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      非洲豬瘟病毒(ASFV)結構蛋白p54的表位定位研究

      2020-12-17 22:36:15張愛瓊賀志昊編譯
      豬業(yè)科學 2020年5期
      關鍵詞:免疫吸附單克隆多肽

      張愛瓊,賀志昊(編譯)

      (畢節(jié)市動物疫病預防控制中心,貴州 畢節(jié) 551700)

      非洲豬瘟(ASF)是由非洲豬瘟病毒(ASFV)引起的一種急性、熱性、高度接觸性傳染病,對全球養(yǎng)豬業(yè)造成嚴重威脅,給中國以及東南亞在內(nèi)的一些國家造成了嚴重的經(jīng)濟損失。急性型ASF感染的豬只在感染后的臨床表現(xiàn)為昏睡、厭食、高燒和死亡;在慢性型ASF中,豬只臨床癥狀要輕得多。由于現(xiàn)今沒有有效的非洲豬瘟疫苗對豬只進行免疫來避免該病毒的感染,疫病的防控嚴重依賴于生物安全與對被感染豬的早期診斷檢測,因此診斷工具對于該病早期發(fā)現(xiàn)和實施控制措施至關重要。

      Petrovan V等人基于非洲豬瘟病毒p72和p30抗原應用于酶聯(lián)免疫吸附試驗作為非洲豬瘟血清學檢測的重要工具,對與其他免疫原性蛋白一樣p54結構蛋白進行研究。除p72和p30抗原外,非洲豬瘟的另一個血清學目標是有183個氨基酸的結構蛋白p54,p54是進行ASFV檢測和監(jiān)測的良好血清學靶標,它是病毒基因E183L的產(chǎn)物,位于內(nèi)包膜病毒體中。p54是一種第二型病毒膜蛋白,其內(nèi)部N-末端60個氨基酸,隨后是一個跨膜結構域和一個131個氨基酸的C-末端結構域,據(jù)預測其外域具有幾個糖基化和磷酰化位點。該蛋白質(zhì)具有保守和可變的肽區(qū),p54蛋白間的差異很大程度上由位于蛋白C端一半的Pro-Ala-Ala-Ala重復序列的數(shù)量決定,基因變異與毒力無關,但有助于將病毒分為不同的基因型。p54與p30共同參與病毒顆粒與靶細胞的結合,在病毒內(nèi)化后,p54與宿主蛋白dynein相互作用,導致病毒粒轉運到細胞的核周區(qū)域,p54中相應的動力蛋白結合結構域(DBD)也參與Caspase-3的激活和凋亡的誘導,位于氨基酸149-161之間的DBD,是ASFV感染豬的對照血清中和目標??筽54抗體最早在感染后8 d出現(xiàn),并持續(xù)數(shù)周。Gallardo等人描述的基于p54酶聯(lián)免疫吸附試驗的血清學試驗顯示,與世界動物衛(wèi)生組織的酶聯(lián)免疫吸附試驗相比,敏感性為98 %,特異性為97 %。此外,在37 ℃儲存1個月后,ASFV抗體陽性樣品的p54反應性仍為陽性。因此,p54連同p30和p72是代表了檢測ASFV抗體的一組理想的抗原靶標??贵w檢測的改進包括并入抗原特異性mAb轉化為封閉ELISA(bELISA)測試,商業(yè)上可用的bELISA測試Ingenasa-Ingezim PPA Compac K3,是基于對p72抗體的檢測。

      Petrovan V等人對ASFV表位結構蛋白p54進行研究,首先進行動物實驗獲取血清,同時采用基因工程技術以非洲豬瘟 Georgia2007/1株(GenBank登 錄 號:FR682468)為模板,用特異性引物F:5′-TTGGCCAACTTGATAGC-3′和R:5′-ATACGTGCGTCGATGGAGA T-3′擴增包含60-178氨基酸的p54基因的核苷酸序列(沒有預測的跨膜區(qū)域),并將其克隆到pFastBac/HBMTOPO載體(InvitrogenBac-to-BacHBMTO P)中,轉化到桿狀病毒穿梭載體(bacmid)中。運用重組桿菌DNA轉染SF9和Hi-Five昆蟲細胞,用附著在C端的6×His標簽表達p54融合蛋白。該蛋白在桿狀病毒感染的細胞中表達,并用HisPurTM Cobalt色譜Cartridge(Thermo Fisher)純化,然后進行小鼠的免疫和單克隆抗體(mAbs)的制備。同時,其以ASFV BA71 V株(GenBank登錄號U18466)的p54基因序列用于制備密碼子優(yōu)化的p54多肽片段(集成技術)。為5個多肽片段制備了合成的DNA片段;p54(54-113)、p54(83-143)、p54(113-183)、p54(1-183) 和p54(54-183),在每個DNA片段的5′和3′末端插入SacII和EcoRI限制性酶切位點,并被克隆到表達5xHis泛素融合蛋白的細菌表達載體中,將質(zhì)粒轉化到大腸桿菌BL21(DE3)感受態(tài)細胞中,并進行多肽的表達和純化。在純化后進行酶聯(lián)免疫吸附試驗(ELISA)和病毒中和試驗。

