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      精神分裂癥易感基因GNA13功能的初步分析☆

      2019-11-15 08:05:40羅藝蘋劉可智喻明蘭梁雪梅張濤向波
      關(guān)鍵詞:精神分裂癥神經(jīng)元測(cè)序

      羅藝蘋 劉可智 喻明蘭 梁雪梅 張濤 向波

      精神分裂癥是高遺傳度的多基因神經(jīng)精神疾病[1-2]。多項(xiàng)全基因組關(guān)聯(lián)研究(genome-wide association study,GWAS)發(fā)現(xiàn) G蛋白 α亞基 13(GNA13)基因與精神分裂癥存在關(guān)聯(lián)[3-4]。分析精神分裂癥患者前額皮質(zhì)的DNA甲基化數(shù)據(jù),發(fā)現(xiàn)DNA甲基化發(fā)生改變區(qū)域與精神分裂癥遺傳風(fēng)險(xiǎn)區(qū)域相重疊[5];構(gòu)建精神分裂癥特異性甲基化網(wǎng)絡(luò)(schizophrenic differential methylation network,SDMN)發(fā)現(xiàn)GNA13基因是精神分裂癥特異性甲基化基因中主要的高甲基化基因[6]。另有研究發(fā)現(xiàn)精神分裂癥患者大腦前額皮質(zhì)中的GNA13基因表達(dá)減少,同時(shí)GNA13-ERK1-eIF4G2-CYFIP1信號(hào)傳導(dǎo)網(wǎng)絡(luò)出現(xiàn)下調(diào)[7],而該信號(hào)傳導(dǎo)網(wǎng)絡(luò)則主要參與神經(jīng)元的突觸發(fā)育和功能形成,以及大腦功能連接,可能與精神分裂癥認(rèn)知功能障礙相關(guān)[8-10]。因此,GNA13基因既是影響精神分裂癥發(fā)生發(fā)展中多基因聯(lián)合效應(yīng)的易感基因[11],也是精神分裂癥患者腦組織中發(fā)生特異性高甲基化的主要基因。基于此,推測(cè)GNA13基因異??赡苡绊懮窠?jīng)細(xì)胞形態(tài)和突觸可塑性,從而導(dǎo)致精神分裂癥的發(fā)生。本研究采用動(dòng)物細(xì)胞體外實(shí)驗(yàn),以慢病毒轉(zhuǎn)染的方式敲低原代神經(jīng)元細(xì)胞的Gna13基因,通過基因表達(dá)差異性分析,初步探索其功能。

      1 材料與方法

      1.1 實(shí)驗(yàn)對(duì)象由北京華阜康生物科技股份有限公司提供C57BL6N野生型懷孕小鼠10只,經(jīng)過適應(yīng)性飼養(yǎng)1周后,將出生后24 h內(nèi)的幼鼠處死,取其大腦皮層組織進(jìn)行原代神經(jīng)元培養(yǎng)。本研究動(dòng)物的使用等所有操作已通過西南醫(yī)科大學(xué)動(dòng)物倫理委員會(huì)批準(zhǔn)。

      1.2 研究方法

      1.2.1 原代神經(jīng)元培養(yǎng)與慢病毒感染 參考并在BEAUDOIN等[12]的培養(yǎng)方案上,改用木瓜蛋白酶代替胰蛋白酶將出生24 h之內(nèi)幼鼠的大腦皮層組織制備成單細(xì)胞懸液,接種在24孔板上,進(jìn)行原代神經(jīng)元細(xì)胞培養(yǎng)。在離體的第3天,用干擾Gna13基因的重組慢病毒載體Y1645(和元生物技術(shù)股份有限公司,上海)感染實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞,空載的慢病毒載體Y007(和元生物技術(shù)股份有限公司,上海)感染空載對(duì)照組細(xì)胞,對(duì)照組細(xì)胞不做任何干預(yù)。將上述細(xì)胞在同等實(shí)驗(yàn)條件下繼續(xù)培養(yǎng),病毒的感染復(fù)數(shù)為10。在感染72 h后,將所有細(xì)胞分成3份分別做蛋白表達(dá)分析、mRNA表達(dá)分析、高通量測(cè)序。

