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      競(jìng)爭(zhēng)性酶聯(lián)適配體可視化檢測(cè)玉米赤霉烯酮

      2021-06-21 09:35:02韋麗婷譚貴良吳世嘉王周平
      關(guān)鍵詞:赤霉烯酮光度

      韋麗婷,譚貴良,樂 琳,吳世嘉,王周平*

      (1.食品科學(xué)與技術(shù)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江南大學(xué),江蘇 無錫214122;2.江南大學(xué) 食品學(xué)院,江蘇 無錫214122;3.中山市食品藥品檢驗(yàn)所,廣東 中山528437)

      玉米赤霉烯酮(zearalenone,ZEN),又稱為F2毒素,是由鐮刀菌屬的禾谷鐮刀菌、三線鐮刀菌等產(chǎn)生的一種非甾體雌激素樣作用的真菌毒素[1],其主要污染玉米、小麥、大米、高粱等谷物及其制品[2-4]。ZEN具有較高的耐熱性,110℃條件下處理1 h才會(huì)被完全破壞,因此在食品或飼料加工過程中不易去除,對(duì)人體和動(dòng)物健康帶來極大的危害[5]。ZEN具有較強(qiáng)的生殖毒性、神經(jīng)毒性和致癌性[6-8],可與雌激素受體結(jié)合引起動(dòng)物發(fā)生雌激素亢進(jìn)癥,導(dǎo)致動(dòng)物不孕或流產(chǎn),給畜牧業(yè)經(jīng)濟(jì)造成巨大的經(jīng)濟(jì)損失[9]。ZEN被國際癌癥研究機(jī)構(gòu)IARC分類為第3組致癌物質(zhì),其毒性僅次于黃曲霉毒素[10-11]。為了減少ZEN對(duì)人類和動(dòng)物的危害,多個(gè)國家已對(duì)食品和飼料中的ZEN制定了限量標(biāo)準(zhǔn),歐盟規(guī)定了谷物和玉米中ZEN的含量分別不能超過0.1 mg/kg和0.35 mg/kg。澳大利亞規(guī)定谷物中ZEN的含量不能超過50μg/kg,我國《GB2761-2011食品中真菌毒素限量》標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定玉米、小麥及其制品中ZEN的含量不得超過60μg/kg,《GB 13078.2-2006飼料中赭曲霉毒素A和玉米赤霉烯酮的允許量》規(guī)定配合飼料、玉米中ZEN的安全限量為500μg/kg。

      目前,用于檢測(cè)食品和飼料中ZEN含量的方法主要有薄層色譜法(TLC)[12]、氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用(GC-MS)[13]、高效液相色譜法(HPLC)[14]、液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用(LC-MS)[15]和酶聯(lián)免疫法(ELISA)[16]。這些方法各有其優(yōu)缺點(diǎn),如操作復(fù)雜、需要昂貴的儀器和專業(yè)的操作人員、穩(wěn)定性差等問題。酶聯(lián)免疫法靈敏度高、特異性好,但小分子半抗原的抗體制備過程非常復(fù)雜,需要進(jìn)行動(dòng)物免疫實(shí)驗(yàn),且研發(fā)周期較長(zhǎng)。因此,研發(fā)一種新型的生物識(shí)別分子,用于檢測(cè)玉米赤霉烯酮具有重要的意義。

      核酸適配體是經(jīng)SELEX(systematic evolution of ligands by exponential enrichment,指數(shù)富集的配體系統(tǒng)進(jìn)化)技術(shù)體外篩選獲得的一段具有特定復(fù)雜三維構(gòu)象、可與靶標(biāo)特異性結(jié)合的寡核苷酸片段[17-18]。與抗體相比,適配體具有易人工合成和修飾、靶物質(zhì)范圍廣、穩(wěn)定性好、分子量小和易保存等優(yōu)點(diǎn)。目前,利用適配體作為識(shí)別分子主要應(yīng)用于醫(yī)學(xué)、生命科學(xué)和生物分析科學(xué)等領(lǐng)域,基于適配體的分析檢測(cè)研究主要集中在熒光檢測(cè)法、生物傳感器和電化學(xué)傳感器[19-21],在食品中小分子危害物質(zhì)檢測(cè)方面的報(bào)道不多。作者通過HRP標(biāo)記適配體互補(bǔ)鏈形成信號(hào)探針,與靶標(biāo)競(jìng)爭(zhēng)結(jié)合適配體,建立一種可視化快速檢測(cè)玉米赤霉烯酮的方法。

