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      4 ℃保存全血對血小板形態(tài)及功能的影響

      2019-09-25 08:54:42劉奐弟代雪霞李冬晨何思賢郭帥鋒王藏雪牛玉娜
      新鄉(xiāng)醫(yī)學院學報 2019年9期
      關鍵詞:全血室溫標本

      劉奐弟,李 莎,代雪霞,李冬晨,何思賢,郭帥鋒,王藏雪,牛玉娜

      (1.新鄉(xiāng)醫(yī)學院醫(yī)學檢驗學院,河南 新鄉(xiāng) 453003;2.河南省免疫與靶向藥物重點實驗室,河南 新鄉(xiāng) 453003;3.河南省分子診斷與醫(yī)學檢驗技術協同創(chuàng)新中心,河南 新鄉(xiāng) 453003)

      血小板數量及形態(tài)是血常規(guī)檢測的重要內容,不僅可以幫助醫(yī)生診斷血小板相關性疾病,還可以評估患者的治療效果[1]。血小板對溫度和保存時間較為敏感[2],不當的保存溫度和時間會影響血小板的形態(tài)及功能。在臨床工作中,為了避免血小板激活,不能及時檢測的全血標本均為室溫保存。然而,溫度越高,細胞的代謝會越旺盛[3],在營養(yǎng)得不到及時供給的情況下,細胞的結構和功能會發(fā)生改變。因此,室溫保存全血有可能不利于血小板形態(tài)和功能的維持。本研究將全血分別于室溫和4 ℃條件下保存,觀察血小板形態(tài)和功能的變化,旨在為臨床合理選擇全血樣本的保存溫度提供理論依據。

      1 資料與方法

      1.1 一般資料選擇30例健康志愿者為研究對象,男10例,女20例,年齡18~22(20±2)歲,入選標準:(1)出生至現在均居住于河南??;(2)無菌血癥;(3)無高脂血癥;(4)無糖尿病;(5)無感染;(6)無呼吸系統(tǒng)疾??;(7)無免疫系統(tǒng)疾??;(8)無血液系統(tǒng)疾病。本研究經新鄉(xiāng)醫(yī)學院倫理委員會審核批準,受試對象均知情并簽署知情同意書。

      1.2 主要試劑與儀器異硫氰酸熒光素(fluorescein isothiocyanate,FITC)標記的抗人CD61抗體(FITC anti-human CD61 抗體)購自美國Biolegend公司,藻紅蛋白(phycoerythrin,PE)標記的抗人CD62P抗體(PE anti-human CD62P抗體)購自美國Invitrogen公司,Sysmex KX-21血細胞分析儀配套稀釋液、溶血劑和清洗液購自日本sysmex 公司,鈣熒光探針Fluo-3AM購自北京索萊寶科技有限公司,瑞氏-姬姆薩復合染色液購自珠海貝索生物技術有限公司,無鈣鎂酚紅的磷酸鹽緩沖液(Dulbecco′s phosphate buffered saline,DPBS)購自美國Hyclone公司,二甲基亞砜(dimethyl sulphoxide,DMSO)購自德國Merck公司;含乙二胺四乙酸二鉀 (ethylenediaminetetraacetic acid dipotassium,EDTA-K2)抗凝劑的一次性真空采血管購自上??到♂t(yī)療器械有限公司,Sysmex KX-21血細胞分析儀購自日本Sysmex 公司,全波長掃描式多功能讀數儀購自美國Thermo Scientific公司,Guava easyCyte HT流式細胞儀購自美國Millipore公司,BX51/52顯微鏡購自日本Olypus公司。

      1.3 血小板形態(tài)觀察及血小板數量、體積檢測采集志愿者清晨空腹肘靜脈血 2 mL,置于含EDTA-K2抗凝劑的真空管中,立即8字顛倒混勻,充分抗凝,作為對照組微量吸管虹吸取血7~8 μL,將血液滴于載玻片一端,并制備頭體尾分明的舌形血涂片,血涂片完全干燥后,使用瑞氏-姬姆薩復合染色液染色,BX51/52顯微鏡下觀察血涂片的質量及染色情況,在血涂片的體尾交界處觀察血小板的形態(tài)、結構;同時,將其余血液標本置于SYSMEX-21血細胞分析儀,全血模式下檢測血小板數量、大血小板比例(platelet large cell ratio,P-LCR)、平均血小板體積(mean platelet volume,MPV)和血小板分布寬度(the platelet volume distribution width,PDW);然后將血液標本分為2份,其中1份4 ℃保存(4 ℃組),另1份室溫保存(室溫組),分別于保存4、8、24 h后按上述方法制作血涂片,觀察4 ℃組和室溫組血液標本中血小板的形態(tài)、結構;并使用SYSMEX-21血細胞分析儀檢測4 ℃組和室溫組血液標本的血小板數量、P-LCR、MPV和PDW。

