王恩瑩 晁琳珂 郝素曉 盧艷芬 姚允聰
摘要?探究GID2基因在調(diào)控植物生長發(fā)育方面的作用機(jī)制。從蘋果矮化砧木“SH6”中克隆到GID2-1和GID2-2基因,運(yùn)用MEGA7、SWISS-MODEL、DNAMAN 7.0等生物信息學(xué)工具分析其序列、蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu);通過qRT-PCR分析GID2-1和GID2-2基因在不同激素處理下的表達(dá)情況。序列分析表明,GID2-1基因的CDS序列長度為591 bp,GID2-2為597 bp,分別編碼196、198個(gè)氨基酸的蛋白質(zhì);GID2基因具有F-box結(jié)構(gòu)域。qRT-PCR分析表明,在GA處理下,表達(dá)量下調(diào);相反,在PAC處理下其表達(dá)量上調(diào)。結(jié)果表明,GID2基因可能在蘋果生長發(fā)育方面發(fā)揮重要作用。
關(guān)鍵詞?SH6;GID2;生長發(fā)育;生物信息學(xué);赤霉素
中圖分類號(hào)?Q943.2?文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼?A?文章編號(hào)?0517-6611(2021)09-0104-05
doi:10.3969/j.issn.0517-6611.2021.09.026
Abstract?In order to explore the mechanism of GID2 gene in regulating plant growth and development. The GID2-1 and GID2-2 genes from the apple dwarf rootstock “SH6”?were cloned, and?their sequence and protein structure were analyzed using bioinformatics tools such as MEGA7, SWISS-MODEL, DNAMAN7.0. The expression of GID2-1 and GID2-2 genes under different hormone treatments was analyzed by qRT-PCR. Sequence analysis showed that the CDS sequence of GID2-1 gene was 591 bp in length,GID2-2 was 597 bp,?respectively encoding a protein of 196, 198 amino acids;GID2 gene had F-box domain. qRT-PCR analysis showed that the expression level was down-regulated under GA treatment;on the contrary, its expression level was up-regulated under PAC treatment. The results indicated that GID2 gene may play an important role in apple growth and development.
Key words?SH6;GID2;Growth and development;Bioinformatics;Gibberellin
赤霉素(GA)是植物生長發(fā)育過程中不可或缺的一類重要植物激素,影響植物許多發(fā)育過程,包括種子萌發(fā)、莖伸長、花粉成熟和誘導(dǎo)開花等方面[1]。在20世紀(jì)60年代,赤霉素對(duì)植物株高的影響較大,在“綠色革命”期間,半矮化品種的發(fā)展表明了赤霉素響應(yīng)信號(hào)途徑的改變導(dǎo)致糧食產(chǎn)量的巨大增加[2]。隨著赤霉素信號(hào)途徑元件的克隆與表達(dá)分析,赤霉素信號(hào)通路的大部分成分已經(jīng)在水稻和擬南芥中鑒定出來,主要包括GA受體GID1、生長抑制蛋白DELLAs和F-box蛋白(擬南芥為SLY1,水稻為GID2)[1],研究表明,DELLA蛋白對(duì)植物生長具有負(fù)調(diào)控作用,GA信號(hào)通過克服DELLA蛋白介導(dǎo)生長的抑制作用來促進(jìn)植株高度[3],并提出了GA-GID1-DELLA復(fù)合物來感知GA信號(hào)從而調(diào)控植物生長的機(jī)制[4-6]。
