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      注水肉快速篩查敏感指標探究

      2019-12-06 10:18:04劉麗華張松山張禧慶孫寶忠雷元華修建勝
      中國動物檢疫 2019年12期
      關鍵詞:鮮肉肌纖維比值

      劉麗華 ,張松山,張禧慶,孫寶忠,雷元華,修建勝,謝 鵬

      (1.中國農業(yè)科學院北京畜牧獸醫(yī)研究所,北京 100193;2.煙臺杰科檢測服務有限公司,山東萊陽 265231)

      關鍵字:“注水肉”;水分/蛋白質;篩查;聚類分析

      自20世紀80年代肉類市場放開經營以來,“注水肉”行為一直屢禁不絕,成為嚴重危害消費者健康的食品安全問題[1-3]。原國家商務部2001年頒布實施的《畜禽肉水分限量》(GB 18394—2001)國家強制標準,為監(jiān)管部門提供了執(zhí)法依據。因當時注水手法單一,在實施初期,該標準對“注水肉”行為起到了極大的震懾作用,有效保障了人們的食品安全,取得了良好的社會效益[4-6]。然而近年來為了躲避監(jiān)查,不法商販不斷升級畜禽肉注水手法,從單純注水發(fā)展為注水與注射或灌服違法添加物相結合,以達到增大注水量,且肉中水分含量不超標的目的[7]。

      與之相應的“注水肉”鑒別手段也從最初的水分含量鑒別[8-9]、感官鑒別[10]、試紙法鑒別[11]、違法添加物篩查[12]等,發(fā)展到利用低場核磁技術結合主成分分析方法,來區(qū)分生鮮肉與“注水肉”[13-14],利用光譜技術建立“注水肉”判別模型等[15-16]。但從實效來看,這些技術手段準確性有待提高,震懾效果不佳[17],且需要較長的檢測時間或專業(yè)的檢測人員,不利于現場快速篩查。從生理學和病理學角度來看,肉中注水必然會造成機體或肌肉組織中,與水分存在狀態(tài)有關的某些敏感指標的特異性變化[18]。因此,本研究利用HE 染色法、核磁檢測技術和統(tǒng)計學聚類方法,以生鮮肉和“注水肉”中水分、蛋白質、脂肪含量以及水分和蛋白質比值為關鍵指標,來呈現肉品的指征性變化規(guī)律,從而達到鑒別“注水肉”的目的。

      1 材料和方法

      1.1 試驗材料

      選擇相同飼養(yǎng)條件下,體質量為(95±5)kg的杜大長三元雜交豬234頭;隨機選擇其中153頭為生鮮肉組,剩余81頭為“注水肉”組。“注水肉”模型建立:先對“注水肉”組活豬,肌內注射現場收繳的違法注水添加物,2 h 后灌服6 kg 清水,以后每間隔3 h 灌服1次,連續(xù)2次,2 h 后再灌服1次。對所有試驗活豬,按照《生豬屠宰操作規(guī)程》(GB/T 17236—2008)屠宰;取左側胴體背最長肌1 kg,密封后置于4 ℃保溫箱中迅速運回實驗室,進行相關指標測定。制備HE 組織切片樣品時,取背最長肌,沿肌纖維紋理切割約0.5 cm×0.5 cm×0.5 cm大小的肌肉組織塊,10%甲醛溶液固定。

      1.2 試驗儀器

      BS214D 型電子天平,購自北京賽多利斯儀器系統(tǒng)有限公司;KD-BM 生物組織包埋機,購自浙江金華科迪儀器設備有限公司;Nikon YS100顯微鏡,購自南京江南光電股份有限公司;Meso MR23-060H-1型臺式核磁共振分析儀,購自上海紐邁電子科技有限公司;KDY-9820型凱式定氮儀,購自北京通潤源機電技術有限責任公司。