      1.2.2Gna13基因的mRNA表達(dá)水平分析 使用TRIzol Reagent(Thermo Fisher Scientific,美國(guó))提取所有細(xì)胞中的RNA。用HifairTMIII 1stStrand cDNA合成試劑盒 (翊圣生物科技有限公司,上海)逆轉(zhuǎn)錄得到總計(jì)2 μg的RNA。使用10 ng RNA的HieffTMqPCRSYBR?Green Master Mix(Low Rox Plus)(翊圣生物科技有限公司,上海)在25 μL反應(yīng)混合物中進(jìn)行實(shí)時(shí)定量PCR(quantitative real-time PCR,qRT-PCR)檢測(cè)。反應(yīng)條件:95℃預(yù)變性5 min;95℃變性 10 s,58℃退火 20 s,72℃退火20 s,40個(gè)循環(huán)。產(chǎn)物使用熒光信號(hào)檢測(cè)。

      1.2.3Gna13基因蛋白表達(dá)水平分析 用RIPA裂解緩沖液(碧云天生物技術(shù)有限公司,上海)裂解細(xì)胞后,獲取蛋白質(zhì),用BCA蛋白質(zhì)分析試劑盒(Thermo Fisher Scientific,美國(guó))檢測(cè)其濃度。通過分離、轉(zhuǎn)膜,將蛋白質(zhì)在5%脫脂乳的TBS-Tween(TBS-T,50 mmol/L Tris (pH 7.6),150 mmol/L NaCl,0.1%Tween-20)中封膜。然后將膜與一抗兔抗 GNA13 抗體(Rb anti-GNA13 antibody)(目錄號(hào)OM161046;稀釋度 1:500;Omni.Abs,美國(guó))孵育,4℃過夜。用TBST洗滌3次,與氧化物酶標(biāo)記的生物素二抗 (biotinylated secondary antibodies)(目錄號(hào)711-005-152;稀釋度1:4000;目錄號(hào) 715-005-150; 稀釋度 1:6000;Jackson Immuno Research,美國(guó))和鼠抗β-肌動(dòng)蛋白抗體(Ms anti-β-actin antibody)(目錄號(hào) ab8226; 稀釋度 1:10000;Abcam,美國(guó))在室溫下孵育1 h。使用β-肌動(dòng)蛋白作為內(nèi)源性對(duì)照,將GNA13蛋白的光密度條帶用Image J 軟 件 (Image J National Institutes of Health,Bethesda,美國(guó))進(jìn)行分析。

      1.2.4 構(gòu)建文庫(kù)和RNA測(cè)序 使用分光光度計(jì)2000(Nanodrop Technologies,美國(guó))和 Agilent 2100(Agilen Technologies,美國(guó))測(cè)定RNA的濃度和完整系數(shù)(integrity number,IN)。通過瓊脂糖凝膠電泳測(cè)定RNA完整性,用高質(zhì)量RNA樣品(OD 260/280=1.8~2.0)構(gòu)建測(cè)序文庫(kù)。然后使用Illumina(美國(guó))的TruSeqTMRNA樣品制備試劑盒,取5 μg RNA制備RNA-seq轉(zhuǎn)錄組文庫(kù)。首先,用polyA-oligo dT分離mRNA,然后通過碎片緩沖液將mRNA片段化,通過隨機(jī)合成六聚體制備cDNA。Illumina(美國(guó))文庫(kù)構(gòu)建用于處理合成的cDNA,在2%低含量瓊脂糖上用200~300 bp的目標(biāo)cDNA片段選擇文庫(kù)大小,然后使用Phusion DNA聚合酶進(jìn)行PCR擴(kuò)增15個(gè)循環(huán)。通過TBS380定量后,用高通量測(cè)序技術(shù)4000(Illumina HiSeq 4000,美國(guó),2×150 bp 讀取長(zhǎng)度)對(duì)配對(duì)端的RNA-seq測(cè)序文庫(kù)進(jìn)行測(cè)序。

