寒蘭根內(nèi)生真菌誘導(dǎo)子對(duì)白芨種子萌發(fā)和幼苗生長(zhǎng)的影響

羅琳 黃學(xué)敏 陳曉悅 李龍 邢玥 林作棟 景詩(shī)夢(mèng) 劉舒雅 彭東輝

摘 ?要：真菌誘導(dǎo)子可在一定程度上提高植物次生代謝物的積累，而白芨是一種具有極高經(jīng)濟(jì)價(jià)值和藥用價(jià)值的藥材。本文從野生寒蘭的根中培養(yǎng)分離得到23種內(nèi)生真菌，再制成真菌誘導(dǎo)子添加到自制的液體培養(yǎng)基中，將白芨種子放入該液體培養(yǎng)基進(jìn)行無(wú)菌震蕩培養(yǎng)，以研究真菌誘導(dǎo)子對(duì)白芨種子萌發(fā)和幼苗生長(zhǎng)的影響。結(jié)果表明，15號(hào)真菌誘導(dǎo)子能顯著縮短白芨種子的萌發(fā)時(shí)間，而且其幼苗鮮重增長(zhǎng)量是對(duì)照組的5.4倍，株高是對(duì)照組的3.7倍。經(jīng)過(guò)鑒定，15號(hào)真菌屬于多孔菌科（Polyporaceae）栓菌屬（Trametes）的毛栓菌（Trametes hirsuta）。

關(guān)鍵詞：內(nèi)生真菌;毛栓菌;白芨;種子萌發(fā);幼苗生長(zhǎng)

Abstract： Fungal elicitor can increase the accumulation of secondary metabolites in plants to a certain extent， and Bletilla striata is a medicinal material with extremely high economic and medicinal value. In this paper， 23 species of endophytic fungi were isolated from the roots of Cymbidium kanran. They were made into fungal elicitors and added to the self-made liquid medium. The seeds of B. striata were put into the liquid medium for aseptic shaking culture to study the effects of elicitors on seed germination and seedling growth of B striata. The results showed that the fungal elicitor of No. 15 significantly shortened the germination time of the seed of B. striata， and the fresh weight growth of its seedlings was 5.4 times that of the control group， and the plant height was 3.7 times that of the control group. No. 15 fungus was identified as Trametes hirsuta.

Keywords： endophytic fungus; Trametes hirsuta; Bletilla striata; seed germination; plant growth

內(nèi)生真菌存在于植物體內(nèi)但不引起植物組織病變，能與植物互利共生[1]。同時(shí)，內(nèi)生真菌能幫助植物適應(yīng)極端環(huán)境，抵御干旱或者重金屬污染的非生物脅迫，例如在干旱環(huán)境時(shí)幫助植物吸收土壤水分和養(yǎng)分，增強(qiáng)其抗逆性等等生理功能[2-3]。然而與植物進(jìn)行共培養(yǎng)時(shí)，生活的內(nèi)生真菌會(huì)與植物爭(zhēng)奪養(yǎng)分及次生代謝產(chǎn)物，造成植株幼苗被吞噬，引起植物的萎蔫、畸形和黃化，最終導(dǎo)致植物死亡[4]。研究發(fā)現(xiàn)內(nèi)生真菌能夠產(chǎn)生誘導(dǎo)植物細(xì)胞合成次生代謝產(chǎn)物的一類物質(zhì)，即真菌誘導(dǎo)子，真菌誘導(dǎo)子能夠啟動(dòng)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑，激活基因轉(zhuǎn)錄及表達(dá)，一定程度提高了關(guān)鍵酶活性，從而促進(jìn)某些次生代謝物的生物合成，增強(qiáng)植株自身抗性，這也是提高植物次生代謝物積累最有效的手段之一[5-6]。

