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      D NA甲基化對鄰苯二甲酸單乙基己酯致小鼠睪丸間質(zhì)細(xì)胞損傷的作用

      2021-06-24 17:32:06翁曉夢德小明李麗萍宋貝貝黃金瑞郭曉英馬慧穎
      關(guān)鍵詞:染毒甲基化熒光

      翁曉夢,李 玲,德小明,李麗萍,宋貝貝,黃金瑞,郭曉英,馬慧穎

      (寧夏醫(yī)科大學(xué)公共衛(wèi)生與管理學(xué)院職業(yè)衛(wèi)生與環(huán)境衛(wèi)生學(xué)系,寧夏環(huán)境因素與慢性病控制重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,生育力保持教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,銀川 750004)

      鄰苯二甲酸酯類物質(zhì)(phthalic acid esters,PAEs)是一種環(huán)境內(nèi)分泌干擾物,其中鄰苯二甲酸二(2-乙基己)酯(DEHP)作為廣泛使用的增塑劑,常用做聚氯乙烯(PVC)制品、塑料袋、工業(yè)涂料、化妝品、食品包裝、輸血袋等的原料,是迄今為止我國產(chǎn)耗量最大、應(yīng)用最為廣泛的增塑劑類型[1],被列為人類可能致癌物(IARC分類為Group2B[2]。DEHP進(jìn)入體內(nèi)后通過哺乳動(dòng)物腸道水解酶的作用代謝為鄰苯二甲酸單乙基己基酯(MEHP),研究表明MEHP毒性高于DEHP,在PAEs致生殖發(fā)育毒性中發(fā)揮主要作用[3]。體內(nèi)外研究結(jié)果證實(shí)[4],在胚胎期暴露環(huán)境內(nèi)分泌干擾物引起的表觀遺傳修飾,可以誘導(dǎo)基因表達(dá)的改變,并且這種改變可能在整個(gè)生命周期中持續(xù)存在,表觀遺傳學(xué)最主要的表達(dá)方式之一是DNA甲基化,在MEHP致睪丸間質(zhì)細(xì)胞(TM-3)雄性生殖毒性的研究中,對DNA甲基化水平的研究尚不夠深入,因此本研究擬從表觀遺傳學(xué)的角度來深入探討MEHP的雄性生殖毒性機(jī)制,進(jìn)而為后續(xù)的靶向研究提供理論依據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1 細(xì)胞株來源、主要儀器和試劑

      睪丸間質(zhì)細(xì)胞株(TM-3細(xì)胞,美國ATCC細(xì)胞研究中心)。HF90 CO2培養(yǎng)箱(中國上海力申科學(xué)儀器有限公司),SW-CJ-1CU超凈工作臺(中國蘇州安泰空氣技術(shù)有限公司),CKX41倒置相差顯微鏡(日本Olympus公司),Neofuge15R高速冷凍離心機(jī)(中國上海力申科學(xué)儀器有限公司),I510全波長酶標(biāo)儀(芬蘭賽默飛世爾公司),LDZM-40KCS-II立式壓力蒸汽滅菌器(中國上海申安醫(yī)療器械廠),BioRad熒光實(shí)時(shí)定量PCR儀(上海伯樂生命醫(yī)學(xué)產(chǎn)品有限公司)。

      MEHP標(biāo)準(zhǔn)品(純度為97%,美國Sigma公司),DMEM培養(yǎng)基、青鏈霉素混合液、胰酶、胎牛血清、DMSO等(美國Gibco公司),CCK-8細(xì)胞增殖檢測試劑盒,Hoechst熒光染色試劑盒(中國江蘇凱基生物有限公司),5-甲基胞嘧啶(5-mc)免疫熒光抗體(美國CST公司),熒光二抗(中國北京中杉金橋),柱形核酸純化產(chǎn)品、Prime-ScriptTMRT Master Mix反轉(zhuǎn)錄試劑盒、TB Green Premix Ex TaqTMⅡ?qū)崟r(shí)熒光定量試劑盒(大連寶生物工程有限公司)、目的基因及內(nèi)參基因引物(中國上海生工生物公司),其他試劑均為國產(chǎn)分析純。

