花 莉,楊春燕,吳 川,李軍軍
(1.陜西科技大學(xué) 環(huán)境科學(xué)與工程學(xué)院,陜西 西安 710021;2.河南省欒川縣自然資源局,河南 欒川 471500)
銻(Sb)位于元素周期表第五周期第ⅤA族,Sb在自然條件下以較低的濃度廣泛分布于水體以及土壤.近幾年銻的工業(yè)用量不斷上升,導(dǎo)致了銻向人類生活環(huán)境不斷擴(kuò)散[1].銻及其化合物在1979年就已經(jīng)被國際環(huán)境保護(hù)組織列為重要污染物,并被美國環(huán)境保護(hù)局列為優(yōu)先控制污染物[2].根據(jù)世界健康組織的規(guī)定,飲用水中的銻濃度不得超過5μg/L[3].我國《重金屬污染綜合防治“十二五”規(guī)劃》中把銻列為主要控制污染物之一,根據(jù)我國《錫、銻、汞工業(yè)污染物排放標(biāo)準(zhǔn)》(GB30770-2014)規(guī)定,銻在工業(yè)排污過程中不得超過1.0 mg/L[4].
銻在自然界中的存在形式以輝銻礦(Sb2S3)為主,常見價(jià)態(tài)為Sb(Ⅲ)和Sb(Ⅴ),Sb(Ⅲ)毒性害高于Sb(Ⅴ).有研究報(bào)道,Sb(Ⅲ)毒性是Sb(Ⅴ)毒性的十倍[5].Paul Westerhoff等[6]和Maher[7]研究發(fā)現(xiàn),水體中的銻同時(shí)具有急性與慢性毒理效應(yīng),短時(shí)間接觸會(huì)造成人體惡心,嘔吐等癥狀,長(zhǎng)期接觸可能會(huì)引起人體的角膜炎、結(jié)膜炎和胃炎等病癥.我國銻礦儲(chǔ)量位居世界第一,銻產(chǎn)量約占世界總量的79.6%[8].在中國湖南冷水江,因?yàn)殇R礦分布較多,被稱為世界銻都,此外,在貴州和廣西等省份也有比較集中的銻礦分布[9].近年來由于人類對(duì)銻礦的開采,冶煉以及運(yùn)輸也對(duì)當(dāng)?shù)卦斐闪虽R污染[10],嚴(yán)重影響了當(dāng)?shù)氐耐寥拉h(huán)境.
目前,Sb污染土壤的修復(fù)方法包括生物氧化、植物修復(fù)、生物修復(fù)和吸附等.研究發(fā)現(xiàn),自然界中存在部分植物,原生生物,藻類以及微生物可以通過自身作用氧化Sb(Ⅲ),污染地區(qū)的Sb(Ⅲ)可以通過銻氧化細(xì)菌轉(zhuǎn)化為毒性較小的Sb(Ⅴ),從而達(dá)到對(duì)銻的解毒,減輕銻對(duì)周圍動(dòng)植物的毒害作用,改善周圍動(dòng)植物的生存條件[11].Lialikova[12]首次報(bào)道了一株銻氧化細(xì)菌,該菌株能夠把 Sb(Ⅲ)氧化成 Sb(Ⅴ),并為自身提供能量.微生物的氧化作用被認(rèn)為是一種銻污染環(huán)境潛在的修復(fù)方法.這些微生物在整個(gè)銻的地球循環(huán)過程中發(fā)揮著重要作用.近年來,對(duì)Sb(Ⅲ)氧化菌的發(fā)現(xiàn)已有報(bào)道,Li等[13]從錫礦山分離得到了 6 株具有Sb(Ⅲ)氧化能力的菌,這些菌株表現(xiàn)出不同的Sb(Ⅲ)氧化能力.Hamamura等[14]從日本銻礦區(qū)分離到了 3 株具有Sb(Ⅲ)氧化能力的菌株,經(jīng)過鑒定屬于α-和γ-變形菌門.然而,由于對(duì)于銻氧化微生物的研究開展得相對(duì)較晚,目前報(bào)道的銻氧化微生物的種類相對(duì)較少.微生物對(duì)于銻的代謝機(jī)制具有一定的多樣性.截止目前,完整的銻氧化酶系統(tǒng)還沒有被鑒定得到.為了盡快開展對(duì)銻氧化酶的深入探索,急需從不同銻污染樣品中分離純化得到多株高效銻氧化菌,以全面揭示銻氧化微生物的氧化機(jī)制,從而利用微生物修復(fù)銻污染土壤.