      1 材料與方法

      1.1 試劑和儀器

      1.1.1 試劑 玉米赤霉烯酮(ZEN)、黃曲霉毒素B1(AFB1)、伏馬毒素B1(FB1)、嘔吐毒素(DON)和赭曲霉毒素A(OTA)標(biāo)準(zhǔn)品與鏈霉親和素購于Sigma-Aldrich;牛血清白蛋白 (BSA)、氯化鈉(NaCl)、磷酸氫二鈉(Na2HPO4·12H2O)、磷酸氫二鉀(K2HPO4)、碳酸鈉(Na2CO3)、碳酸氫鈉(NaHCO3)、氯化鉀(KCl)、濃硫酸、吐溫-20等均購買于國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司,均為分析純;辣根過氧化物酶標(biāo)記鏈霉親和素(Streptavidin-HRP)、3,3′,5,5′-四甲基聯(lián)苯胺(TMB)顯色液、ZEN適配體5′bio-TCA TCT ATC TAT GGT ACA TTA CTA TCT GTA ATG TGA TAT G-3′和ZEN適配體互補(bǔ)鏈(cDNA)5′bio-AGT AGA TAG ATA CCA TGT AAT GAT AGA CAT TAC ACT ATA C-3′均購于生工生物工程(上海)有限公司。

      1.1.2 儀器 AR224CN電子天平:奧豪斯儀器(中國)有限公司產(chǎn)品;Starter 3C實(shí)驗(yàn)室pH計(jì):奧豪斯儀器(中國)有限公司產(chǎn)品;Direct-Q3超純水制備儀:美國Millipore公司產(chǎn)品;96孔酶標(biāo)板:美國Corning公司產(chǎn)品;Synergy H1全功能酶標(biāo)儀:美國伯騰儀器有限公司產(chǎn)品。

      1.2 實(shí)驗(yàn)方法

      1.2.1 cDNA-HRP信號(hào)探針的合成 用PBS緩沖液(10 mmol/L,pH 7.4)將1 mg/mL鏈霉親和素修飾的HRP進(jìn)行稀釋,取996μL HRP稀釋液與8μL 10μmol/L生物素修飾的cDNA混合,在10℃條件下孵育3 h,即可得到cDNA-HRP信號(hào)探針,并于-20℃下保存。

      1.2.2 鏈霉親和素包被酶標(biāo)板 用碳酸鹽緩沖液(10 mmol/L,pH 9.6)將其上的鏈霉親和素進(jìn)行稀釋,每孔加入200μL,置于4℃冰箱中過夜,然后將酶標(biāo)板內(nèi)的液體甩干,再用PBST洗滌緩沖液(1×PBS緩沖液+體積分?jǐn)?shù)0.05%吐溫-20)清洗3次,每次1 min,在濾紙上拍干,為了防止實(shí)驗(yàn)中發(fā)生非特異吸附,加入200μL的BSA封閉液對(duì)未完全被鏈霉親和素包被的酶標(biāo)板進(jìn)行封閉,37℃條件下孵育1 h,用PBST洗滌緩沖液清洗3次,每次1 min,輕輕拍干。

      1.2.3 競(jìng)爭(zhēng)性酶聯(lián)適配體檢測(cè)ZEN 在鏈霉親和素包被的酶標(biāo)板中加入10μL生物素標(biāo)記的ZEN適配體,37℃條件下孵育30 min,拍干,用PBST緩沖洗滌液洗板3次,每次1 min,輕輕拍干。將100μL待測(cè)樣品加到酶標(biāo)板中,同時(shí)加入100μL cDNAHRP信號(hào)探針,混合均勻,25℃條件下孵育1 h,然后將酶標(biāo)板拍干,再用PBST洗滌緩沖液洗板3次,每次1 min,輕輕拍干。最后在每孔中加入100μL TMB顯色液,室溫放置20 min后,加入100μL的體積分?jǐn)?shù)2%H2SO4終止液,用酶標(biāo)儀測(cè)定在450 nm波長(zhǎng)處溶液的吸光度值。