      MEHP染毒液配制:用適量的無菌DMSO標(biāo)準(zhǔn)品稀釋質(zhì)量為0.5 g MEHP標(biāo)準(zhǔn)品,配制成濃度為1.80 mol·L-1母液,然后用無菌培養(yǎng)基梯度稀釋成0(對照組)、50、100、200、400、800μmol·L-1的染毒液備用。

      1.2 TM-3細(xì)胞培養(yǎng)

      復(fù)蘇TM-3細(xì)胞,離心棄掉凍存液,加入新配制濃度為10%的完全培養(yǎng)基,培養(yǎng)48 h后換液;待細(xì)胞增殖至對數(shù)生長期,吸棄舊培養(yǎng)基,加入2 mL PBS清洗,清洗結(jié)束后加入1 mL胰酶消化30 s,然后加入4 mL完全培養(yǎng)基終止消化,制成單細(xì)胞混懸液,平均分置兩個(gè)新培養(yǎng)瓶;新培養(yǎng)瓶中加入完全培養(yǎng)液定容至4 mL,混勻,于37℃、5%CO2、100%相對濕度培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24~48 h,待細(xì)胞進(jìn)入對數(shù)生長期,進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

      1.3 CCK-8法檢測細(xì)胞活力

      取處于對數(shù)生長期的TM-3細(xì)胞,胰酶消化后加入完全培養(yǎng)基配成細(xì)胞混懸液,然后吸取100μL加入96孔板(約7000個(gè)細(xì)胞/孔),置于37℃、5%CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)數(shù)小時(shí)。待細(xì)胞貼壁后棄去培養(yǎng)基并加入濃度為0、50、100、200、400、800μmol·L-15個(gè)梯度的MEHP染毒液,再將96孔板放置于37℃、5%CO2、100%濕度的細(xì)胞培養(yǎng)箱中孵育24 h。向各孔中加入10μL的CCK-8檢測液,37℃孵育1~2 h后,在酶標(biāo)儀450 nm波長下檢測各孔光密度(OD)值并計(jì)算細(xì)胞活力(%)=[(染毒組OD-空白組OD)/(對照組OD-空白組OD)]×100%。

      1.4 光學(xué)顯微鏡觀察細(xì)胞形態(tài)

      取處于對數(shù)生長期的TM-3細(xì)胞,胰酶消化后加入完全培養(yǎng)基配成細(xì)胞混懸液,吸取1 mL細(xì)胞混懸液并加入9 mL完全培養(yǎng)基至15 mL的離心管中,分別吸取1 mL細(xì)胞懸液加入4個(gè)培養(yǎng)瓶中,并定容至4 mL,待細(xì)胞鋪滿瓶底60%~70%,加入上述5個(gè)梯度的MEHP染毒液,24 h后于光學(xué)顯微鏡下(×400)進(jìn)行觀察。

      1.5 5-mc免疫熒光法檢測細(xì)胞總甲基化水平

      實(shí)驗(yàn)原理:通過檢測5-mc的含量來推斷細(xì)胞整體甲基化水平,熒光信號強(qiáng)度可以直接反映細(xì)胞總甲基化水平的高低。

      方法:用清潔蓋玻片(14 mm×14 mm)放入24孔板細(xì)胞培養(yǎng)孔中,然后接種少量細(xì)胞進(jìn)行培養(yǎng),待細(xì)胞爬片后(6~8 h),對細(xì)胞進(jìn)行染毒并培養(yǎng)24 h,染毒結(jié)束后用PBS輕柔漂洗3次,每次5 min吸凈PBS后加入1 mL 4%多聚甲醛于室溫固定(20 min),然后去掉多余甲醛再用PBS輕柔漂洗3次;繼續(xù)加入0.3%Triton-100 1 mL,進(jìn)行透化處理(40 min),清洗同上,繼續(xù)加入5%BSA溶液,室溫封閉1 h,吸盡BSA溶液,在每個(gè)爬片加入100μL一抗,4℃過夜,清洗同上;第2天,每個(gè)爬片加入100μL二抗,于室溫避光孵育1 h,清洗同上,最后在載玻片上加一滴抗淬滅劑,用鑷子取出爬片輕輕倒扣在載玻片上,在熒光顯微鏡下進(jìn)行觀察。在相同熒光顯微鏡觀察條件下隨機(jī)選取3個(gè)視野拍照,并用Image J軟件計(jì)算平均單個(gè)視野下的熒光強(qiáng)度。