白芨（Bletilla striata）作為中國(guó)傳統(tǒng)中藥被廣泛使用，一直被用來(lái)治療消化道粘膜損傷、潰瘍、瘀傷和燒傷[7]。前人在關(guān)于白芨的植物化學(xué)研究中，發(fā)現(xiàn)了多種次生代謝產(chǎn)物，如雙芐基、黃酮類化合物、酚類化合物等，這些提取物或分離物具有抗菌、抗氧化、抗炎和抗癌活性[8-9]。盧莉[10]篩選出一種內(nèi)生真菌并制成真菌誘導(dǎo)子，發(fā)現(xiàn)其對(duì)鐵皮石斛生長(zhǎng)發(fā)育有顯著促進(jìn)作用。陳金花等[11]篩選制成的真菌誘導(dǎo)子對(duì)石斛的鮮重增長(zhǎng)量是對(duì)照的4倍以上。張晉彥[12]從野生國(guó)蘭根部分離出的被孢霉屬（Mortierella sp）真菌對(duì)春蘭品種‘宋梅組培苗進(jìn)行接種，發(fā)現(xiàn)其鮮重增長(zhǎng)率、新生葉片數(shù)、株高增長(zhǎng)量與幼苗根長(zhǎng)度與對(duì)照組存在顯著性差異。李尚真[13]從文心蘭的原球莖中分離得到膠膜菌科（Tulasnellaceae）1種真菌和杜鵑花類菌根真菌（Epacris pulchella root associated fungus），發(fā)現(xiàn)其對(duì)文心蘭原球莖生長(zhǎng)和根系具有顯著促進(jìn)作用。此外，真菌誘導(dǎo)子對(duì)龍眼[14]、懷地黃[15]、苦豆子[5， 16]、西蘭花[17]、白樺[18]等植物生長(zhǎng)發(fā)育都有顯著促進(jìn)效果。對(duì)于蘭科菌根真菌的分離，并在人工基質(zhì)上實(shí)現(xiàn)提純培養(yǎng)，為未來(lái)菌劑的大規(guī)模生產(chǎn)創(chuàng)造優(yōu)勢(shì)條件，更容易實(shí)現(xiàn)工業(yè)化生產(chǎn)[19]。

1 ?材料與方法

1.1 ?材料

1.1.1 ?試驗(yàn)材料 ?植物材料：于2018年9月14日從福建三明地區(qū)采集野生寒蘭（Cymbidium kanran）的根，低溫保存。于2019年5月27日從云南采集白芨（Bletilla striata）成熟蒴果，低溫保存。

1.1.2 ?培養(yǎng)基 ?PDA培養(yǎng)基：馬鈴薯200 g，1000?mL純水，葡萄糖20 g，瓊脂15 g;PDB培養(yǎng)基：馬鈴薯200 g，1000 mL純水，葡萄糖20 g;基礎(chǔ)培養(yǎng)基：1/2 MS+NAA 1.0 mg/L+6 BA 3.0?mg/L+AC 0.5 g/L+葡萄糖30 g/L+50 mL/L椰汁，pH 5.83（參照杜高峰[20]的配方并進(jìn)行優(yōu)化）。

1.2 ?方法

1.2.1 ?真菌的分離和純化 ?將寒蘭的根切成約4～5 cm長(zhǎng)（除去根尖），清水沖洗2 h，然后用75.0?%的乙醇處理30 s，再用0.2%的次氯酸鈉消毒3?min，最后用無(wú)菌水沖洗4～5遍。用無(wú)菌濾紙將根表水分吸干，在無(wú)菌培養(yǎng)皿中將根橫切厚為3～5?mm的組織塊，置于PDA培養(yǎng)基（加入氨芐青霉素）中，切面朝向培養(yǎng)基，每個(gè)培養(yǎng)皿放3塊組織塊，置于培養(yǎng)箱內(nèi)25?℃恒溫避光培養(yǎng)。經(jīng)過(guò)3～7 d菌絲從組織塊上長(zhǎng)出形成一定大小菌落時(shí)（以組織塊為中心向周圍進(jìn)行擴(kuò)散生長(zhǎng)的為分離目的菌種），從邊緣挑取菌絲到另一PDA平板，分離出不同種類的真菌轉(zhuǎn)接重復(fù)至純培養(yǎng)，斜面保存。