      1.2.5 測(cè)序短序列匹配原始配對(duì)端讀數(shù)由含有默認(rèn)參數(shù)的SeqPrep和Sickle進(jìn)行修剪和質(zhì)量控制。然后使用TopHat軟件[13]將讀數(shù)分別與定向模式的參考基因組比對(duì)。Bowtie映射標(biāo)準(zhǔn)如下:測(cè)序讀數(shù)與基因組一對(duì)一匹配,最多允許2個(gè)錯(cuò)配,無插入或缺失等錯(cuò)誤。然后根據(jù)基因位點(diǎn)的深度擴(kuò)展基因區(qū)域獲得操縱子。此外,整個(gè)基因組被分成多個(gè)可共享5 kbp的15 kbp視窗。新的轉(zhuǎn)錄區(qū)域定義為含有2個(gè)以上連續(xù)視窗,而且沒有基因區(qū)域的重疊,其中每個(gè)視窗可以讀取2個(gè)相同方向的映射。

      1.2.6 基因表達(dá)分析 用R軟件edgeR[14]對(duì)實(shí)驗(yàn)組、空載對(duì)照組和對(duì)照組進(jìn)行基因表達(dá)的差異性分析(differential expression genes,DEG),使用每千堿基外顯子的片段對(duì)應(yīng)每百萬映射讀數(shù)(fragments per kilobase of exon per million mapped reads,F(xiàn)RKM)方法計(jì)算每個(gè)轉(zhuǎn)錄物表達(dá)水平,用LI等[15]研究中RNA測(cè)序期望值最大化方法定義基因豐度。

      1.2.7 基因的 Phenotype 表型、Gene ontology(GO)以及Kyotoencyclopediaofgeneandgenomes(KEGG)分析 對(duì)差異基因用WebGestalt軟件[16]進(jìn)行Phenotype表型、GO以及KEGG富集分析,應(yīng)用超幾何檢驗(yàn),經(jīng)多重校正 (false discovery rate,F(xiàn)DR)后P<0.05的相關(guān)表型、生物學(xué)通路以及KEGG pathway為具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

      1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法使用 SPSS 19.0版(Chicago,IL,美國(guó))進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。實(shí)驗(yàn)組、空載對(duì)照組和對(duì)照組mRNA和蛋白表達(dá)水平組間比較采用單因素方差分析,進(jìn)一步兩兩比較采用最小顯著差異法(least-significant difference,LSD), 檢驗(yàn)水準(zhǔn) α=0.05。

      2 結(jié)果

      2.1 Gna13基因的mRNA和蛋白表達(dá)水平3組間Gna13基因的 mRNA(F=11.02,P=0.01)和蛋白(F=504.95,P<0.01)表達(dá)水平差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,兩兩比較,實(shí)驗(yàn)組mRNA和蛋白表達(dá)水平均低于空載對(duì)照組和對(duì)照組(P<0.05),空載對(duì)照組與對(duì)照組之間表達(dá)差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義 (P>0.05)(表1與圖 1)。

      表1 小鼠大腦皮層神經(jīng)元感染重組病毒后Gna13基因mRNA和蛋白表達(dá)水平

      圖1 小鼠大腦皮層神經(jīng)元感染重組病毒后Gna13蛋白表達(dá)水平電泳圖。對(duì)照組為未經(jīng)處理的正常神經(jīng)元,實(shí)驗(yàn)組為轉(zhuǎn)染Gna13基因重組慢病毒(Y1645)的神經(jīng)元,空載對(duì)照組為轉(zhuǎn)染空載慢病毒載體(Y007)的神經(jīng)元

      2.2 基因功能分析

      2.2.1 基因表達(dá)差異分析 實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組相比,表達(dá)有差異的基因共211個(gè)(P<0.05,F(xiàn)DR校正),其中表達(dá)上調(diào)基因共141個(gè),表達(dá)下調(diào)基因共70個(gè)(圖 2)。

      2.2.2 表型富集分析表型富集分析表明,表達(dá)上調(diào)基因主要與生存異常、老化異常、腎小管形態(tài)異常等表型相關(guān)(P<0.05,F(xiàn)DR校正),表達(dá)下調(diào)基因主要與異常有絲分裂、腦形態(tài)異常、產(chǎn)前發(fā)育遲緩等表型相關(guān)(P<0.05,F(xiàn)DR 校正)(表 2)。

      圖2 神經(jīng)元轉(zhuǎn)染重組病毒后基因差異表達(dá)火山圖。紅色點(diǎn)代表實(shí)驗(yàn)組相較對(duì)照組表達(dá)下調(diào)的基因,藍(lán)色點(diǎn)代表實(shí)驗(yàn)組相較對(duì)照組表達(dá)上調(diào)的基因,綠色點(diǎn)代表差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義的基因