基于此,本研究采用湖南銻礦區(qū)的銻污染土壤,為分離更多種不同的銻氧化菌,并探究這些銻氧化菌氧化效率和最佳生長(zhǎng)條件,為完善銻氧化酶系統(tǒng)以及利用微生物修復(fù)銻污染土壤技術(shù)的推廣應(yīng)用提供更多的理論依據(jù).
銻污染土壤取自于湖南冷水江銻礦區(qū)(27 °43′08.60″N,111 °27′08.66″E),采用無菌袋密封運(yùn)輸,在實(shí)驗(yàn)室內(nèi)風(fēng)干并剔除植物殘?bào)w以及其他雜物,研磨并過2 mm篩使用.土壤的pH/Eh采用1∶10土水比,pH計(jì)(Sartorius pH 10,中國)測(cè)定;電導(dǎo)率(EC)采用1∶5土水比,電導(dǎo)儀(YP220,中國)測(cè)[15].土壤的陽離子交換量(CEC)的測(cè)定方法參考(NIAST,2000)[16],有效磷(P)含量的測(cè)定采用國標(biāo)法NY/T 1121.7-2014.土壤Sb、As、Pb、Zn、Cu總含量采用濃硝酸-氫氟酸電熱板消解法,將Guo等[17]的測(cè)定方法改進(jìn),具體方法:稱取0.25 g土樣于加消解管中,加入10 mL濃硝酸,4 mL氫氟酸泡酸過夜,于電熱消解儀(DigiBlock ED54,LabTech)中120 ℃下消解1 h,150 ℃消解2 h(該過程中間斷搖勻消解管),175 ℃趕酸至1 mL,冷卻后用1%的硝酸沖洗,轉(zhuǎn)移并定容,用0.45μm的濾膜過濾后,采用電感耦合等離子體發(fā)射光譜儀(ICP-OES,ICAP6000 Radial,Thermo,英國)測(cè)定土壤中重金屬總含量.
土壤的理化性質(zhì)如表1所示.供試土壤中銻含量高達(dá)220.97 mg·kg-1,已達(dá)到重度污染級(jí)別.
表1 銻污染土壤基本理化性質(zhì)
用于細(xì)菌分離的培養(yǎng)基CDM[18](MgSO4·7H2O,2.0 g;NH4Cl,1.0 g;Na2SO4,1.0 g;K2HPO4,0.013 g;CaCl2·2H2O,0.067 g;Na-lactate,5.0 g;瓊脂,15.0 g;蒸餾水1 000 mL;pH7.2),其中酒石酸銻鉀([C8H4K2O12Sb2·3(H2O)])最終濃度為100μmol·L-1,培養(yǎng)基經(jīng)過1×105Pa 滅菌20 min后,用于分離耐銻細(xì)菌.
具體分離方法:取1 g孵化的土壤到9 mL 0.85%的NaCl 溶液中,30 ℃,180 r·min-1,震蕩30 min,采用連續(xù)稀釋的方法在CDM-A固體培養(yǎng)基涂布培養(yǎng)1周,挑取單菌落劃線純化培養(yǎng)1周,分離出耐銻的純菌株.對(duì)于耐銻菌株的銻氧化性鑒定,挑取純化后的單菌株在無菌條件下接種到裝有10 mL已滅菌的CDM-A液體培養(yǎng)基的試管中,在30 ℃,180 r·min-1條件下連續(xù)震蕩培養(yǎng)10 d,10 d后取9 mL菌液用0.22μm水系濾膜過濾細(xì)菌后,加入1mL 1% APDC溶液(吡咯烷二硫代氨基甲銨),搖勻,震蕩10 min后,濾過C-18固相萃取小柱.由于APDC與Sb(Ⅲ)生成絡(luò)合物,無法通過萃取小柱,被氧化的Sb(Ⅴ)無法與APDC絡(luò)合,可以通過萃取小柱.以不加菌的培養(yǎng)基作為空白對(duì)照,因此用ICP-OES測(cè)定濾液中Sb的含量,該含量與空白的差值即為被氧化的Sb(Ⅲ)含量,即生成的Sb(Ⅴ)的量[1].