      1.6 RT-PCR檢測DNA甲基轉(zhuǎn)移酶(DNMTs)mRNA表達(dá)水平

      用柱形核酸純化試劑盒提取TM-3細(xì)胞總RNA,然后根據(jù)反轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書進(jìn)行cDNA合成,以此為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增(引物序列見表1),擴(kuò)增條件:95℃30 s,95℃5 s,55℃30 s,40個(gè)循環(huán)。并以95℃10 s,65℃5 s,95℃5 s,測定熔解曲線,以β-肌動(dòng)蛋白(β-actin)作為內(nèi)參基因,DNMTs(包括DNMT1、DNMT3A、DNMT3B)相關(guān)基因mRNA相對含量用2-ΔΔCt方法進(jìn)行計(jì)算。

      表1 DNMTs相關(guān)基因引物序列

      1.7 Hoechst33258熒光染色觀察細(xì)胞凋亡變化

      TM-3細(xì)胞爬片同免疫熒光的操作過程,染毒結(jié)束后,用預(yù)冷的Buffer A洗滌細(xì)胞2次,加入1 mL的4%多聚甲醛溶液,固定細(xì)胞10 min,繼續(xù)用Buffer A洗2遍,最后滴加50~100μL Hoechst33258工作液,室溫染色10 min,水沖凈晾干,在相同熒光顯微鏡觀察條件下隨機(jī)選取3個(gè)視野拍照,并用Image J軟件計(jì)算平均單個(gè)視野下的熒光強(qiáng)度,熒光強(qiáng)弱可間接反映MEHP誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡變化的程度。

      1.8 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

      數(shù)據(jù)采用SPSS 25.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行分析,每項(xiàng)實(shí)驗(yàn)均重復(fù)3次以上,計(jì)量資料用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,多組間的比較采用單因素方差分析,進(jìn)一步兩兩比較用LSD法。檢驗(yàn)水準(zhǔn)取α=0.05。

      2 結(jié)果

      2.1 MEHP對TM-3細(xì)胞活力的影響

      預(yù)實(shí)驗(yàn)設(shè)置毒物濃度梯度為0、50、100、200、400、800μmol·L-1,染毒24 h后測定OD值;與對照組相比,細(xì)胞活力下降(P均<0.01),見表2。運(yùn)用Graphpad prism 6.0計(jì)算MEHP的IC50為354.4μmol·L-1,因此選取MEHP終濃度200、400、800μmol·L-1作為后續(xù)實(shí)驗(yàn)的染毒濃度。

      表2 不同濃度MEHP作用24 h對TM-3細(xì)胞活力的影響(n=3,±s)

      表2 不同濃度MEHP作用24 h對TM-3細(xì)胞活力的影響(n=3,±s)

      與對照組相比**P<0.01。

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      2.2 不同濃度MEHP作用24 h后TM-3細(xì)胞形態(tài)學(xué)變化

      正常細(xì)胞呈梭形、多邊形等不規(guī)則形狀生長,隨著染毒劑量的增加,貼壁細(xì)胞數(shù)量逐漸減少,細(xì)胞核呈現(xiàn)空泡化,條索狀細(xì)胞增多,且漂浮的死亡細(xì)胞數(shù)逐漸增加,見圖1。

      圖1 不同濃度MEHP作用24 h后TM-3細(xì)胞形態(tài)學(xué)變化(×100)

      2.3 MEHP對TM-3細(xì)胞總甲基化水平的影響

      與對照組比較,200μmol·L-1組熒光信號最強(qiáng),400μmol·L-1組次之,800μmol·L-1組最弱,不同濃度MEHP暴露均可引起TM-3細(xì)胞總甲基化水平降低(P均<0.01),見圖2、表3。