1.2.2 ?真菌的活化及培養(yǎng)基的制備 ?在預(yù)實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)，真菌會(huì)將種子吞沒(méi)作為養(yǎng)分，因此以真菌誘導(dǎo)子的形式進(jìn)行實(shí)驗(yàn)。

將之前保存的真菌接入PDA培養(yǎng)基，在25?℃黑暗環(huán)境下活化。之后分別挑取部分菌絲接種到PDB培養(yǎng)基中，在25?℃、150 r/min搖床振蕩培養(yǎng)4 d，待菌絲體充滿整個(gè)培養(yǎng)基，將發(fā)酵液真空抽濾得到發(fā)酵液，121?℃高壓蒸汽滅活后，制成真菌誘導(dǎo)子分裝備用。

配好基礎(chǔ)培養(yǎng)基后分裝至錐形瓶，每瓶裝20?mL培養(yǎng)基，每種真菌誘導(dǎo)子添加20 μL，重復(fù)3瓶，對(duì)照處理不加真菌誘導(dǎo)子。

1.2.3 ?白芨種子處理、誘導(dǎo)和培養(yǎng) ?將未開裂的白芨蒴果先用洗衣粉在流水下緩慢沖洗30 min，依次用75.0 %的酒精浸泡消毒30 s、0.2 %的次氯酸鈉消毒20 min后，再用75.0%酒精浸泡30 s，最后用無(wú)菌水沖洗表面，再用滅過(guò)菌的濾紙吸干蒴果表面水分。以下操作均在無(wú)菌條件下進(jìn)行，將蒴果放至無(wú)菌的接種鐵盤，用高壓滅菌后的手術(shù)刀沿著蒴果背縫線橫切，切開后用無(wú)菌鑷子夾取適量的種子抖落在液體培養(yǎng)基上，稍加搖動(dòng)，使種子均勻散布在培養(yǎng)基上，用透氣封口膜封口，置于搖床（25?℃，150 r/min）進(jìn)行暗培養(yǎng)。每日檢查種子萌發(fā)情況，20 d后記錄種子萌發(fā)率[萌發(fā)率=（萌發(fā)白芨種子總數(shù)/供試白芨種子總數(shù)）× 100%]，待種子萌發(fā)后轉(zhuǎn)至光照下培養(yǎng)。

1.2.4 ?白芨幼苗測(cè)量 ?種子接種52 d后，用200目透明紗布過(guò)濾液體培養(yǎng)基，小心洗凈幼苗表面液體培養(yǎng)基，然后用無(wú)菌濾紙吸干水分，測(cè)量幼苗的鮮重、株高和莖粗以及原球莖直徑，從中篩選出促進(jìn)白芨種子萌發(fā)及幼苗生長(zhǎng)效果好的真菌誘導(dǎo)子。