赤霉素如何抑制DELLAs成為研究的一個(gè)熱點(diǎn),研究表明通過對(duì)功能缺失突變體gid2-1和sly1-10的GA不敏感矮化表型的分析,發(fā)現(xiàn)水稻中GID2蛋白和擬南芥SLY1蛋白均含有F-box保守結(jié)構(gòu)域,其是GA信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)過程中的正調(diào)控因子[7-8],通過催化多泛素鏈附著到DELLA蛋白上,從而使26S蛋白酶體降解DELLA蛋白,消除其對(duì)植物生長的抑制作用[9]。當(dāng)GA濃度較低時(shí),DELLA蛋白與轉(zhuǎn)錄因子或調(diào)節(jié)蛋白相互作用阻礙GA信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)過程,或者激活與轉(zhuǎn)錄因子(TF)相關(guān)靶基因的轉(zhuǎn)錄過程。當(dāng)GA濃度升高后,GA與其受體蛋白GID1相結(jié)合,識(shí)別DELLA蛋白,形成GA-GID1-DELLA復(fù)合物,誘導(dǎo)DELLA蛋白GRAS結(jié)構(gòu)域的構(gòu)象發(fā)生改變,從而使其DELLA的VHIID和LHRII基序識(shí)別F-box蛋白SLY1/GID2[10]。同時(shí)SCFSLY1-GID2復(fù)合物反過來促進(jìn)DELLA蛋白被多泛素化,然后經(jīng)26S蛋白酶體降解,從而響應(yīng)GA反應(yīng)[7-8,11-13]。
蘋果屬植物采用矮化密植方式,有利于管理[14],結(jié)果早,果實(shí)品質(zhì)好。我國果樹生產(chǎn)中經(jīng)常采用的主要致矮方式是應(yīng)用矮化中間砧木[15-17]。“SH6”矮化砧木是由國光蘋果與武鄉(xiāng)海棠的芽變種S19雜交得到的一種優(yōu)良蘋果半矮化中間砧木,與親本相比較,“SH6”在株高、枝皮率、尖削度、節(jié)間長度等方面具有更穩(wěn)定的抗性及矮化優(yōu)勢(shì)[18]。研究發(fā)現(xiàn),在SH6系幼樹的中間砧部位進(jìn)行培土,可以促進(jìn)樹體的營養(yǎng)生長[19]。為了詳細(xì)闡明果樹矮化調(diào)控機(jī)理,國內(nèi)外眾多研究者對(duì)果樹矮化栽培育種開展了廣泛研究,但目前對(duì)其分子機(jī)理研究尚不清晰。因此,研究在GID2基因調(diào)控下半矮化中間砧木“SH6”的生長發(fā)育,為研究GA信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑相關(guān)基因的分子機(jī)制提供理論依據(jù),對(duì)調(diào)控果樹生長發(fā)育過程具有極其重要的意義[20]。
1?材料與方法
1.1?試驗(yàn)材料
以蘋果屬植物“SH6”(Malus sp.SH6)為材料,自北京農(nóng)學(xué)院組培中心采樣,選取植物葉片進(jìn)行試驗(yàn)。冷凍于液氮中,置于-80 ℃冰箱保存。
1.2?試驗(yàn)方法
1.2.1?蘋果屬植物GID2基因克隆。
RNA的提?。悍Q量0.1 g凍存于-80 ℃的植物葉片,采用EASYspin植物RNA快速提取試劑盒(北京艾德萊生物科技有限公司,北京)提取“SH6”葉片的總RNA。
合成cDNA:利用cDNA合成試劑盒(寶生物工程(大連)有限公司,日本)將提取的‘SH6葉片總RNA反轉(zhuǎn)錄生成cDNA。
引物的設(shè)計(jì)與合成:根據(jù)NCBI公布的蘋果同源基因MdGId2-1(XP_028962684.1)、MdGID2-2(XP_008393765.1),利用Editseq工具設(shè)計(jì)引物,序列見表1。
基因克隆PCR反應(yīng)體系(50 μL):cDNA模板2 μL;GID2-F(10 μmol/L)1 μL;10 μmol/L(GID2-R)1 μL;TransStart FastPfu Fly DNA Polymerase(北京全式金生物公司,北京)25 μL;H2O 21 μL。
基因克隆PCR反應(yīng)條件:95 ℃ 2 min;95 ℃ 20 s,58 ℃ 20 s,72 ℃ 10 s,40個(gè)循環(huán),72 ℃ 5 min,4 ℃保存。
PCR產(chǎn)物純化回收,連入pEASY-Blunt Cloning Vector載體后,轉(zhuǎn)入Trans T1大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞(北京全式金生物公司,北京)進(jìn)行轉(zhuǎn)化子鑒定,選取5個(gè)陽性克隆進(jìn)行測(cè)序。
1.2.2?GID2基因的生物信息學(xué)分析。