      圖2不同濃度MEHP作用24 h對TM-3細(xì)胞5-mc表達(dá)水平的影響(×200)

      表3 不同濃度MEHP作用24 h后TM-3細(xì)胞總甲基化水平的變化(n=3,±s)

      表3 不同濃度MEHP作用24 h后TM-3細(xì)胞總甲基化水平的變化(n=3,±s)

      與對照組相比**P<0.01。

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      2.4 MEHP對TM-3細(xì)胞DNMTs mRNA表達(dá)水平的影響

      RT-PCR結(jié)果顯示:與對照組相比,200μmol·L-1組DNMT1mRNA(1.15±0.08)、DNMT3BmRNA(2.28±0.15)相對表達(dá)水平均高于對照組(P<0.05或<0.01);DNMT3AmRNA(1.03±0.12)表達(dá)水平兩組間差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);400μmol·L-1組DNMT1mRNA(0.83±0.05)低于對照組(P<0.01),DNMT3AmRNA(1.91±0.44)和DNMT3BmRNA(2.50±0.09)表達(dá)水平高于對照組(P<0.05或<0.01);800μmol·L-1組DNMT1mRNA(0.50±0.08)低于對照組,DNMT3AmRNA(2.40±0.51)高于對照組(P<0.01),DNMT3BmRNA(1.02±0.01)表達(dá)水平和對照組相比差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),見圖3。

      圖3不同濃度MEHP對TM-3細(xì)胞DNMTs mRNA相對表達(dá)水平的影響(n=3,±s)

      2.5 MEHP對TM-3細(xì)胞凋亡水平的影響

      Hoechst33258熒光染色顯示,不同濃度MEHP暴露,均可誘導(dǎo)TM-3細(xì)胞凋亡(P均<0.01),400、800μmol·L-1兩組可以觀察到明顯的染色質(zhì)固縮,核濃染現(xiàn)象,凋亡細(xì)胞數(shù)目逐漸增多,見圖4、表4。

      圖4 不同濃度MEHP作用24 h誘導(dǎo)TM-3細(xì)胞凋亡形態(tài)變化(×400)

      表4 不同濃度MEHP作用24 h誘導(dǎo)TM-3細(xì)胞凋亡情況(n=3,±s)

      表4 不同濃度MEHP作用24 h誘導(dǎo)TM-3細(xì)胞凋亡情況(n=3,±s)

      與對照組相比*P<0.05,**P<0.01。

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      3 討論

      關(guān)于PAEs類物質(zhì)毒作用機(jī)制的研究進(jìn)展,主要有三個(gè)方向:一是改變下丘腦-垂體-性腺軸的表達(dá);二是誘導(dǎo)氧化應(yīng)激損傷途徑;三是從表觀遺傳學(xué)的角度[5]。在環(huán)境污染物對人類健康造成影響的過程中,表觀遺傳學(xué)發(fā)揮著重要的作用,其中DNA甲基化是表觀遺傳學(xué)最主要的表達(dá)方式。DNA甲基化是指在DNMTs的催化作用下,將S-腺苷甲硫氨酸(SAM)中的甲基轉(zhuǎn)移到胞嘧啶和鳥嘌呤二核苷酸的第5位碳原子上,形成5-mc化學(xué)修飾的過程[6]。在DNMTs中,DNMT1作為哺乳動(dòng)物最主要的維持甲基化酶,表達(dá)于復(fù)制狀態(tài)的增殖細(xì)胞,能夠優(yōu)先催化復(fù)制后半甲基化的DNA雙鏈,使低甲基化的子鏈完全甲基化。DNMT3A和DNMT3B是重新甲基化酶,作用于未甲基化的DNA雙鏈。有研究報(bào)道[7],在人體尿液中檢測到DNA甲基化和羥甲基化過程的產(chǎn)物:5-甲基-2'-脫氧胞苷(5 mdC)和5-羥甲基-2'-脫氧胞苷(5 hmdC),且尿液中5 mdC和5 hmdC的濃度與接觸PAEs類物質(zhì)的水平呈正相關(guān)關(guān)系。另一項(xiàng)研究表明:由DNA甲基化介導(dǎo)的精子活力,與低水平環(huán)境鄰苯二甲酸酯暴露呈正相關(guān)關(guān)系[8]。

