阿爾茨海默病[10-11]、炎癥[12]、癌癥[13]等,亦會影響生殖健康與繁殖[4,14-15]。然而,關(guān)于它們在昆蟲中的生理作用研究較少。僅有的研究結(jié)果表明,NEP作為20-羥基蛻皮激素(20 -hydroxyecdysone,20E)次級應(yīng)答基因,可能參與昆蟲變態(tài)發(fā)育[9]和翅原基的形成[7,16]。研究NEP不僅對明確昆蟲神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)育具有重要意義,而且對經(jīng)濟昆蟲的利用、農(nóng)林害蟲的控制和昆蟲生長調(diào)節(jié)劑與生物害蟲農(nóng)藥的開發(fā)具有重要指導(dǎo)價值。因此,本研究從黃野螟轉(zhuǎn)錄組文庫中篩選NEP基因,并對其進行生物信息學(xué)及時空表達分析,旨在為黃野螟NEP基因及其編碼的蛋白質(zhì)研究提供分子生物學(xué)信息。

      1 材料與方法

      1.1 試驗材料

      黃野螟幼蟲采自廣州天鹿湖森林公園,1-5齡幼蟲在培養(yǎng)箱中用土沉香葉片飼養(yǎng),老熟幼蟲移至鋪有沙土的塑料養(yǎng)蟲盒中,待其化蛹羽化。飼養(yǎng)溫度為26℃,相對濕度為70% - 75%,光照周期為光/暗= 14 h/10 h。

      總RNA提取試劑盒(E.Z.N.ATM Total RNAKitⅡ),購自O(shè)MEGA公司;反轉(zhuǎn)錄試劑盒(Pri-meScript RT reagent Kit With gDNA Eraser)及實時熒光定量試劑盒( TB Green premix Ex TaqTM),均購自TaKaRa公司。20E試劑購自上海源葉生物科技有限公司。

      1.2 試驗方法

      1.2.1 樣品處理選取40頭健康的4齡幼蟲,經(jīng)無菌水清洗后,在臘盤上解剖,獲得幼蟲的頭、體壁、脂肪體、中腸、馬氏管等樣品,立即置于無菌去酶的EP管中,經(jīng)液氮速凍后,存放在-80 ℃冰箱中備用。選取30頭健康的1日齡成蟲在臘盤上解剖,獲取成蟲的觸角、足、頭、胸、腹、翅等組織樣品,立即置于無菌去酶的凍存管中,經(jīng)液氮速凍后,存放于-80℃冰箱中備用。用二甲基亞砜( DMSO)將20-羥基蛻皮激素(20E)稀釋至10 mg/ml,存放于-20 ℃冰箱備用。用lxPBS將20E稀釋至60 ng/μl和120 ng/μ 2個質(zhì)量濃度,并分別從蟲體腹部側(cè)面注射。注射前用75%酒精擦拭蟲體,每頭注射lμl,對照注射等量稀釋的DMSO。

      1.2.2 總RNA提取及cDNA合成 按照E.Z.N.A Total RNA KitⅡ提取試劑盒說明書提取各樣品總RNA。檢測合格后,置于-80 μ冰箱中保存?zhèn)溆?。按照PrimeScript RT reagent Kit With gDNA E—raser反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書進行第一鏈cDNA合成,合成后稀釋20倍,作為實時熒光定量PCR( RT-qPCR)反應(yīng)的模板,置于-20 ℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>