      表2 Gna13基因差異表達(dá)表型富集分析結(jié)果

      2.2.3 GO功能富集 GO富集分析表明,表達(dá)上調(diào)基因主要與蛋白質(zhì)定位、細(xì)胞代謝過程、細(xì)胞內(nèi)轉(zhuǎn)運(yùn)等生物過程相關(guān)(P<0.05,F(xiàn)DR校正),表達(dá)下調(diào)基因主要與細(xì)胞周期的催化代謝、細(xì)胞周期蛋白依賴性蛋白激酶活性的正調(diào)節(jié)、細(xì)胞的高分子代謝等生物過程相關(guān)(P<0.05,F(xiàn)DR 校正)(表 3)。

      2.2.4 Pathway富集分析 Pathway富集分析顯示,表達(dá)上調(diào)基因主要參與神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子信號(hào)通路、軸突導(dǎo)向、血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)信號(hào)通路和有絲分裂原活化蛋白激酶 (mitogen-activated protein kinase,MAPK)信號(hào)通路(P<0.05,F(xiàn)DR 校正),表達(dá)下調(diào)基因主要參與 p53(protein 53,p53)信號(hào)通路、調(diào)節(jié)肌動(dòng)蛋白細(xì)胞骨架和粘著力 (P<0.05,F(xiàn)DR校正)(表 4)。

      3 討論

      多種基因相互作用以及基因和環(huán)境間相互影響共同導(dǎo)致精神分裂癥發(fā)生[17]。一方面有研究利用新一代的測(cè)序技術(shù)(next-generation sequencing,NGS)和GWAS,發(fā)現(xiàn)精神分裂癥的相關(guān)基因位點(diǎn),通過多基因綜合分析為精神分裂癥遺傳學(xué)研究提供基礎(chǔ)[18];另一方面精神分裂癥的表觀遺傳學(xué)研究則提供了基因和環(huán)境間相互影響的重要信息[19]。

      表3 Gna13基因差異表達(dá)GO功能富集分析結(jié)果

      表4 KEGG通路分析結(jié)果

      本研究通過重組病毒感染小鼠實(shí)驗(yàn)組大腦皮層神經(jīng)元細(xì)胞,并進(jìn)行mRNA及蛋白表達(dá)水平分析發(fā)現(xiàn),空載對(duì)照組與對(duì)照組之間的表達(dá)差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05,F(xiàn)DR 校正),表明空載病毒(Y007)本身對(duì)神經(jīng)元細(xì)胞表達(dá)Gna13基因的mRNA及蛋白無明顯影響;而實(shí)驗(yàn)組與空載對(duì)照組和對(duì)照組之間表達(dá)差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,F(xiàn)DR校正),表明重組病毒(Y6145)成功感染,并敲低Gna13基因,導(dǎo)致其mRNA和蛋白表達(dá)水平降低。在此基礎(chǔ)進(jìn)行基因表達(dá)的差異性分析,檢測(cè)到相對(duì)于對(duì)照組,Gna13基因敲低后細(xì)胞表達(dá)有差異的基因共211個(gè) (P<0.05,F(xiàn)DR校正),對(duì)這211個(gè)基因進(jìn)一步進(jìn)行分析。

      在Phenotype表型分析中,本研究發(fā)現(xiàn)表達(dá)下調(diào)基因參與腦形態(tài)異常的表型。目前已有影像學(xué)研究發(fā)現(xiàn),與健康對(duì)照組相比,首發(fā)精神分裂癥患者的海馬體、丘腦、紋狀體、左側(cè)顳中回和小腦灰質(zhì)體積減小,腦干、前額以及胼胝體白質(zhì)減小,第三腦室及側(cè)腦室擴(kuò)大[20-21]。本研究結(jié)果支持GNA13基因異??赡芤鹉X形態(tài)異常,從而參與精神分裂癥發(fā)生發(fā)展,但目前證據(jù)并不充分,其關(guān)聯(lián)性及具體機(jī)制仍需進(jìn)一步探索。