利用ProtParam網(wǎng)頁在線分析工具計(jì)算蛋白質(zhì)理化性質(zhì),如等電點(diǎn)、分子質(zhì)量等信息,預(yù)測(cè)其蛋白質(zhì)的疏水性功能;利用DNAMAN 7.0對(duì)檢索到的相關(guān)基因的氨基酸序列進(jìn)行同源性分析;利用TMHMM工具與SignalP4.0工具分析跨膜結(jié)構(gòu)和信號(hào)肽;利用NPS@的SOPMA工具對(duì)GID2-1和GID2-2二級(jí)結(jié)構(gòu)進(jìn)行預(yù)測(cè);利用NCBI CD-search分析蛋白質(zhì)保守結(jié)構(gòu)域;利用SWISS-MODEL工具預(yù)測(cè)分析蛋白質(zhì)的三級(jí)結(jié)構(gòu);利用MEGA 7序列比對(duì)軟件構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹。
1.2.3?GID2基因在不同激素處理中的表達(dá)分析。
在“SH6”組培苗正常生長至三葉期,對(duì)其進(jìn)行不同激素處理:正常的MS培養(yǎng)基中,分別加入10 μmol/L的PAC與50 μmol/L的GA。處理后20 d取樣,用于基因表達(dá)分析。使用植物RNA提取試劑盒提取“SH6”葉片總RNA。反轉(zhuǎn)錄合成cDNA,使用CFX96TM Real Time PCR System進(jìn)行qRT-PCR試驗(yàn)。
qRT-PCR反應(yīng)體系(50 μL):cDNA模板2 μL;qGID2-F(10 μmol/L)1 μL;qGID2-R(10 μmol/L)1 μL;2×SYBR Green qPCR Mix 10 μL;H2O 6 μL。
qRT-PCR反應(yīng)條件:95 ℃ 10 min;95 ℃ 20 s、60 ℃ 30 s、72 ℃ 30 s,30個(gè)循環(huán);72 ℃ 2 min;4 ℃ 保存。
取3個(gè)生物學(xué)重復(fù),并進(jìn)行3次獨(dú)立的試驗(yàn)。并通過使用Malus 18S核糖體RNA基因作為內(nèi)參基因的相對(duì)定量來測(cè)定轉(zhuǎn)錄水平。
1.3?數(shù)據(jù)處理
采用Excel 2007和SPSS軟件對(duì)試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行方差分析。
2?結(jié)果與分析
2.1?“SH6”植物葉片GID2基因克隆
以蘋果屬植物“SH6”葉片的cDNA為模板,克隆GID2基因,利用瓊脂糖凝膠電泳的方法,檢測(cè)得到目的條帶(圖1)。
回收純化目的條帶后,將其連接到Blunt載體上,挑選單克隆進(jìn)行菌落PCR,選擇陽性菌測(cè)序。測(cè)序結(jié)果顯示,“SH6”中GID2的CDS序列全長分別為GID2-1長591 bp,編碼196個(gè)氨基酸;GID2-2長597 bp,編碼198個(gè)氨基酸。
2.2?蘋果屬植物“SH6”GID2基因序列分析
利用ProtParam在線分析軟件對(duì)預(yù)測(cè)氨基酸序列信息發(fā)現(xiàn)GID2-1蛋白的等電點(diǎn)是7.70,分子量為21 kD,是不穩(wěn)定的蛋白質(zhì),其不穩(wěn)定系數(shù)達(dá)58.35,親水性值為-0.412(預(yù)測(cè)為親水性蛋白質(zhì));GID2-2蛋白的等電點(diǎn)是7.67,分子量是21 kD,是不穩(wěn)定蛋白質(zhì),不穩(wěn)定系數(shù)達(dá)62.92,親水性值為-0.448(親水性蛋白質(zhì))。利用DNAMAN7.0軟件對(duì)“SH6”GID2基因的CDS區(qū)進(jìn)行同源性比較,結(jié)果表明,GID2-1和GID2-2同源性為87.18%(圖2)。TMHMM和SignalP4.0結(jié)果分析顯示GID2-1和GID2-2均沒有跨膜結(jié)構(gòu)和信號(hào)肽(圖3)。
通過NPS@的SOPMA工具對(duì)GID2-1和GID2-2二級(jí)結(jié)構(gòu)進(jìn)行預(yù)測(cè),發(fā)現(xiàn)GID2-1蛋白中α-螺旋比例占54.08%,延伸鏈占比3.57%,無規(guī)則卷曲占比40.31%,β-轉(zhuǎn)角最少僅占比2.04%;GID2-2蛋白中α-螺旋占比50.51%,無規(guī)則卷曲占比39.39%,延伸鏈占比6.06%,β-轉(zhuǎn)角僅占比4.04%(圖4)。
2.3?GID2蛋白保守結(jié)構(gòu)域與三級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)分析