      1.2.3 引物設(shè)計及基因的表達以4齡幼蟲cDNA為模版,通過普通PCR擴增目的基因及內(nèi)參基因片段。瓊脂糖凝膠電泳檢測結(jié)果顯示,條帶大小符合預(yù)期且無雜帶,并測序確認。RT-qPCR的熔解曲線只有1個信號峰,說明引物特異性高,結(jié)果可靠。用實時熒光定量PCR反應(yīng)(RT-qPCR)檢測基因的表達量,所用引物為:5’-GCTGATGGAGTCCGTGCT-GAAC-3’ 和5'-CGAGTAGAAGGCGTTGACGATGG-3',內(nèi)參基因為盧-actin,陰性對照為無菌超純水。反應(yīng)體系為:cDNA模板20.0μl,TB Green Premix ExTaq 10.0μl,上游引物0.4μl,下游引物0.4μl,ddH20 7.2μl。反應(yīng)程序為:95℃預(yù)變性5 min; 95℃解鏈10 s,60℃延伸20 s,共進行40個循環(huán)。每個樣品設(shè)置3個重復(fù)。反應(yīng)結(jié)束后,使用LightCy-cle480熒光定量PCR儀自帶的分析軟件,選擇相對定量分析模式并導(dǎo)出原始數(shù)據(jù),使用2-△△Ct相對定量法計算NEP的相對表達量,2-△△Ct即為目的基因的相對表達倍數(shù)。采用SPSS 18.0軟件進行單因素方差分析與鄧肯氏多重比較分析,采用GraphPadPrism 5繪圖。

      1.2.4 生物信息學(xué)分析 在NCBI網(wǎng)站(http://blast。st-va. ncbi. nlm. nih. gov/Blast. cgi)進行基因序列同源比對,用P rotP aram軟件分析理化性質(zhì),用Signal P 4.1(http: //www. cbs. dtu. dk/services/SignalP -4.11)進行信號肽預(yù)測,用NetNGlye軟件分析Ⅳ一糖基化修飾( http://www. cbs.dtu),用NetPhos3.1( http://www. cbs. dtu. dk/services/NetPhos/)預(yù)鋇 iJ磷酸化修飾位點,用TMpred軟件(https://embnet.vital-it. ch/cgi-bin/)進行跨膜區(qū)分析,用PSORT軟件( https://psort. hgc.j p/cgi-bin/runpsort. pl)進行亞細胞定位,用NPS在線工具(https://npsa-prabi.ibcp. fr/cgi-bin/secpred—gor4.pl)預(yù)測蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu),用SWISS-MODEL在線工具(https://www.swissmodel. expasy. org/interactive/yrSsgx/models/)進行蛋白質(zhì)高級結(jié)構(gòu)建模,用ClustalX軟件和MEGA5.0軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育進化樹(NJ法)。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 黃野螟中性肽鏈內(nèi)切酶基因序列及其編碼的蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)

      從黃野螟cDNA文庫中篩選出具有完整ORF框的中性肽鏈內(nèi)切酶基因,將其命名為HvNEP(登錄號:MH298329),序列包含2 310 bp長的ORF框,編碼769個氨基酸(圖1)。使用ProtParam軟件分析HvNEP的理化性質(zhì),結(jié)果顯示該蛋白質(zhì)的分子量為86 909.14,等電點為6.76,脂肪系數(shù)為80.59,不穩(wěn)定指數(shù)為38. 49。總平均疏水性計算結(jié)果為-0.335,推測其為親水性蛋白質(zhì)。NetPhos3.1軟件分析結(jié)果顯示HvNEP含有9個酪氨酸磷酸化位點,23個蘇氨酸磷酸化位點和42個絲氨酸磷酸化位點(得分>0.5)。NetNGlye軟件分析結(jié)果顯示HvNEP有6個糖基化位點。SignalP在線工具預(yù)測結(jié)果顯示,HvNEP無信號肽,推測其為非分泌蛋白質(zhì)。非分泌蛋白質(zhì)不存在N-糖基化位點,所以我們推測6個預(yù)測的糖基化位點只是潛在的位點。TMpred軟件分析結(jié)果表明,HvNEP為跨膜蛋白質(zhì),具有7個跨膜結(jié)構(gòu)域,其中得分大于2 000的2個重要跨膜區(qū)域中,一個是從內(nèi)向外的,位于37至56位氨基酸,另一個從外向內(nèi)的重要跨膜區(qū)域位于32至56位氨基酸。亞細胞定位預(yù)測結(jié)果顯示,HvNEP位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的可能性最大(為30.4%),其次是位于線粒體(有26.1%的可能性),位于高爾基體和細胞質(zhì)的可能性則較低(均為17.4%),位于細胞核的可能性最低(4.3%)。