1.2.5 ?真菌的鑒定 ?內(nèi)生真菌分子鑒定采用天根生物公司DNA提取試劑盒對(duì)分離出來(lái)的內(nèi)生真菌進(jìn)行DNA提取，對(duì)ITS DNA區(qū)域序列進(jìn)行PCR擴(kuò)增。PCR擴(kuò)增反應(yīng)體系（20 μL）：1 μL目標(biāo)真菌模板DNA，ITS1和ITS4引物（10 μmol/L）各1 μL，2×Taq PCR Master Mix 7 μL，ddH2O補(bǔ)至20 μL。PCR特異擴(kuò)增采用 r DNA-ITS區(qū)段的通用反應(yīng)引物[21]：正向引物ITS1F：5-TCCGTAGGT GAACCTGCGG-3和反向引物ITS4R：5-TCCTC CGCTTATTGATATGC-3。擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳合格后，將PCR原液送往廈門生工生物公司進(jìn)行后續(xù)測(cè)序工作。用snapgene軟件去除疊峰等不合格的序列，進(jìn)行序列拼接，登陸NCBI（https：//www.ncbi.nlm.nih. gov/）將整理好的各菌株ITS序列與GenBank中的已知序列進(jìn)行比對(duì)，并利用軟件MEGA 7.0中的最大似然法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹，同時(shí)進(jìn)行形態(tài)鑒定，用0.05%臺(tái)盼藍(lán)溶液（0.2%臺(tái)盼藍(lán)∶85%乳酸∶甘油=1∶1∶1）對(duì)真菌進(jìn)行染色[22]，確定菌株的具體信息。

1.3 ??數(shù)據(jù)處理

運(yùn)用Microsoft Excel 2016和IBM SPSS Statistics 24軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理和統(tǒng)計(jì)分析，單因素方差分析（One-Way ANOVA）和LSD多重比較，以及R軟件ggplot 2包進(jìn)行圖片繪制，分別判斷差異顯著性。

2 ?結(jié)果與分析

2.1 ?寒蘭根內(nèi)生真菌分離情況

采用組織塊分離法從新鮮且健康的寒蘭根中分離出23個(gè)菌株，不同菌落形態(tài)見(jiàn)圖1和表1。

2.2 ?真菌誘導(dǎo)子對(duì)白芨種子萌發(fā)的影響

23種真菌誘導(dǎo)子對(duì)白芨種子啟動(dòng)萌發(fā)時(shí)間的影響不同。以種子膨大作為啟動(dòng)萌發(fā)標(biāo)準(zhǔn)，其中15號(hào)真菌誘導(dǎo)子處理的種子最早啟動(dòng)萌發(fā)，所需時(shí)間為8 d，而4、6、7、16、19和22號(hào)為11 d，3、5、9、10、12和14號(hào)為12 d，對(duì)照（0號(hào)）、1、8、11、13、18、20和21號(hào)為13 d，2號(hào)和23號(hào)為14 d。

由表2可知，不同真菌誘導(dǎo)子對(duì)白芨種子萌發(fā)表現(xiàn)出明顯差異，3、13、23號(hào)均對(duì)白芨種子萌發(fā)率無(wú)顯著影響，1、4、6、7、8、10、12、14、15、16、17、19、20、21、22號(hào)呈促進(jìn)作用，2、5、9、11號(hào)對(duì)萌發(fā)率呈抑制作用。

2.3 ?真菌誘導(dǎo)子對(duì)白芨幼苗生長(zhǎng)的影響

白芨種子在添加23種真菌誘導(dǎo)子的液體培養(yǎng)基培養(yǎng)52 d后進(jìn)行對(duì)比分析，鮮重、株高、莖粗組間差異明顯（圖3）。

（1）鮮重：各處理組的白芨鮮重增重量不同，除1、4、11和12號(hào)與對(duì)照組相比差異性不顯著外，其余各處理組鮮重均高于對(duì)照組，且差異顯著（P <0 .05）。其中15號(hào)處理組是對(duì)照組的6.4倍。

（2）株高：各處理組的白芨株高變化較大。5、6、10、15、19和23號(hào)與對(duì)照組相比株高變大。其中，15號(hào)處理組株高是對(duì)照組的2.7倍（P<0.01），但也存在株高比對(duì)照組低的情況，10號(hào)處理組株高只達(dá)到對(duì)照組的87.0%。

（3）原球莖：共計(jì)11組原球莖直徑的均值超過(guò)對(duì)照組，其中5號(hào)比對(duì)照組高31.5%，為2.46 mm，差異極顯著（P < 0.01）。但其他處理組與對(duì)照組相比，差異不顯著（P > 0.05）

