閆劉慧,王小鵬,金庭飛,劉作文,劉力
(1.廣東益可維健康科技有限公司,廣州 510663;2.河南花花牛乳業(yè)集團股份有限公司,鄭州 450000;3.福成五豐食品股份有限公司,廊坊 065200;4.北京食品營養(yǎng)與人類健康高精尖創(chuàng)新中心,中國農(nóng)業(yè)大學(xué),北京 100083)
氧化損傷因機體參與氧化應(yīng)激而導(dǎo)致多種慢性系統(tǒng)疾病,也體現(xiàn)了機體衰老發(fā)生與發(fā)展的基礎(chǔ)病理代謝過程[1,2],這種代謝過程進一步會誘發(fā)炎癥、癌癥、阿爾茲海默癥、心腦血管疾病、肺部疾病、肝臟疾病等慢性疾病,也會導(dǎo)致細胞、組織乃至器官不可逆性的衰老[3~7],導(dǎo)致機體損傷。當(dāng)機體的活性氧(reactive oxygen species,ROS)與自由基的生成能力超過清除能力時,活性氧與自由基積累會使得機體氧化還原系統(tǒng)的平衡被打破,對機體造成不可逆影響。丙二醛(MDA)是膜脂過氧化產(chǎn)生的,MDA在細胞內(nèi)積累會造成一定的氧化損傷,破壞機體細胞內(nèi)的核酸、蛋白質(zhì)、脂質(zhì)等[8,9]。因此,抗氧化系統(tǒng)對于抵抗氧化應(yīng)激反應(yīng)、降低氧化損傷、維持氧化還原平衡具有重要作用[10]??寡趸到y(tǒng)主要包括兩種氧化劑——酶類抗氧化劑和非酶類抗氧化劑,測定抗氧化劑的抗氧化水平可通過測定總抗氧化能力(Total antioxidant capacity,T-AOC)進行[9]。其中,酶類抗氧化劑主要是催化體內(nèi)氧化酶的毒性產(chǎn)物H2O2的分解[11],主要包括超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)、過氧化氫酶(CAT)、巰基依賴型抗氧化系統(tǒng)(如:谷胱甘肽過氧化物酶GSH-Px)等[12];非酶類抗氧化劑主要包括水溶性抗氧化劑(如:維生素C、硫辛酸LA、尿酸UA)和脂溶性抗氧化劑(如:維生素A、維生素E、輔酶Q10、蝦青素)[13~15]。目前抗氧化活性評價方法有四類:體外化學(xué)方法模擬法(如:清除自由基、抑制脂質(zhì)過氧化、螯合金屬離子等),優(yōu)點是方便且快速,缺點是外界環(huán)境因素干擾較大[16,17];抗氧化活性細胞模型法(如:人源或動物源細胞系的抗氧化細胞模型),優(yōu)點是相對精準,缺點是未考慮體內(nèi)環(huán)境的復(fù)雜性,因此只能作為體內(nèi)實驗前的預(yù)判斷[18];抗氧化活性體內(nèi)研究法(如:動物氧化模型),優(yōu)點是能直接且清晰判斷抗氧化能力,缺點是耗時長、成本高[19];抗氧化活性分子生物學(xué)研究法,可以深入探究起氧化作用的具體生物活性物質(zhì)[20]。近幾年關(guān)于腸道微生態(tài)的研究日益增多,益生菌對于機體抗氧化作用也日益突出,其機制主要從三方面考慮:促進ROS清除、提高抗氧化酶活性、保護DNA免受氧化損傷[21~24]。本試驗通過抗氧化活性體內(nèi)研究法,建立小鼠氧化損傷模型,探究一株植物乳桿菌抗氧化作用的效果。
實驗菌株:植物乳桿菌(Lactobacillus plantarumFEED8,保藏編號為CGMCC No.15029 ),分離自廣西巴馬長壽老人腸道;實驗動物:KM雄性小鼠,SPF級,2月齡,18~22g(廣東省實驗動物中心);無乳桿菌小鼠飼料(上海斯萊克實驗動物有限責(zé)任公司,飼喂前經(jīng)輻射滅菌);D-半乳糖(中國醫(yī)藥集團上海化學(xué)試劑公司);GSH-Px 試劑盒、SOD試劑盒、T-AOC試劑盒、MDA試劑盒,蛋白定量測試盒(南京建成生物工程研究所)。
高壓滅菌鍋(型號GI54DWS,zealway公司);多功能生化培養(yǎng)箱(型號ZSD-1160,TOKYO RIKAKIKAI CO.LTD);電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱(型號DHG-9076A,上海精宏實驗設(shè)備有限公司);低溫高速離心機(型號3K30,德國Satorious公司);紫外-可見分光光度計(型號UV-2800,尤尼柯(上海)儀器有限公司);勻漿器(德國普魯克公司)。
1.3.1 植物乳桿菌活菌體菌懸液的制備