將分離的純菌株在LB培養(yǎng)基中培養(yǎng)之后進(jìn)行16sPCR擴(kuò)增,16s引物序列為:27F(5-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3)and 1492R(5-GGTTACCTTGTTACGACTT-3),擴(kuò)增產(chǎn)物送至上海生物工程有限公司測(cè)序進(jìn)行菌種鑒定[13].
取液體或固體培養(yǎng)基中培養(yǎng)20 h左右、旺盛生長(zhǎng)的菌體.
(1)收集菌體:①液體培養(yǎng)基中的菌體,取10 mL培養(yǎng)液8 000 rpm離心3~5 min,棄上清液,倒入2.5%戊二醛固定液;②固體培養(yǎng)基上的菌體,在菌落表面滴幾滴戊二醛固定液,輕刮菌落.將菌液吸入離心管,離心后換入新鮮戊二醛固定.
(2)固定、脫水,按常規(guī)方法進(jìn)行:2.5%戊二醛,磷酸緩沖液清洗3次-乙醇梯度脫水,30%,50%,70%,85%,95%各一次,100%乙醇2次,15~20 min/次-乙酸異戊酯置換2次,20 min/次.將樣品進(jìn)行冷凍干燥處理.干燥后的樣品進(jìn)行離子濺射儀噴鍍后,透射電子顯微鏡(美國FEI,F(xiàn)EI Tecnai G2 F20 S-TWIN)觀察、拍照[19,20].
將具有氧化性的單菌落挑在100 mL LB液體培養(yǎng)基中,28 ℃,180 r·min-1振蕩培養(yǎng)至對(duì)數(shù)期,將菌液在6 000 g下離心5 min后用PBS溶液洗滌兩次,將OD600調(diào)到1.取1 mL菌液接種到200 mL的CDM-A培養(yǎng)基中,28 ℃,180 r·min-1振蕩培養(yǎng)10 d,前24 h每隔2 h取一次樣,隨后每隔12 h取一次樣測(cè)OD值(用96孔板測(cè),每個(gè)樣只需要200 uL),同時(shí)每2 d取樣采用1.2中氧化性鑒定的方法測(cè)定生成的Sb(Ⅴ)濃度(每次需要取10 mL).試驗(yàn)均設(shè)置三個(gè)平行.
根據(jù)氧化效率結(jié)果,選擇氧化效率最強(qiáng)的菌株,采用正交試驗(yàn)考察溫度,pH,鹽度以及銻濃度對(duì)該菌株生長(zhǎng)的影響并研究其最佳生長(zhǎng)條件.用于試驗(yàn)的CDM-A培養(yǎng)基除銻含量以及鹽分濃度變化外,其余各組分保持一致,并按照正交試驗(yàn)安排調(diào)整培養(yǎng)基pH.將具有氧化性的單菌落先挑在100 mL LB液體培養(yǎng)基中,28 ℃,180 r·min-1振蕩培養(yǎng)至對(duì)數(shù)期(OD600=0.4~0.5左右),將菌液在6 000 g下離心5 min后用PBS溶液洗滌兩次,將OD600調(diào)到1.取1 mL菌液接種到50 mL的CDM-A培養(yǎng)基中,按照正交試驗(yàn)安排調(diào)整試驗(yàn)溫度,在180 r·min-1振蕩培養(yǎng)24 h后測(cè)定OD值.試驗(yàn)均設(shè)置三個(gè)平行,同時(shí)做不加菌的空白[21-23].
本研究從銻污染土壤中分離了8株耐銻細(xì)菌,對(duì)8株細(xì)菌進(jìn)行氧化性鑒定,結(jié)果如圖1所示.8株耐銻細(xì)菌均表現(xiàn)出一定的氧化能力,且ZH1、ZH2、ZH3、ZH4、ZH6表現(xiàn)出了較強(qiáng)的氧化能力,ZH4的氧化能力顯著較高(p<0.01).在自然界中,銻的氧化是一個(gè)極其緩慢的過程[24],而在微生物的作用下,銻的氧化速率明顯提高[25].此類微生物的存在,有利于促進(jìn)銻從低價(jià)態(tài)往高價(jià)態(tài)轉(zhuǎn)變,從而降低其環(huán)境風(fēng)險(xiǎn).