      1.3 試驗方法

      1.3.1 組織結構測定參考任秋斌[20]的HE 染色法,將HE 組織切片樣品,用4%甲醛溶液浸泡48 h,再切割成0.3 cm×0.3 cm×0.3 cm 大小的組織塊,用水沖洗,70%酒精脫水過夜,二甲苯透明20 min 后組織包埋、修片、切片、染色,中性樹膠封片后顯微拍照。

      1.3.2 水分分布測定將樣品切割成1 cm×1 cm×1 cm 大小的塊狀,用核磁共振分析儀,測量核磁共振(nuclear magnetic resonance,NMR)橫向弛豫時間(T2)。測定時,儀器參數設定選擇:CPMG(Carr-Purcell-Meiboom-Gill sequence)序列,測量溫度32 ℃,質子共振頻率SF=23 MHz,偏移頻率O1=286.195 4 kHz,累加次數NS=6,采樣點數TD=384 996,PRG=1,模擬增益RG1=20,半回波時間DL1=0.12 ms,回波數NECH=14 000,P1=17 s,P2=35 us,Tw=3 500 ms。每個樣品重復測量3次。

      1.3.3 營養(yǎng)成分測定參照《食品安全國家標準食品中水分的測定》(GB 5009.3—2016)[21]方法,測定水分含量;參照《食品安全國家標準食品中蛋白質的測定》(GB 5009.3—2016)[22]中第一法:凱式定氮法,測定蛋白質含量;參照《食品安全國家標準食品中脂肪的測定》(GB 5009.3—2016)[23]中第一法:索式抽提法,測定脂肪含量。

      1.4 數據統(tǒng)計分析

      利用Excel 軟件,處理試驗數據;采用IBM SPSS Statistics 20、成組t 檢驗方法,進行組間差異顯著性分析。分析時采用雙側檢驗,試驗數據采用均值± 標準差(mean±SD)表示,以P<0.05作為差異顯著性判斷標準。采用IBM SPSS Modeler 軟 件,使 用K-Means 析算法,對試驗數據進行聚類分析;使用反演擬合軟件V4.09(上海紐邁電子有限公司),分析水分分布的弛豫時間。

      2 結果與分析

      2.1 肌纖維組織

      生鮮肉肌纖維的縱切面組織形態(tài)(圖1-A)顯示,縱切面完整,肌細胞被白色的結締組織隔開,形態(tài)較好;肌纖維排列緊密,肌漿豐富,染色深,橫紋清晰。生鮮肉肌纖維的橫切面組織形態(tài)(圖1-B)顯示,橫斷面肌纖維排列緊密,肌漿豐富,染色均勻。

      “注水肉”肌纖維的縱切面組織形態(tài)(圖1-C)顯示,縱切面完整,肌細胞邊界模糊,形態(tài)較差;肌纖維腫脹,呈卷曲波浪狀,結締組織斷裂,著色呈現不規(guī)則的紅白相間條紋狀(肌漿流失造成發(fā)白),有的整個肌纖維呈灰白色,也有肌纖維斷裂現象?!白⑺狻奔±w維的橫切面組織形態(tài)(圖1-D)顯示,肌漿稀疏,著色淺淡,纖維整體排列無序。

      2.2 水分分布

      橫向弛豫時間測量結果(圖2)顯示:不同弛豫時間處的特征峰與肉中存在的不同狀態(tài)水是對應的,即T21、T22和T23(由左至右依次對應的峰)分別表征樣品中的結合水、不易流動水和自由水的核磁響應信號[24]。

      生鮮肉和“注水肉”的弛豫時間和峰面積比的成組t 檢驗分析結果(表1)顯示:生鮮肉的T21起峰時間和峰頂時間顯著晚于“注水肉”(P<0.05),T22結束時間顯著早于“注水肉”(P<0.05),峰面積比P21顯著小于“注水肉”(P<0.05),峰面積比P22顯著大于“注水肉”(P<0.05)。

      2.3 營養(yǎng)成分測定

      圖1 生鮮肉和“注水肉”的肌纖維結構

      圖2 生鮮肉與“注水肉”的典型橫向弛豫時間(T2)