      在GO富集分析中,表達(dá)下調(diào)的基因與細(xì)胞周期、細(xì)胞周期的催化調(diào)節(jié)、細(xì)胞周期蛋白依賴性蛋白激酶活性的正調(diào)節(jié)等生物學(xué)過程相關(guān);而在pathway的富集分析中,表達(dá)下調(diào)的基因同樣與異常有絲分裂、細(xì)胞周期、p53信號(hào)等通路相關(guān)。而目前已有研究證實(shí)精神分裂的發(fā)生發(fā)展與神經(jīng)細(xì)胞周期調(diào)節(jié)異常密切相關(guān)[22]。同時(shí)在GO富集分析中,表達(dá)下調(diào)的基因與細(xì)胞代謝、細(xì)胞的大分子代謝過程相關(guān),pathway富集分析中也發(fā)現(xiàn)表達(dá)下調(diào)的基因與代謝途徑相關(guān)。而既往研究表明精神分裂癥患者常常伴有代謝綜合征和氧化應(yīng)激[23]。因此,本研究提示GNA13基因異??赡軐?dǎo)致細(xì)胞周期調(diào)節(jié)異常及代謝異常,這與精神分裂癥病理變化具有一致性,但其關(guān)聯(lián)性及具體機(jī)制仍需進(jìn)一步探索。

      在pathway分析中發(fā)現(xiàn)表達(dá)下調(diào)基因參與肌動(dòng)蛋白細(xì)胞骨架調(diào)節(jié)和粘附力等相關(guān)通路。而MOERS等[24]研究發(fā)現(xiàn)G蛋白α亞基13與肌動(dòng)蛋白細(xì)胞骨架調(diào)節(jié)和以肌動(dòng)蛋白為基礎(chǔ)的細(xì)胞收縮性有關(guān),敲除編碼G蛋白α亞基I2和G蛋白α亞基13中α亞基的基因后,小鼠皮質(zhì)神經(jīng)元和小腦浦肯野細(xì)胞過度遷移,導(dǎo)致大腦和小腦皮質(zhì)的神經(jīng)元異位,提示GNA13可能通過參與肌動(dòng)蛋白細(xì)胞骨架調(diào)節(jié)和粘附力而影響神經(jīng)元功能。同時(shí),HIRAYAMA-KUROGI等[7]研究發(fā)現(xiàn)精神分裂癥患者的大腦前額皮質(zhì)中GNA13基因表達(dá)減少,GNA13-ERK1-eIF4G2信號(hào)傳導(dǎo)網(wǎng)絡(luò)出現(xiàn)下調(diào),進(jìn)一步導(dǎo)致下游eIF4A1/2和CYFIP1表達(dá)減少。同時(shí)已有研究證明,在精神分裂癥的動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中,CYFIP1表達(dá)缺陷將導(dǎo)致大腦功能連接性缺陷以及神經(jīng)突觸前功能改變,從而引起精神分裂癥感知覺異常的相關(guān)癥狀[8-10]。因此本研究提示GNA13基因可能通過影響肌動(dòng)蛋白細(xì)胞骨架調(diào)節(jié)和突觸形成,進(jìn)而參與神經(jīng)細(xì)胞形態(tài)的形成、神經(jīng)細(xì)胞突觸可塑性以及大腦形態(tài)形成,從而影響精神分裂癥發(fā)生發(fā)展,但其關(guān)聯(lián)性及具體機(jī)制仍需深入探索。

      本研究仍然存在明顯不足之處:首先實(shí)驗(yàn)僅使用敲低實(shí)驗(yàn)組Gna13基因,進(jìn)行基因表達(dá)分析的方法,沒有進(jìn)行Gna13基因過表達(dá)的相關(guān)實(shí)驗(yàn),難以明確基因的基本功能;其次,本研究?jī)H為體外培養(yǎng)動(dòng)物細(xì)胞研究,在細(xì)胞水平對(duì)該基因可能的功能進(jìn)行初步探索,沒有相關(guān)的形態(tài)學(xué)、功能學(xué)實(shí)驗(yàn)以及動(dòng)物行為學(xué)實(shí)驗(yàn),無法對(duì)GNA13基因功能在精神分裂癥發(fā)生發(fā)展中的作用提供直接證據(jù)。未來研究可以結(jié)合動(dòng)物實(shí)驗(yàn)及臨床數(shù)據(jù),對(duì)GNA13基因和精神分裂癥的關(guān)聯(lián)做進(jìn)一步研究。

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