      1.2.4 特異性實(shí)驗(yàn) 為驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)方法的特異性,應(yīng)用該實(shí)驗(yàn)建立的檢測(cè)方法對(duì)ZEN、FB1、DON、AFB1、OTA標(biāo)準(zhǔn)液和空白樣品同時(shí)進(jìn)行檢測(cè),實(shí)驗(yàn)中ZEN的質(zhì)量濃度為100 ng/mL,其他對(duì)照毒素質(zhì)量濃度為ZEN的10倍。用酶標(biāo)儀測(cè)定在450 nm波長(zhǎng)處溶液的吸光度值,通過比較450 nm處的吸光度值大小和溶液顏色深淺來評(píng)價(jià)本實(shí)驗(yàn)的特異性。

      1.2.5 實(shí)際樣品加標(biāo)回收測(cè)定 為驗(yàn)證基于競(jìng)爭(zhēng)性酶聯(lián)適配體檢測(cè)玉米赤霉烯酮在實(shí)際應(yīng)用中的可行性,用本地超市的啤酒和玉米樣品進(jìn)行加標(biāo)回收實(shí)驗(yàn)。樣品制備如下:將啤酒樣品置于4℃冰箱中30 min,再超聲30 min直至完全脫氣,將20 g溶解在50 mL體積分?jǐn)?shù)70%甲醇中,取10 mL溶液加入40 mL超純水中稀釋,隨后用0.22μm過濾膜過濾。同樣,將20 g粉碎的玉米溶于50 mL體積分?jǐn)?shù)70%甲醇,高速攪拌2 min,用定量濾紙過濾,然后將10 mL濾液轉(zhuǎn)移到40 mL超純水中稀釋,隨后用0.22μm過濾膜過濾。然后在啤酒和玉米樣品中加入ZEN標(biāo)準(zhǔn)溶液,加標(biāo)啤酒和玉米樣品的質(zhì)量濃度分別為0.70、1.40、7.00 ng/mL。取100μL不同濃度的加標(biāo)樣品用本實(shí)驗(yàn)方法檢測(cè),另外取100μL不同濃度的加標(biāo)樣品用購買的玉米赤霉烯酮酶聯(lián)免疫試劑盒檢測(cè),對(duì)兩種方法的檢測(cè)結(jié)果進(jìn)行分析和比較,以驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)所建立的檢測(cè)方法的準(zhǔn)確性和穩(wěn)定性。

      2 結(jié)果與討論

      2.1 檢測(cè)原理

      將生物素標(biāo)記的ZEN適配體固定在鏈霉親和素包被的微孔板上,適配體互補(bǔ)鏈cDNA與辣根過氧化物酶連接形成cDNA-HRP復(fù)合物作為信號(hào)探針,cDNA-HRP復(fù)合物和靶標(biāo)競(jìng)爭(zhēng)與適配體結(jié)合,加入TMB底物顯色液,在HRP的作用下,TMB被氧化為藍(lán)色,加入酸終止液后,溶液變?yōu)辄S色。靶標(biāo)濃度與溶液顏色深淺呈反比,通過測(cè)定溶液在450 nm處的吸光度值和觀察溶液顏色的深淺變化,即可實(shí)現(xiàn)對(duì)待測(cè)樣品中ZEN的可視化檢測(cè)。檢測(cè)原理見圖1。

      圖1 基于競(jìng)爭(zhēng)性酶聯(lián)適配體可視化檢測(cè)玉米赤霉烯酮的原理圖Fig.1 Schematic illustration of the visual detection of zearalenone based on competitive emzyme-linked aptamer assay

      2.2 實(shí)驗(yàn)條件的優(yōu)化

      2.2.1 鏈霉親和素包被濃度的優(yōu)化 生物素標(biāo)記的ZEN適配體通過生物素-親和素的連接固定于微孔板上,因此鏈霉親和素的包被量對(duì)檢測(cè)靈敏度有很大的影響。選取6個(gè)不同質(zhì)量濃度的鏈霉親和素(5、10、15、20、25、30μg/mL)包被微孔板進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。從圖2(a)可知,隨著鏈霉親和素質(zhì)量濃度的增加,溶液的吸光度值A(chǔ)450nm也不斷增大,當(dāng)鏈霉親和素質(zhì)量濃度達(dá)到20μg/mL后,A450nm值不再隨著質(zhì)量濃度的增加而增大,而是趨于平緩,說明包被微孔板的鏈霉親和素的量達(dá)到了飽和狀態(tài)。因此,選取20μg/mL鏈霉親和素為最佳包被質(zhì)量濃度。