      使用Sopma軟件進行蛋白質(zhì)二級結(jié)構(gòu)預(yù)測,結(jié)果顯示構(gòu)成HvNEP蛋白的主要元件為α螺旋和無規(guī)則卷曲,分別占50.20%和37.71%。此外,延伸鏈和β轉(zhuǎn)角,則各占8.58%與3.51%。使用SWISS-MODEL軟件進行蛋白質(zhì)三級結(jié)構(gòu)建模,結(jié)果顯示HvNEP基因編碼的蛋白質(zhì)主要由α螺旋與無規(guī)則卷曲組成(圖2),預(yù)測結(jié)果與Sopma軟件預(yù)測的一致。Conserved Domains軟件分析結(jié)果顯示,HvNEP屬于鋅谷氨酸蛋白超基因家族中的M13家族,包含鋅結(jié)合基序HEITH和2個重要催化基序VNAFY和GENIAD[1](圖1)。

      2.2 HvNEP序列的同源性比對及系統(tǒng)發(fā)育樹分析

      通過Blast與MEGA5.0軟件進行同源性比對,結(jié)果顯示HvNEP序列與棉鈴蟲NEP的同源性最高(79%),與煙粉虱(Bemisia Tabaci)的同源性最低(67%)(圖3)。為研究HvNEP與其他物種昆蟲間的親緣關(guān)系,基于其與鱗翅目、膜翅目、鞘翅目、半翅目等4個目中10種昆蟲的NEP蛋白氨基酸序列,采用NJ法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。結(jié)果表明,黃野螟與煙粉虱同源性最低,與棉鈴蟲處于同一分支(圖4)。

      2.3 HvNEP基因在黃野螟不同蟲態(tài)和不同組織中的表達

      由圖5可知,HvNEP在黃野螟各蟲態(tài)中均有表達,且各蟲態(tài)間差異顯著。在成蟲中表達量達到峰值,為卵的113.77倍;在3齡和4齡幼蟲時表達量最低,僅為卵的1.31倍和0.60倍。由圖6可知,HvNEP在黃野螟幼蟲各組織中均有表達,在體壁中表達量最低。在頭部表達量最高,為體壁的5.28倍;其次是馬氏管中,表達量為體壁的2.89倍。成蟲時,HvNEP在翅中表達量最高,為腹的11.06倍,其次是觸角與頭,表達量分別為腹的3.75倍與2.08倍(圖7)。為研究蛻皮激素對HvNEP表達量的影響,以等量稀釋的DMSO為對照,探討不同時間不同20E質(zhì)量濃度梯度下HvNEP的表達量差異(圖8)。在20E注射質(zhì)量濃度為60 ng/μI時,HvNEP的表達量隨時間增加而升高,但在24 h時黃野螟HvNEP基因的表達變化不明顯,在48 h和72h時HvNEP基因的表達量顯著提高;在注射質(zhì)量濃度為120 ng/μl時,HvNEP的表達量隨時間的增加先升高后降低,在48 h時表達量達到峰值,為對照的74.03倍。說明HvNEP基因的表達水平受蛻皮激素調(diào)控,且在注射質(zhì)量濃度為120 ng/μl后48 h,蛻皮激素對其表達量的影響最顯著。

      3 討論

      Neprilysin( M13)家族蛋白高度保守部分為HEITH鋅結(jié)合基序和2個重要的催化基序VNAFY和GENIAD[17]。VNAFY基序存在于各種昆蟲的M13肽酶中,影響底物對P1和P1’位置間肽鍵的取向[18-19],其結(jié)構(gòu)的變化可能會對酶性質(zhì)產(chǎn)生連鎖效應(yīng)[17];GENIAD已被證明是影響內(nèi)肽酶活性的關(guān)鍵。此基序若發(fā)生顯著變異,很可能導(dǎo)致酶活性喪失[20]。