      其結果顯示,除p54(1-183)外,所有重組蛋白都在大腸桿菌中表達,為5xHis-泛素融合蛋白(添加5xHis-泛素標簽是為了親和純化和提高大腸桿菌中的蛋白表達)。全長蛋白p54(1-183)在沒有泛素的情況下表達。多肽片段p54(54-113)、p54(83-143)和p54(113-183)在天然條件下使用試劑盒中提供的緩沖液進行親和純化,在天然緩沖液純化條件下不溶的p54(1-183)蛋白在8 M尿素存在下純化。p54(54-183)多肽也是不溶的,但在較溫和的條件下用CAPS/Sarkosyl緩沖液純化,用5xHis單克隆抗體免疫印跡的SDS PAGE顯示所有p54多肽構建體如預期遷移。

      最初針對桿狀病毒表達的Georgia p54(60-178)多肽篩選了單克隆抗體,用于免疫小鼠。免疫熒光試驗(IFA)在固定的ASFV Lisbon/60感染的Vero細胞上篩選12種陽性單克隆抗體,結果確定了7個IFA陽性克隆。由于肽序列的相似性,來自Lisbon/60和BAV71 V的p54多肽可以用作Georgia的替代物。5個IFA陰性克隆沒有進行進一步的研究。通過白細胞和酶聯(lián)免疫吸附試驗篩選出7種IFA陽性單克隆抗體,在抗大腸桿菌中表達的BA71 V p54(1-183)。5個單克隆抗體,對感染了Lisbon/60的Vero細胞進行IFA染色。在涂有大腸桿菌表達的p54(54-183)的平板上進行酶聯(lián)免疫吸附試驗,用大腸桿菌表達的p54(1-183)進行蛋白質(zhì)印跡,重組蛋白基于ASFV BA71 V。對于酶聯(lián)免疫吸附試驗,吸光度值大于陰性對照的3個標準偏差被認為是陽性結果。對典型ASFV分離株p54抗原區(qū)的比較,發(fā)現(xiàn)26種病毒的p54寡肽序列,重新呈現(xiàn)了24種已知ASFV基因型中的20種。當所有5種單克隆抗體在中和試驗中結合時,中和活性存在于所有測試的稀釋液中。

      患ASF的病豬血清對p54多肽和寡肽的識別是用ASFV分離物OURT88/3實驗性感染的16頭豬的血清對照p54多肽進行測試。OURT88/3是一種毒性相對較低的分離株,可誘導強有力的抗體反應,結果顯示了多肽p54(54-183)和p54(83-143)的平均吸收率最高,同時血清也與寡肽組反應。

      總之,在缺乏有效疫苗的情況下,對ASF的控制依賴于準確、高效和低成本的檢測方法。與p72、p30與pp62一樣,p54屬于一組結構蛋白,具有免疫原性,通常參與疫苗研制和血清學檢測。在其研究中,mAb和感染豬識別的p54中線性抗原結構域的特征提供了有關使用p54作為血清學抗原的信息。以前對抗原區(qū)域的研究僅限于位于DBD氨基酸149-161之間的單個線性表位。但是,其研究中產(chǎn)生的單克隆抗體均未識別出DBD區(qū)域或未顯示出明顯的病毒中和活性。即使DBD肽序列具有抗原性,當用全蛋白免疫小鼠時它可能也沒有足夠的免疫原性。桿狀病毒系統(tǒng)的一個優(yōu)勢是產(chǎn)生具有翻譯后修飾(例如糖基化)的蛋白質(zhì)。即使用于免疫小鼠的p54(60-178)多肽不具有N-糖基化位點(NXS/T),但據(jù)預測它仍具有多個O-糖基化位點,翻譯后修飾對mAbs識別p54的作用尚不清楚。在最初的表位研究中使用了大腸桿菌表達系統(tǒng),是基于該系統(tǒng)先前已用于生產(chǎn)p54來進行診斷分析。其研究評估了5個mAb用作檢測ASFV感染的試劑(用于抗體或抗原檢測)的能力。開發(fā)用于檢測p54抗體或用于病毒檢測酶聯(lián)免疫吸附試驗中p54抗原捕獲試驗的b-ELISA的第一步是制備和鑒定識別保守表位的單克隆抗體,產(chǎn)生了一組針對桿狀病毒表達的p54重組蛋白的單克隆抗體。表位定位顯示,來自ASFV感染豬的單克隆抗體和血清識別p54內(nèi)的保守和可變區(qū)域,ASF病豬的血清也能識別表位。這些數(shù)據(jù)為開發(fā)新的血清學檢測方法創(chuàng)造了機會,這些方法可以改善ASF診斷。其研究中描述的5種抗p54mAbs在p54中識別了幾個保守和可變的區(qū)域,共同確定了位于p54上的重要抗原和免疫原性區(qū)域,部分mAbs識別的表位也被AS FV感染豬的血清識別。與其他血清學檢測一起,為改進ASFV診斷提供了新的工具,將有助于改進對ASFV感染的檢測。

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