      生鮮肉和“注水肉”營養(yǎng)成分的成組t 檢驗差異分析結果(表2)顯示:生鮮肉的蛋白質含量顯著高于“注水肉”(P<0.05),脂肪含量略低于“注水肉”;生鮮肉和“注水肉”的水分含量存在顯著差異,但二者數值均未超過《畜禽肉水分限量》(GB 18394—2001)所規(guī)定的限量值(77%);生鮮肉的水分/蛋白質比值顯著低于“注水肉”(P<0.05)。

      2.4 營養(yǎng)成分分布規(guī)律

      生鮮肉和“注水肉”的水分含量分布(圖3-A)顯示,生鮮肉的水分含量為73.3%~76.6%,“注水肉”為74.2%~76.6%。二者分布區(qū)域基本重合,無法有效加以區(qū)分。生鮮肉和“注水肉”的脂肪含量分布(圖3-B)與水分含量分布呈現相同趨勢。

      表1 T2的峰時間(ms)和面積比(%)分布

      生鮮肉和“注水肉”的蛋白質含量分布(圖3-C)顯示,生鮮肉的蛋白質含量為20.9%~23.6%,主要集中在22%左右;“注水肉”為18.0%~22.0%,主要集中在19%左右;二者雖具有統(tǒng)計學差異(P<0.05),大部分可以有效區(qū)分。

      水分/蛋白質比值的分布結果(圖3-D)顯示,生鮮肉的水分/蛋白質比值為2.80~3.95,主要集中在3.50左右;“注水肉”的水分/蛋白質比值為3.38~4.82,主要集中在4.00左右。二者存在明顯差異(P<0.05),大部分可以有效區(qū)分。

      表2 營養(yǎng)成分含量和水分/蛋白質比值測定結果

      圖3 水分、蛋白質、脂肪以及水分/蛋白質比值分布

      2.5 營養(yǎng)指標聚類分析

      以水分、蛋白質、脂肪、水分/蛋白質比值作為數據源,使用K-Means算法聚類劃分生鮮肉和“注水肉”。設置聚類數為2,得出在類別1和類別2中生鮮肉和“注水肉”的個數(表4)。以水分和脂肪分別作為聚類分析項,結果顯示生鮮肉和“注水肉”的分布差異不顯著(P<0.05)。以蛋白質和水分/蛋白質比值分別作為聚類分析項,結果顯示生鮮肉和“注水肉”在兩個類別中分布差異都較大(P<0.05)。利用類別1中“注水肉”識別個數除以“注水肉”樣品總數計算“注水肉”識別率,各分類項的“注水肉”識別率為80.2%、79.0%、80.2%和88.9%;利用類別2中生鮮肉的識別個數除以生鮮肉總數,計算各分類項的生鮮肉識別率分別為49.7%、94.8%、49.7%和96.7%。結果可見,水分/蛋白質的識別率高于其他分類項。

      表4 聚類分析聚類中樣品個數結果

      3 討論

      HE 染色是肌肉組織學觀察的主要方法[25]。李志強[26]研究發(fā)現,生鮮豬肉組織的肌纖維排列整齊且紋理清晰可辨別。王彥麗等[27]研究發(fā)現,注水行為可使肌細胞滲透壓發(fā)生顯著變化,造成肌細胞破裂,組織形態(tài)破壞,因而“注水肉”組織結構呈現肌肉色澤變淡和結締組織紅白花紋不明顯的特點。本研究的生鮮豬肉和“注水肉”組織觀察結果與以上研究一致。