利用NCBI CD-esarch對(duì)GID2-1和GID2-2蛋白的保守結(jié)構(gòu)域進(jìn)行預(yù)測(cè)分析,發(fā)現(xiàn)GID2-1和GID2-2蛋白均含有F-box保守結(jié)構(gòu)域,F(xiàn)-box保守結(jié)構(gòu)域是SCF復(fù)合體的亞基,參與蛋白質(zhì)泛素化降解過程。進(jìn)一步利用SWISS-MODEL在線分析軟件對(duì)GID2-1和GID2-2進(jìn)行同源建模預(yù)測(cè)其三級(jí)結(jié)構(gòu)含有F-box蛋白結(jié)構(gòu)域,其保守結(jié)構(gòu)域和二級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)分析結(jié)果一致(圖5、6)。
2.4?系統(tǒng)進(jìn)化結(jié)果分析
通過MEGA 7.0工具構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹,比對(duì)克隆得到的GID2-1和GID2-2蛋白與NCBI中檢索到的其他物種的同源蛋白,發(fā)現(xiàn)GID2-1和GID2-2基因分別與蘋果的GID2基因聚類在同一分支上,親緣關(guān)系最近。這說明GID2蛋白可能在赤霉素信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑中發(fā)揮作用,參與調(diào)控植物生長發(fā)育(圖7)。
2.5?GID2基因在不同激素處理中的表達(dá)分析
通過qRT-PCR檢測(cè)在MS、GA、PAC 3種不同處理下“SH6”葉片基因表達(dá)水平。結(jié)果表明,在GA處理下,GID2-1和GID2-2基因表達(dá)量顯著下降,在PAC處理下,GID2-1和GID2-2基因表達(dá)水平顯著升高。這一結(jié)果證明GID2基因確實(shí)調(diào)控GA信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)過程(圖8)。
3?討論
赤霉素(GA)作為一類調(diào)控植物株型的重要植物激素,在莖的伸長、種子萌發(fā)及果實(shí)發(fā)育等方面中扮演著重要角
色。目前已有大量研究表明,水稻、擬南芥等植物中已經(jīng)發(fā)現(xiàn)赤霉素信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑的相關(guān)元件,包括GA的受體蛋白GID1、負(fù)調(diào)控因子DELLA蛋白以及F-box蛋白GID2和SLY1。當(dāng)GA濃度較低時(shí),DELLA蛋白對(duì)植物的生長發(fā)育過程產(chǎn)生抑制作用。相反,當(dāng)GA濃度升高時(shí),GA與受體蛋白GID1相結(jié)合,與DELLA蛋白相互作用,三者之間形成了GA-GID1-DELLA復(fù)合物,被SCFSLY1/GID2復(fù)合物識(shí)別并催化,導(dǎo)致DELLA蛋白的泛素化,最終被26S蛋白酶體降解,從而下游信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)過程被激活,調(diào)節(jié)植物株高。GA信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑中關(guān)于株高相關(guān)基因的克隆分析與分子機(jī)制研究,對(duì)探究如何調(diào)控植物生長發(fā)育具有極其重要的參考意義,為農(nóng)業(yè)生產(chǎn)實(shí)踐提供了理論依據(jù)。
從蘋果矮化中間砧木“SH6”葉片中分離得到CDS全長為591 bp的GID2-1和全長為 597 bp 的GID2-2基因,分別編碼196、198個(gè)氨基酸。進(jìn)一步分析發(fā)現(xiàn)GID2-1與GID2-2的CDS序列同源性高,其蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)具有F-box保守結(jié)構(gòu)域。系統(tǒng)進(jìn)化樹分析GID2蛋白與Malus domestica中的GID2蛋白親緣關(guān)系較近,且與擬南芥的SLY1蛋白在進(jìn)化中有相同起源?!癝H6”的GID2基因在不同處理下的表達(dá)水平顯示其參與GA信號(hào)調(diào)控。因此推測(cè)其可能具有調(diào)控植物生長發(fā)育的作用。
該研究克隆和分析了“SH6”中的GID2-1和GID2-2基因,探究在不同處理下GID2-1和GID2-2基因表達(dá)的影響,有助于深入研究GID2蛋白在調(diào)控蘋果株高的分子機(jī)制,為“SH6”作為蘋果矮化中間砧木的應(yīng)用奠定理論基礎(chǔ)。
參考文獻(xiàn)
[1] ACHARD P,GENSCHIK P.Releasing the brakes of plant growth:How GAs shutdown DELLA proteins[J].Journal of experimental botany,2009,60(4):1085-1092.