      2.2.2 BSA封閉液濃度的優(yōu)化 為防止實(shí)驗(yàn)過程中發(fā)生非特異性吸附而影響檢測(cè)結(jié)果,在鏈霉親和素包被微孔板后加入BSA封閉液進(jìn)行封閉,BSA封閉液濃度低會(huì)產(chǎn)生非特異性吸附,而濃度高也會(huì)降低檢測(cè)靈敏度。因此,選取7個(gè)不同質(zhì)量濃度的BSA封閉液(0、5、10、15、20、25、30 mg/mL)進(jìn)行優(yōu)化,在空白樣品條件下測(cè)定溶液在450 nm處的吸光度值。從圖2(b)可知,隨著BSA質(zhì)量濃度的增大,A450nm值逐漸降低,表明微孔板底面的非特異性吸附不斷減少,當(dāng)BSA質(zhì)量濃度達(dá)到20 mg/mL后,A450nm值逐漸趨于平穩(wěn)不再下降,說明BSA已將微孔板底部未被鏈霉親和素包被的部分全部封閉。因此,BSA封閉液的最佳質(zhì)量濃度為20 mg/mL。

      2.2.3 適配體濃度的優(yōu)化 生物素標(biāo)記的ZEN適配體作為捕獲探針,能夠特異性識(shí)別和捕獲靶標(biāo)分子,并且能與cDNA-HRP信號(hào)探針互補(bǔ)雜交,從而實(shí)現(xiàn)待測(cè)樣品中ZEN的檢測(cè),因此,適配體的濃度對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果有較大影響。實(shí)驗(yàn)選取6個(gè)不同濃度的ZEN適配體(100、200、300、400、500、600 nmol/L)進(jìn)行空白樣品的檢測(cè)。從圖2(c)可知,隨著適配體濃度的增加,吸光度值A(chǔ)450nm也逐漸增大,當(dāng)適配體濃度達(dá)到200 nmol/L后,A450nm值趨于平緩不再增大,表明適配體濃度已經(jīng)達(dá)到飽和狀態(tài)。根據(jù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果,選擇200 nmol/L為最佳適配體濃度。

      2.2.4 HRP稀釋倍數(shù)的優(yōu)化 cDNA-HRP復(fù)合物作為實(shí)驗(yàn)中的信號(hào)探針,HRP能夠?qū)⒌孜锓肿覶MB催化氧化產(chǎn)生藍(lán)色反應(yīng)產(chǎn)物,HRP的濃度可影響ZEN的可視化檢測(cè)的靈敏度。同時(shí)檢測(cè)含靶標(biāo)樣品(ZEN質(zhì)量濃度為1 000 ng/mL)和空白樣品,當(dāng)兩者吸光度差值最大時(shí),即溶液顏色的區(qū)分度最大,所對(duì)應(yīng)的HRP稀釋倍數(shù)為最佳稀釋倍數(shù)。選取7個(gè)不同稀釋倍數(shù)的HRP(100、500、1 000、1 500、2 000、2 500、3 000倍),同時(shí)檢測(cè)含靶標(biāo)樣品和空白樣品。從圖2(d)可知,空白樣品的吸光度比含靶標(biāo)樣品的信號(hào)強(qiáng)度高,隨著HRP稀釋倍數(shù)的增大,溶液的信號(hào)強(qiáng)度也逐漸降低,當(dāng)HRP稀釋倍數(shù)為500倍時(shí),含靶標(biāo)樣品與空白樣品在450 nm處的吸光度差值最大,達(dá)到了最佳的比色效果,因此,最佳的HRP稀釋倍數(shù)為500倍。