圖1 耐銻細(xì)菌銻氧化性能力測(cè)定
對(duì)Sb礦區(qū)土壤進(jìn)行Sb氧化菌的分離篩選,從Sb濃度為200 umol·L-1的CDM-A培養(yǎng)基中分離篩選出8株耐Sb的細(xì)菌.對(duì)菌進(jìn)行氧化性鑒定之后發(fā)現(xiàn)有6株具有氧化性.菌株ZH1(如圖2所示)屬于假單胞菌屬,該菌株為桿狀,菌落呈乳白色,圓形,表面凸起.菌株ZH2屬于假單胞菌屬,該菌株為球狀,菌落不規(guī)則形狀,皺紋,干燥.ZH3為不動(dòng)桿菌屬,該菌株為桿狀,菌落為圓形,邊緣濕潤,黃色.ZH4為假單胞菌屬,該菌株球狀,表面有褶皺,菌落較干燥,貼合培養(yǎng)基不易脫落,淡黃色.ZH6為貪銅菌屬,該菌株為桿狀,菌落呈圓形,光滑,濕潤.其中前四株菌的基因測(cè)序序列上傳NCBI數(shù)據(jù)庫并獲取ACCESSION No.分別為SUB5682247 ZH1 MK990007,SUB5682247 ZH2 MK990008,SUB5682247 ZH3 MK990009,SUB5682247 ZH4 MK990010.
(a)菌株ZH1 (b)菌株ZH2
(c)菌株ZH3 (d)菌株ZH4
(e)菌株ZH6圖2 氧化菌株的電鏡照片
將分離的耐銻細(xì)菌的16s rRNA基因序列經(jīng)過BLAST比對(duì)發(fā)現(xiàn),分離的菌株與已發(fā)表的模式菌株的相似度達(dá)99%~100%.菌株ZH1,ZH2,ZH4,ZH5屬于假單胞菌屬(Pseudomonas)(最大相似度99%~100%),菌株ZH3,ZH7,ZH8屬于不動(dòng)桿菌屬(Acinetobacter)(最大相似度99%~100%),菌株ZH6屬于貪銅菌屬(Cupriavidus)(最大相似度100%)(如圖3所示).因此該土壤中銻氧化菌主要是假單胞菌屬(P-seudomonas)和不動(dòng)桿菌屬(Acinetobacter).這與Shi等[11]的研究結(jié)果一致.Shi 等從中國采集了11種不同的礦物樣品(富含Sb/Cu等),分離得到了100多株耐銻和耐銅菌,其中36株具有Sb(Ⅲ)氧化能力,這些菌株主要來自于假單胞菌屬(Pseudomonas)、叢毛單胞菌屬(Comamonas)和不動(dòng)桿菌屬(A-cinetobacter).
圖3 基于16S rRNA基因序列Neighbor-Joining法構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹
選擇氧化能力較強(qiáng)的ZH1、ZH2、ZH3、ZH4、ZH6進(jìn)行氧化效率及生長(zhǎng)測(cè)定.5株銻氧化菌的氧化效率如圖4(a)~(e)所示,5株菌均表現(xiàn)出良好的三價(jià)銻氧化能力,其中ZH1、ZH2和ZH6號(hào)菌在培養(yǎng)的第10天能氧化超過60%的三價(jià)銻,ZH3號(hào)菌在培養(yǎng)的第10天氧化超過70%的三價(jià)銻,而ZH4號(hào)菌能在培養(yǎng)的第10天氧化培養(yǎng)基中95%的三價(jià)銻.這與Nguyen V K等[1]的研究結(jié)果相似.Van等共分離出8株銻氧化菌,培養(yǎng)基所含三價(jià)銻濃度為100μmol·L-1,8株菌的氧化性在35.8%以上,其中氧化效率最高的菌Cupriavidus sp.NL4在21天內(nèi)可氧化掉98.7%的銻.此外,在Li等[13]分離得到的銻氧化菌中,Comamonas spp.S44和JL40,能在3~5天后氧化50 mmol·L-1Sb(Ⅲ).