      1.4 血小板活化表面標志物CD62P檢測采集志愿者清晨空腹肘靜脈血10 mL,置于含有EDTA-K2抗凝劑的真空管,8字顛倒混勻,分為對照組、4 ℃ 4 h組、4 ℃ 24 h組和室溫 4 h組、室溫24 h組,每組2 mL。將對照組血液標本即刻進行梯度離心,將室溫 4 h組、室溫24 h組和4 ℃ 4 h組、4 ℃ 24 h組血液標本分別于保存相應時間進行梯度離心,獲得血小板[4],DPBS洗滌3遍,40 g·L-1多聚甲醛室溫固定30 min,DPBS洗滌3遍,100 μL DPBS重新懸浮血小板,分別加入FITC anti-human CD61 抗體和PE anti-human CD62P抗體,室溫孵育30 min,DPBS洗滌3遍,300 μL DPBS重新懸浮血小板,100目細胞過濾器過濾,將細胞懸液接種到96孔板中,Guava easyCyte HT流式細胞儀檢測,觀察血小板的絕對計數和熒光強度(arbitary unit,AU),計算血小板的平均熒光強度[12-18]。

      1.5 血小板內Ca2+水平檢測采集志愿者清晨空腹肘靜脈血10 mL,置于含有EDTA-K2抗凝劑的真空管,8字顛倒混勻,分為對照組、4 ℃ 4 h組、4 ℃ 24 h 組和室溫 4 h組、室溫24 h組,每組 2 mL。將對照組血液標本即刻進行梯度離心,將室溫 4 h組、室溫24 h組組和4 ℃ 4 h組、4 ℃ 24 h血液標本分別于保存相應時間進行梯度離心,獲得血小板[4],并進行計數,將血小板濃度調整為10×109L-1。用含有5 μmol·L-1Fluo-3 AM的DMSO溶液和細胞一起在室溫下孵育30 min進行熒光探針裝載,DPBS洗滌3遍,100 μL DPBS重新懸浮血小板,將細胞懸液接種到96孔板中,在激發(fā)波長為488 nm的條件下使用全波長掃描式多功能讀數儀檢測樣本的熒光強度[5]。

      2 結果

      2.1 各組血液標本血小板形態(tài)變化結果見圖1。與對照組相比較,隨著血液標本保存時間延長,4 ℃組血小板體積稍增大,24 h時大血小板比例明顯增多(圖1A、圖1B、圖1C、圖1D),室溫組血小板體積明顯增大,并出現空泡現象(圖1E、圖1F、圖1G)。全血保存4 h時,室溫組大血小板明顯增多,血小板結構較疏松(圖1B、圖1E);全血保存8 h時,室溫組大血小板明顯增多,血小板結構較疏松并出現空泡現象(圖1C、圖1F);全血保存24 h時,室溫組畸形血小板明顯增多,血小板結構較疏松,空泡現象更加明顯(圖1D、圖1G)。

      A:對照組;B:4 ℃組保存4 h;C:4 ℃組保存8 h;D:4 ℃組保存24 h;E:室溫組保存4 h;F:室溫組保存8 h;G:室溫組保存24 h。

      2.2 各組血液標本血小板數量、P-LCR、MPV和PDW比較結果見表1。對照組及室溫和4 ℃組保存4、8、24 h組各組之間的血小板數量兩兩比較差異均無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。與對照組比較,室溫組和4 ℃組血液標本保存4、8、24 h的P-LCR、MPV、PDW均顯著增加,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。室溫組血標本保存4、8、24 h的P-LCR、MPV和PDW兩兩比較差異均無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。4 ℃ 組血標本保存8、24 h的P-LCR和MPV與4 h時比較顯著增大,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05);4 ℃ 組血液標本保存24 h的P-LCR和MPV與8 h時比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。4 ℃組血標本保存4、8 h的PDW比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05),保存24 h的PDW與4、8 h時比較顯著增大,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。4 ℃組保存4、8 h 的P-LCR、MPV和PDW與室溫組比較顯著降低,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05);4 ℃組與室溫組保存24 h的P-LCR、MPV和PDW比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。

      表1 各組血液標本血小板數量、P-LCR、MPV及PDW比較

      注:與對照組比較aP<0.05;與室溫組比較bP<0.05;與4 h比較cP<0.05;與8 h比較dP<0.05。

      2.3 各組血液標本血小板表面活化標志物CD62P表達水平比較對照組、室溫組保存4、24 h時及 4 ℃ 組保存4、24 h時血小板表面CD62P表達水平分別為(65.57±2.86)、(84.36±2.69)、(85.79±3.11)、(77.18±3.22)、(83.8±2.12)AU。與對照組比較,室溫組保存4、24 h及4 ℃組保存4、24 h的血小板表面CD62P表達水平均顯著升高,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。與室溫組同時間點比較,4 ℃ 組保存4、24 h的血小板表面CD62P表達水平均顯著降低,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。室溫組保存24 h的血小板表面CD62P表達水平與4 h時比較差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05)。4 ℃組保存24 h的血小板表面CD62P表達水平與4 h時比較顯著升高,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。