[2] DAVIRE J M,ACHARD P.Gibberellin signaling in plants[J].Development,2013,140(6):1147-1151.
[3] HARBERD N P.Relieving DELLA restraint[J].Science,2003,299(5614):1853-1854.
[4] GRIFFITHS J,MURASE K,RIEU I,et al.Genetic characterization and functional analysis of the GID1 gibberellin receptors in Arabidopsis[J].The plant cell,2006,18(12):3399-3414.
[5] UEGUCHI-TANAKA M,NAKAJIMA M,KATOH E,et al.Molecular interactions of a soluble gibberellin receptor,GID1,with a rice DELLA protein,SLR1,and gibberellin[J].The plant cell,2007,19(7):2140-2155.
[6] WILLIGE B C,GHOSH S,NILL C,et al.The DELLA domain of GA INSENSITIVE mediates the interaction with the GA INSENSITIVE DWARF1A gibberellin receptor of Arabidopsis[J].The plant cell,2007,19(4):1209-1220.
[7] SASAKI A,ITOH H,GOMI K,et al.Accumulation of phosphorylated repressor for gibberellin signaling in an F-box mutant[J].Science,2003,299(5614):1896-1898.
[8] MCGINNIS K M,THOMAS S G,SOULE J D,et al.The Arabidopsis SLEEPY1 gene encodes a putative F-box subunit of an SCF E3 ubiquitin ligase[J].The plant cell,2003,15(5):1120-1130.
[9] LECHNER E,ACHARD P,VANSIRI A,et al.F-box proteins everywhere[J].Current opinion in plant biology,2006,9(6):631-638.
[10] HIRANO K,ASANO K,TSUJI H,et al.Characterization of the molecular mechanism underlying gibberellin perception complex formation in rice[J].The plant cell,2010,22(8):2680-2696.
[11] DAVIRE J M,ACHARD P.A pivotal role of DELLAs in regulating multiple hormone signals[J].Molecular plant,2016,9(1):10-20.
[12] DILL A,THOMAS S G,HU J H,et al.The Arabidopsis F-box protein SLEEPY1 targets gibberellin signaling repressors for gibberellin-induced degradation[J].The plant cell,2004,16(6):1392-1405.
[13] FU X D,RICHARDS D E,F(xiàn)LECK B,et al The Arabidopsis mutant sleepy1gar2-1 protein promotes plant growth by increasing the affinity of the SCFSLY1 E3 ubiquitin ligase for DELLA protein substrates[J].The plant cell,2004,16(6):1406-1418.
[14] 李正之.果樹矮化密植[M].上海:上??茖W(xué)技術(shù)出版社,1982.
[15] 馬寶焜,徐繼忠,孫建設(shè).關(guān)于我國蘋果矮砧密植栽培的思考[J].果樹學(xué)報(bào),2010,27(1):105-109.
[16] 李丙智,韓明玉,張林森,等.我國矮砧蘋果生產(chǎn)現(xiàn)狀與發(fā)展緩慢的原因分析及建議[J].煙臺(tái)果樹,2010(2):1-4.
[17] 顧文毅,劉小利.矮化砧木在青海地產(chǎn)軟兒梨樹上的應(yīng)用[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2013,41(21):8932-8933,8935.
[18] 郝素曉.赤霉素介導(dǎo)RNA結(jié)合蛋白調(diào)控蘋果砧木矮化特性研究[D].重慶:西南大學(xué),2019.
[19] 李洪娜,彭玲,姜翰,等.中間砧不同埋土深度對(duì)蘋果幼樹葉片保護(hù)酶活性和植株生長的影響[J].山東農(nóng)業(yè)科學(xué),2014,46(4):39-42.
[20] 魏靈珠,程建徽,李琳,等.赤霉素生物合成與信號(hào)傳遞對(duì)植物株高的調(diào)控[J].生物工程學(xué)報(bào),2012,28(2):144-153.