      圖2 實(shí)驗(yàn)條件的優(yōu)化Fig.2 Optimization of experimental conditions

      2.3 標(biāo)準(zhǔn)曲線測(cè)定

      在最佳實(shí)驗(yàn)條件下,采用競(jìng)爭(zhēng)性酶聯(lián)適配體檢測(cè)不同濃度的ZEN,ZEN的系列標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)量濃度為1、10、100、1 000、10 000 ng/mL,以ZEN質(zhì)量濃度的對(duì)數(shù)值為橫坐標(biāo),溶液吸光度值A(chǔ)450nm為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。從圖3可知,ZEN質(zhì)量濃度在1~10 000 ng/mL范圍內(nèi)具有良好的線性關(guān)系,檢測(cè)限(3N/S,N為空白樣品信號(hào)的標(biāo)準(zhǔn)偏差,S為標(biāo)準(zhǔn)曲線的斜率)為0.7 ng/mL。與歐盟、澳大利亞和我國國家標(biāo)準(zhǔn)規(guī)定的食品中ZEN的最大限量(100、50、60μg/kg)相比,該實(shí)驗(yàn)所建立的競(jìng)爭(zhēng)性酶鏈適配體檢測(cè)方法能夠滿足ZEN定量檢測(cè)分析的要求。

      圖3 玉米赤霉烯酮濃度與450 nm處吸光度值之間的線性關(guān)系Fig.3 Linear relationship between zearalenoneconcentration and absorbance at 450 nm

      2.4 特異性檢測(cè)

      為驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)方法的特異性,防止假陽性現(xiàn)象的發(fā)生,應(yīng)用所構(gòu)建的方法對(duì)ZEN、FB1、DON、AFB1、OTA和空白樣品同時(shí)進(jìn)行檢測(cè)。從圖4可知,ZEN樣品孔的吸光度值A(chǔ)450nm較低,顏色較淺,其余對(duì)照真菌毒素和空白樣品孔的吸光度值A(chǔ)450nm都較高,溶液顏色也較深。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明此競(jìng)爭(zhēng)性酶聯(lián)適配體檢測(cè)ZEN方法具有較高的特異性,可用于ZEN的特異性檢測(cè)。

      圖4 競(jìng)爭(zhēng)性酶鏈適配體檢測(cè)方法的特異性實(shí)驗(yàn)結(jié)果Fig.4 Specific experimental results of the visual detection of zearalenone based on competitive emzymelinked aptamer assay

      2.5 食品樣品加標(biāo)回收檢測(cè)

      為驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)方法的準(zhǔn)確性,用酶聯(lián)免疫檢測(cè)法與該方法進(jìn)行對(duì)照。將從超市購買的啤酒和玉米樣品進(jìn)行前處理后,分別向2個(gè)樣品中加入3種不同質(zhì)量濃度的ZEN標(biāo)準(zhǔn)液,每個(gè)質(zhì)量濃度做3組平行對(duì)照,分別用兩種方法進(jìn)行ZEN的加標(biāo)回收檢測(cè)。從表1可知,啤酒樣品回收率為88.57%~102.14%,玉米樣品回收率為91.43%~106.43%,與酶聯(lián)免疫法對(duì)比,實(shí)驗(yàn)結(jié)果相差不大,表明了該實(shí)驗(yàn)方法具有準(zhǔn)確性和穩(wěn)定性,可用于不同食品樣品檢測(cè)。

      表1 啤酒和玉米樣品中ZEN加標(biāo)回收檢測(cè)結(jié)果(n=3)Table 1 Spike recovery results of ZEN in beer and corn samples(n=3)

      3 結(jié)語

      作者建立了一種基于競(jìng)爭(zhēng)性酶聯(lián)適配體檢測(cè)玉米赤霉烯酮的方法,該方法檢測(cè)靈敏度高、特異性好且成本低,能用肉眼判斷實(shí)驗(yàn)結(jié)果,不需要特殊的儀器檢測(cè)。方法的檢測(cè)限為0.7 ng/mL,在1~10 000 ng/mL范圍內(nèi)具有良好的線性關(guān)系(R2=0.991 3),啤酒和玉米樣品加標(biāo)回收率分別為88.57%~102.14%和91.43%~106.43%,與酶聯(lián)免疫法實(shí)驗(yàn)結(jié)果對(duì)比無明顯差異,檢測(cè)穩(wěn)定性好、準(zhǔn)確性高,可用于食品中玉米赤霉烯酮的可視化檢測(cè),對(duì)食品中小分子危害物質(zhì)的檢測(cè)具有重大意義。

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