      在昆蟲生長過程中,NEP基因參與昆蟲的變態(tài)[9]。RT-qPCR結(jié)果表明,HvNEP在黃野螟各發(fā)育階段均有表達,在1齡和2齡幼蟲期表達量較高,分別為卵的6.44倍和5.97倍。有研究結(jié)果表明,過表達Neprilysin2基因會導(dǎo)致果蠅表現(xiàn)出新的行為表型(異常攀爬行為),說明果蠅運動的改變可能是神經(jīng)肽信號遭到干擾所致[21]。同屬中性肽鏈內(nèi)切酶(M13)家族的HvNEP可能也與神經(jīng)肽信號有關(guān),并在黃野螟1齡和2齡幼蟲期發(fā)揮重要作用。HvNEP在成蟲期的表達量極為突出,為卵的113.77倍。我們推測,黃野螟羽化后存活時間較短,因此其成蟲神經(jīng)系統(tǒng)需要迅速發(fā)育,神經(jīng)肽和肽激素的合成變得旺盛,為生殖行為做好準(zhǔn)備,與之相關(guān)的HvNEP基因在此階段應(yīng)有極高的表達量。

      大多無脊椎動物存在類NEP活性物質(zhì)[22]。RT-qPCR結(jié)果表明,HvNEP基因在黃野螟幼蟲各組織中均有表達,在頭部的表達量最高,為體壁的5.28倍。腦是昆蟲的神經(jīng)中樞,調(diào)控昆蟲行為和生理活動[23]。推測HvNEP參與調(diào)控黃野螟幼蟲腦神經(jīng)發(fā)育與神經(jīng)肽酶水平[24-25]。昆蟲馬氏管不僅有助于昆蟲排泄代謝廢物和調(diào)節(jié)水鹽平衡[26],還具有免疫調(diào)控功能[27],神經(jīng)肽在昆蟲免疫過程中起一定作用[28]。本研究結(jié)果顯示HvNEP在馬氏管中表達量較高,推測其與馬氏管行使免疫功能有關(guān)。

      分析成蟲組織熒光定量結(jié)果發(fā)現(xiàn),HvNEP在成蟲觸角和頭均有較高表達,分別為腹的3.75和2.08倍。蛾類昆蟲嗅覺中樞發(fā)達,觸角內(nèi)含豐富的神經(jīng)纖維球[29],HvNEP可能參與成蟲嗅覺神經(jīng)系統(tǒng)的完善。HvNEP在成蟲翅中表達量最高,為腹的11.06倍。有研究結(jié)果表明,在蛻皮激素誘導(dǎo)下,翅原基中會形成類NEP活性物質(zhì)[16]。翅是昆蟲的飛行器官,而神經(jīng)肽信號系統(tǒng)調(diào)控昆蟲的行為[28],NEP參與神經(jīng)肽的加工[4],推測HvNEP在翅中的高表達與昆蟲行為有密切關(guān)系。

      蛻皮激素在動植物體中普遍存在,能夠誘導(dǎo)昆蟲組織細胞程序化死亡[30],20E是其在昆蟲體內(nèi)的活性形式。當(dāng)昆蟲體內(nèi)保幼激素滴度較高時,20E引起昆蟲脫皮,當(dāng)保幼激素滴度較低時,20E誘導(dǎo)昆蟲進入下一齡期或發(fā)生變態(tài)[31]。本研究對黃野螟進行了外源20E脅迫,在注射20E后24 h,黃野螟HvNEP的表達水平上升,且注射質(zhì)量濃度越高影響越明顯。當(dāng)注射質(zhì)量濃度為60 ng/μl時,HvNEP的表達量隨時間增加而上升;當(dāng)注射質(zhì)量濃度為120ng/μl時,HvNEP的表達量隨時間增加先上升后降低。此結(jié)果說明,HvNEP作為蛻皮激素的次級應(yīng)答基因,其表達受20E調(diào)節(jié)。另外,注射不同質(zhì)量濃度的蛻皮激素對HvNEP基因表達量的影響不同,在注射后72 h,120 ng/μl的外源20E對HvNEP表達的誘導(dǎo)效果不如60 ng/μl,推測較高質(zhì)量濃度的20E脅迫會激發(fā)蟲體內(nèi)的負反饋調(diào)節(jié)機制。

      本研究結(jié)果為探究昆蟲中性肽鏈內(nèi)切酶基因提供了分子依據(jù)。NEP是昆蟲生長發(fā)育中不可或缺的一員,具有成為害蟲控制劑靶標(biāo)的潛力。后期我們將基于本研究成果,運用基因編輯和RNA干擾技術(shù),更深入地研究HvNEP的功能。

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