      2.4 各組血小板內Ca2+水平比較對照組、室溫組保存4、24 h時及4 ℃組保存4、24 h時血小板內Ca2+水平分別為(539.25±130.39)、(714.00±81.70)、(963.25±58.25)、(535.75±98.87)、(605.00±220.40)AU。與對照組比較,室溫組保存4、24 h血小板內Ca2+水平顯著升高,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。對照組及4 ℃組保存4、24 h的血小板內Ca2+水平兩兩比較均無顯著差異(P>0.05)。與室溫組同時間點比較,4 ℃組保存4、24 h的血小板內Ca2+水平顯著降低,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。室溫組保存24 h的血小板內Ca2+水平與4 h比較顯著升高,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。

      3 討論

      血小板是巨核細胞脫落的細胞質顆粒[6],在機體凝血、腫瘤發(fā)生和免疫過程中發(fā)揮著重要作用[7-9]。準確檢測血小板的數量、體積、形態(tài)和功能不僅可以幫助醫(yī)生診斷和鑒別疾病,還可以促進科學研究的發(fā)展。目前臨床上不能及時檢測的血液標本均為室溫保存,有可能不利于血小板形態(tài)和功能的維持。因此,有研究探討4 ℃條件下保存血液對血小板形態(tài)和功能的影響,旨在為臨床合理選擇血液樣本保存方法提供參考。

      龔慶輝等[10]研究顯示,室溫保存血液2 h,血小板的P-LCR、MPV和PDW已經發(fā)生顯著變化;而 4 ℃ 保存24 h,可以觀察到血小板的P-LCR、MPV和PDW發(fā)生顯著變化。在該研究中,4 ℃保存組的樣本進行血常規(guī)檢測前,需要提前取出并使其恢復至室溫,這個過程可能導致4 ℃保存組的血小板受到影響,發(fā)生顯著變化;并且4 ℃保存組與室溫保存組標本檢測時間點不一致,4 ℃保存組未對保存2~8 h的血液進行檢測,導致無法確定4 ℃保存組標本P-LCR、MPV和PDW發(fā)生變化的時間點。李清澤等[11]研究發(fā)現,4 ℃保存血液3 h,血小板MPV即發(fā)生顯著變化;室溫保存血液4 h,血小板的MPV才發(fā)生顯著變化;在該研究中,盡管4 ℃保存組與室溫保存組檢測時間點一致,但4 ℃條件下存放的標本在測定前也均恢復至室溫。因此,4 ℃保存組的檢測結果同樣無法排除室溫的影響。

      在本研究中,為了排除室溫對4 ℃保存組檢測結果的影響,進行相關檢測前對4 ℃組標本不進行室溫復溫處理;同時,為了明確血小板功能是否受全血保存溫度影響,本研究根據相關文獻[5,12-18]的檢測方法對血小板活化和Ca2+釋放功能進行了研究。本研究結果顯示:(1)對照組、室溫和4 ℃組保存4、8、24 h組各組之間的血小板數量兩兩比較差異均無統(tǒng)計學意義,提示不同溫度和保存時間對血小板數量無顯著影響;(2)隨著保存時間的延長,4 ℃組和室溫組血小板體積均增大,且室溫組血小板體積增加更加明顯,并出現空泡現象,血小板結構較疏松;隨著保存時間的延長,與對照組比較,4 ℃組和室溫組P-LCR、MPV和PDW均顯著增大,血小板表面CD62P表達水平顯著升高。與對照組比較,室溫組4和24 h的血小板內Ca2+水平均顯著升高,4 ℃組4和24 h的血小板內Ca2+水平無顯著變化。同時,4 ℃組24 h時血小板表面CD62P表達水平與 4 h 時比較顯著升高,室溫組24 h時血小板內Ca2+水平與 4 h 時比較顯著升高;提示在4 ℃和室溫保存狀態(tài)下,隨著保存時間的延長,會對血小板形態(tài)和功能造成一定的影響;(3)室溫組保存4、8、24 h的P-LCR、MPV和PDW兩兩比較差異均無統(tǒng)計學意義;4 ℃組保存4、8 h的P-LCR、MPV和PDW與室溫組比較顯著降低,4 ℃組與室溫組保存24 h的P-LCR、MPV和PDW比較差異無統(tǒng)計學意義;而4 ℃組保存8、24 h的P-LCR、MPV與4 h時比較顯著增大,保存24 h的PDW與4、8 h時比較顯著增大;提示血小板對保存溫度比較敏感,室溫保存4 h以后即會對血小板P-LCR、MPV和PDW造成較大的影響,而在一定時間內,4 ℃保存對血小板的影響低于較室溫保存。

      綜上所述,全血標本4 ℃保存并在4 h內完成檢測,可以最大限度維持血小板原始狀態(tài),提高血小板檢測相關指標的準確性。

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