      本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,與對照組相比,隨著MEHP染毒劑量的增加,細(xì)胞活力逐漸下降;光學(xué)顯微鏡觀察顯示,正常TM-3細(xì)胞呈梭形、多邊形等不規(guī)則形狀生長,隨著染毒劑量的增加,貼壁細(xì)胞數(shù)量逐漸減少,細(xì)胞核呈現(xiàn)空泡化,條索狀細(xì)胞增多,且漂浮的死亡細(xì)胞數(shù)逐漸增加;Hoechst33258熒光染色結(jié)果顯示:隨著染毒劑量增加,MEHP對DNA損傷程度加深,高劑量組的熒光信號最強(qiáng),且能觀察到明顯的染色質(zhì)濃染、核固縮,增加了細(xì)胞的凋亡水平。本課題組前期研究[9]結(jié)果顯示:MEHP染毒24 h后,細(xì)胞存活率呈現(xiàn)下降趨勢,MEHP染毒能夠誘導(dǎo)GRP78-ATF4-CHOP凋亡通路,導(dǎo)致細(xì)胞凋亡,能夠與本研究結(jié)果相互驗(yàn)證[10]。5-mc免疫熒光結(jié)果顯示,MEHP導(dǎo)致TM-3細(xì)胞DNA甲基化整體水平降低,與對照組相比,200μmol·L-1染毒組熒光信號最強(qiáng),400μmol·L-1染毒組次之,800μmol·L-1染毒組綠色熒光信號最弱;陳姣等[11]研究發(fā)現(xiàn),MEHP可通過降低全基因組5-mc含量,從而促進(jìn)前列腺癌的惡化、轉(zhuǎn)移。有研究報(bào)道[12],全基因組DNA的低甲基化可引起遺傳的不穩(wěn)定性,誘發(fā)并促進(jìn)腫瘤的惡化,是參與腫瘤進(jìn)展的重要因素。另有研究表明,全基因組DNA低甲基化是細(xì)胞惡化的基本特征之一[13],與本研究與上述結(jié)果相近。與對照組相比,各組DNMT1和DNMT3BmRNA相對表達(dá)水平呈先升高后降低的趨勢,在200μmol·L-1組可能存在低劑量刺激作用,導(dǎo)致細(xì)胞整體甲基化水平升高,隨著染毒劑量增加,細(xì)胞整體甲基化水平逐漸降低,總體來說MEHP染毒導(dǎo)致TM-3細(xì)胞整體甲基化水平的降低;Li等[14]研究發(fā)現(xiàn),鄰苯二甲酸二正丁酯(DBP)能夠通過降低DNMT3B的表達(dá)水平誘導(dǎo)異常的PTEN去甲基化,進(jìn)而導(dǎo)致生殖毒性;鄭立娟等[15]的研究發(fā)現(xiàn),非甾體類激素己烯雌酚能夠?qū)е滦∈缶讣?xì)胞整體甲基化水平的降低,DNMTs蛋白和mRAN的相對表達(dá)水平也發(fā)生異常改變。上述發(fā)現(xiàn)與本研究結(jié)果相類似。

      本次實(shí)驗(yàn)研究的不足之處:首先在檢測細(xì)胞整體甲基化水平方面,僅選取了5-mc免疫熒光技術(shù)進(jìn)行定性檢測,并未進(jìn)行一些定量研究;其次在DNMTs表達(dá)水平方面,并未對其蛋白翻譯水平進(jìn)行檢測,也未加入相關(guān)的甲基化抑制劑進(jìn)行驗(yàn)證。因此在后續(xù)的實(shí)驗(yàn)中,將會更加完善MEHP對DNA甲基化水平影響的實(shí)驗(yàn)方法,進(jìn)一步深入探討表觀遺傳學(xué)在MEHP致雄性生殖毒性中的作用。

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