      通常認為LF-NMR 多組分橫向弛豫圖中,T21反映了與大分子緊密結合的水分,T22反映了蛋白質結構中的水分,而T23則反映了肌纖維外蛋白質晶體結構中存在的水分[28-29]。弛豫時間越短,表明對應水分與底物結合越緊密,水分流動性越低;弛豫時間越長,表明對應水分與底物結合越松散,水分流動性越強[30-31]。本研究發(fā)現:“注水肉”的T21起峰和峰頂時間顯著早于生鮮肉(P<0.05),P21顯著大于生鮮肉(P<0.05),T22峰面積顯著小于生鮮肉(P>0.05),P22顯著小于生鮮肉(P<0.05)。這與前人研究[32-34]結論一致。而生鮮肉和“注水肉”的T23弛豫時間和峰面積比無顯著差異,與王勝威等[35]研究的“注水肉”的T23峰面積顯著增大(P<0.05)不一致,其原因可能是其研究利用的是向生鮮肉中直接注水后靜置而建立的“注水肉”模型,水分在肉塊中可能多以自由水的形式存在。通常情況下,水的流動性越強,弛豫時間越長,自由水的峰面積增大[30]。本研究則是按照現行違法注水操作,活體灌注后采集的樣品,因而更具有真實性和代表性。相較于單純肌肉注水模型,生豬活體注水后必然會引起機體復雜的代謝、代償反應,同時違法添加物也會影響肌肉組織中水分的流動性,因此導致了本研究中“注水肉”自由水的峰面積比與此前的其他研究不一致。肉的保水性主要取決于肌肉對不易流動水的保持能力。不易流動水主要存在于纖絲、肌原纖維及膜之間。研究顯示,不論是肌肉注射水模型,還是本研究使用的活體注射違法添加劑結合水分灌注模型,T22弛豫時間均延長,表明注水行為都對肌肉組織結構產生了損傷,這一點從HE 染色組織學研究也得到了證實。

      對比生鮮肉和“注水肉”的水分含量分布可以發(fā)現,二者水分含量分布區(qū)域基本重疊,不能有效區(qū)分“注水肉”,且“注水肉”的水分含量值基本不超過77%的限量值。對生鮮肉和“注水肉”的水分、蛋白質和脂肪的測定結果表明,生鮮肉和“注水肉”單位質量內的脂肪和蛋白質含量發(fā)生了顯著變化,大大降低了單位肉品中有效營養(yǎng)成分比例[27]。通過含量分布圖發(fā)現:水分和脂肪含量指標分布區(qū)域極度重疊,無法有效區(qū)分生鮮肉和“注水肉”;而蛋白質含量和水分/蛋白質比值分布差異顯著,可大體區(qū)分兩者。

      有資料[36]顯示,在巴西農業(yè)畜牧和食品供應部發(fā)布的2010年第32號技術規(guī)范中,不僅對分割雞肉的水分含量和蛋白質含量范圍提出了要求,并且對水分/蛋白質比值的范圍也提出了明確要求。由此可以看出,水分/蛋白質比值已經被一些國家和地區(qū)作為評價肉品質量的關鍵指標。

      本研究以營養(yǎng)成分作為聚類分析項,來鑒別生鮮肉和“注水肉”,發(fā)現以水分/蛋白質比值的聚類分析結果為最優(yōu),其中“注水肉”的識別率為88.9%,生鮮肉的識別率為96.7%,說明利用水分/蛋白質比值能夠較準確鑒別生鮮肉和“注水肉”。但受樣本量的限制,其具體閾值還有待通過大樣本量的測定后加以確定。同時,未來指標閾值的確定可能還要根據物種、品種、年齡等不同而分別研究確定。本研究利用低場核磁技術,重點分析了二者的水分分布差異以及“注水肉”模型特性,因此僅隨機各選取6個生鮮肉和“注水肉”樣品進行對照分析,而對于所有樣品的檢測分析,待后續(xù)進一步細化研究。

      4 結論

      本研究模擬當前違法注水案件所采用的方法建立注水肉模型,從水分、蛋白質、脂肪含量以及水分/蛋白質比值等判別“注水肉”指標中,篩選出水分/蛋白質比值為“注水肉”判別的指征性篩查指標,但需進一步研究確定指標閾值。

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