由此可知,相比于已有的研究分離的銻氧化菌,本研究中所分離出來的幾種銻氧化菌均可在10 d內(nèi)達(dá)到60%甚至95%的氧化能力.此外本研究分離菌所用土壤,除了銻濃度較高之外,Pb、Zn、Cu的含量也嚴(yán)重超標(biāo)(表1),說明這些菌株在復(fù)合重金屬污染土壤中的耐受性較強(qiáng),其應(yīng)用范圍更加廣泛.
(a)菌株ZH1
(b)菌株ZH2
(c)菌株ZH3
(d)菌株ZH4
(e)菌株ZH6圖4 不同銻氧化菌氧化曲線和生長(zhǎng)曲線(圖中紅線代表三價(jià)銻氧化曲線;黑線代表生長(zhǎng)曲線)
5株菌生長(zhǎng)曲線結(jié)果顯示,不同菌株達(dá)到對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期所用的時(shí)間不同.ZH1、ZH2生長(zhǎng)到96 h左右OD600分別達(dá)到0.5 mg/L,0.54 mg/L.ZH3、ZH4在72 h左右OD600分別達(dá)到0.58 mg/L,0.53 mg/L.ZH6在36 h左右OD600達(dá)到0.54 mg/L.在實(shí)際的銻氧化菌運(yùn)用中,應(yīng)明確不同銻氧化菌生長(zhǎng)周期,使得其在生長(zhǎng)對(duì)數(shù)期發(fā)揮最大的氧化效率.
選擇氧化性最強(qiáng)的ZH4進(jìn)行最佳生長(zhǎng)條件的測(cè)定,采用正交試驗(yàn)考察溫度、pH、銻濃度以及鹽度對(duì)ZH4生長(zhǎng)的影響.正交試驗(yàn)結(jié)果如表2所示.由極差分析,可以得出主要因子為鹽度以及溫度,次要因子為銻濃度和pH;最佳水平組合為A3B2C2D1,即ZH4在溫度為28 ℃,pH為5.2,銻濃度為50μmol·L-1,鹽度為1%條件下生長(zhǎng),其OD600達(dá)到最高,說明該條件適合該菌株的生長(zhǎng),通過Design-Expert 8.06 Trial 對(duì)因子數(shù)據(jù)進(jìn)行進(jìn)一步分析,得到該菌株菌體個(gè)數(shù)和生長(zhǎng)條件的函數(shù)公式如下:
OD600=
0.118 91-0.136 19*A+0.074 801*B+
6.112 91×10-4*C+0.143 9*D
(1)
式(1)中:A代表溫度,B代表pH,C代表銻濃度,D代表鹽度.
該條件適合該菌株的生長(zhǎng),但其他條件下的氧化效率,還有待進(jìn)一步的實(shí)驗(yàn)研究.劉成佐等[26]發(fā)現(xiàn),從銻礦區(qū)受污染的土壤中篩選的菌株對(duì)堿性環(huán)境最為敏感,適宜生長(zhǎng)的pH在6.5左右.其次是溫度,適宜溫度為25 ℃左右.適宜的培養(yǎng)基銻質(zhì)量濃度為300μg·mL-1,銻質(zhì)量濃度過高會(huì)對(duì)菌株有一定抑制作用;聶孝紅等[27]的研究中4株細(xì)菌的生長(zhǎng)對(duì)pH和滲透壓變化的響應(yīng)也存在差異,不同的菌株對(duì)pH和滲透壓條件要求不同.
表2 正交試驗(yàn)表 L16(45)
本研究從銻礦區(qū)土壤中分離篩選出8株耐銻菌,其中有5株菌均表現(xiàn)出了較強(qiáng)的氧化能力,分離的銻氧化菌主要屬于假單胞菌屬(Pseudomonas)和不動(dòng)桿菌屬(Acinetobacter),不同的銻氧化菌其形態(tài)存在差異.其中ZH4的氧化性最強(qiáng),ZH3、ZH4、ZH6的氧化效率較高,且不同的菌株表現(xiàn)出不同的生長(zhǎng)特性,且在常規(guī)的自然條件下便能很好的繁殖,為微生物修復(fù)銻污染提供了良好的菌種資源,可以作為較好的試驗(yàn)材料應(yīng)用于生物修復(fù)Sb污染土壤的研究.