將植物乳桿菌按照107CFU/mL的接種量分別接種于500mL的MRS液體培養(yǎng)基中,37℃厭氧培養(yǎng)18h,4 500g離心15min收集菌體,菌體沉淀重懸于質(zhì)量分數(shù)10%(w/v)的脫脂乳中,分別配制成2×106CFU/mL的低劑量菌懸液、2×108CFU/mL的中劑量菌懸液、2×1010CFU/mL的高劑量菌懸液。
D-半乳糖溶液:D-半乳糖以滅菌生理鹽水配制成60mg/mL溶液,使用前用0.22微孔濾膜過濾除菌。
1.3.2 試驗分組
50只小鼠適應(yīng)一周后,隨機分組,每組10只。分組編號、組別、處理方式見表1。期間每3d稱重1次,調(diào)整灌胃量,連續(xù)灌服45d,灌胃量為0.1mL/kg/d。試驗期間小鼠自由飲食,12h燈照/黑暗循環(huán)。
表1 動物實驗分組情況(n=10)
1.3.3 檢測指標處理
取上述步驟中連續(xù)給予樣品45d的實驗小鼠,于末次灌胃后稱重,并禁食12h,眼球取血并用頸椎脫臼法處死小鼠。肝素鈉抗凝管收集血液,3 000g離心10min,上清液0℃低溫保藏備用。解剖小鼠,取出腦和肝臟,分別稱取0.1~0.2g腦和肝臟組織,加入9倍體積的生理鹽水,于勻漿器中制成10%的組織勻漿液,3 000g離心10min,分別取上清液0℃低溫保藏備用。通過生化試劑盒分別測GSH-Px活力、SOD活力、T-AOC含量、MDA含量和蛋白含量。各測試方法按照試劑盒說明書進行。
所有數(shù)據(jù)均用統(tǒng)計軟件SPSS22.0進行單因素方差分析,應(yīng)用Duncans法進行多重比較,通過t檢驗進行顯著性分析,顯著性水平均設(shè)定為P〈0.05。各項指標結(jié)果以“平均值±標準差”(mean±SD)表示。
試驗前后對各組小鼠進行體重測定,結(jié)果如圖1所示。各組小鼠體重均有所增加。與C2組相比,C1組小鼠增重明顯放緩,說明造模成功,造模對小鼠生長有不利影響;與C1組相比,L、M、H組小鼠體重均增加,且M、H組增重較C1組有顯著性,說明植物乳桿菌FEED8中高劑量對小鼠生長有顯著促進作用;L、M、H組比較,小鼠增重隨FEED8濃度增加而增大,說明該菌株在實驗濃度范圍內(nèi)小鼠增重與濃度呈正相關(guān)。
圖1 試驗前后各組別小鼠體重變化對比
植物乳桿菌FEED8對小鼠血清GSH-Px活力、SOD活力、T-AOC含量、MDA含量的影響如圖2所示。與C2相比,C1小鼠血清中的GSH-Px活力、SOD的活力、T-AOC含量顯著降低,而MDA含量顯著升高,說明衰老小鼠造模成功。與C1相比,L、M、H小鼠血清GSH-Px活力、SOD活力,T-AOC含量升高,MDA含量降低,除SOD活力外,M、H組差異顯著,說明植物乳桿菌FEED8對小鼠血清具有抗氧化效果,且在實驗濃度范圍內(nèi)抗氧化效果隨濃度升高而增強。
圖2 不同組別小鼠血清抗氧化指標對比
植物乳桿菌FEED8對小鼠腦GSH-Px活力、SOD活力、T-AOC含量、MDA含量的影響如圖3所示。與C2組相比,C1組小鼠腦中的GSH-Px和SOD活力、T-AOC含量均顯著降低,而MDA含量顯著升高,說明衰老小鼠造模成功。與C1相比,M、H組小鼠腦GSH-Px活力、SOD活力顯著提升,L、M、H組小鼠腦T-AOC含量均顯著提升,且M、H組小鼠腦MDA含量顯著降低,說明植物乳桿菌FEED8對小鼠腦具有抗氧化效果,且在實驗濃度范圍內(nèi)抗氧化效果隨濃度升高而增強。
圖3 不同組別小鼠腦抗氧化指標對比
植物乳桿菌FEED8對小鼠肝臟GSH-Px活力、SOD活力、T-AOC含量、MDA含量的影響如圖4所示。與C2組相比,C1組小鼠肝臟中的GSH-Px活力、SOD活力、T-AOC含量均顯著降低,而MDA含量顯著升高,說明衰老小鼠造模成功。與C1組相比,M、H組小鼠肝臟GSH-Px活力、SOD活力、T-AOC含量顯著提高,且H組MDA含量明顯降低,說明植物乳桿菌FEED8對小鼠肝臟具有抗氧化效果,且在實驗濃度范圍內(nèi)抗氧化效果隨濃度升高而增強。
圖4 不同組別小鼠肝臟抗氧化指標對比
植物乳桿菌FEED8對D-半乳糖致衰小鼠抗氧化系統(tǒng)的試驗表明,與模型組相比,灌胃該菌組小鼠血清、腦、肝臟中SOD活性、GSH-Px活性和T-AOC含量均有升高,MDA含量均有降低,且FEED8中高劑量組數(shù)據(jù)與模型組相比大多差異顯著,三個組織試驗結(jié)果一致,說明植物乳桿菌FEED8具有抗氧化能力,且隨濃度增加抗氧化能力增強。植物乳桿菌FEED8的抗氧化作用,可能與腸道菌群通過參與氧化應(yīng)激、炎性反應(yīng)、免疫反應(yīng)、代謝作用等多種途徑[25]影響機體對氧化損傷和組織修復(fù)能力有關(guān),其機理仍需進一步探究。