（4）莖粗：15號(hào)達(dá)到差異極顯著（P<0.01），比對(duì)照組粗0.23 mm，為1.39 mm。1、2、3、11和22號(hào)的莖粗?jǐn)?shù)值都比對(duì)照組低，只達(dá)到對(duì)照組莖粗的77.4%、61.9%、92.9%、62.3%和97.0%。

2.4 ?菌種鑒定

經(jīng)過(guò)對(duì)比，15號(hào)真菌具有顯著促生效果（圖4）。因此對(duì)15號(hào)真菌進(jìn)行菌種鑒定，利用BLAST-2.9.0及MEGA 7.0進(jìn)行比對(duì)分析，以最大似然法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹（圖5）。結(jié)果表明，菌株15號(hào)與多孔菌科（Polyporaceae）栓菌屬（Trametes）的毛栓菌（T. hirsuta）同源性最高，相似性達(dá)到100%，并且遺傳距離最近，相似率達(dá)到98.0%。將此序列上傳至Genbank （https：//www.ncbi.nlm.nih.gov/），獲得登錄號(hào)MT079831。

結(jié)合形態(tài)觀察，其菌落為白色、絨毛狀，顯微結(jié)構(gòu)具有鎖狀聯(lián)合（圖6），可將該菌株鑒定其為毛栓菌。

3 ?討論

在真菌誘導(dǎo)子篩選方法上，本實(shí)驗(yàn)結(jié)合杜高峰、劉生財(cái)?shù)萚20-25]的相關(guān)研究，采用直接添加滅活后的菌絲體粗提濾液的制備方法，與Famer[26]和文濤等[27]的方法相比更加簡(jiǎn)單且容易實(shí)現(xiàn)，可進(jìn)行大范圍推廣，為其他地生蘭的相關(guān)研究提供借鑒。

觀察23種真菌誘導(dǎo)子對(duì)白芨幼苗促生情況，15號(hào)真菌誘導(dǎo)子最有助于白芨的生長(zhǎng)發(fā)育。2號(hào)、11號(hào)真菌誘導(dǎo)子對(duì)白芨幼苗的生長(zhǎng)效果遠(yuǎn)低于對(duì)照組，對(duì)白芨的莖粗、原球莖均起抑制影響。說(shuō)明真菌誘導(dǎo)子對(duì)植物不一定都是促進(jìn)作用，也存在一定的抑制作用。類似的，高媛等[28]也觀察到這一現(xiàn)象，內(nèi)生真菌的菌液濃縮物對(duì)苦豆子組培苗及愈傷組織的生長(zhǎng)起抑制影響，說(shuō)明真菌誘導(dǎo)子中對(duì)植株生長(zhǎng)發(fā)育存在一定的活性抑制。

綜合生理結(jié)果，15號(hào)真菌促生作用最顯著，因此對(duì)其進(jìn)行分子生物學(xué)鑒定，該真菌屬于多孔菌科（Polyporaceae）栓菌屬（Trametes）的毛栓菌（T. hirsuta），首次從蘭屬根部分離得到。前人研究顯示，可培養(yǎng)的蘭花內(nèi)生真菌多屬于角擔(dān)菌科（Ceratobasidiaceae）、膠膜菌科（Tulasnellaceae）、蠟殼耳目（Sebacinales）[29]。在培養(yǎng)基共生狀態(tài)下，可能由于該真菌能分解纖維素，供應(yīng)更多的碳水化合物也能使原球莖生長(zhǎng)加快。田佩雯[30]篩選出菌株1-N2真菌誘導(dǎo)子，處理后的白芨鮮重增長(zhǎng)量、鱗莖總酚、總多糖含量都有顯著提高，可有效促進(jìn)白芨新芽和根系生長(zhǎng)，但是并未闡明具體菌株鑒定方法及菌種名稱，本研究不僅篩選出真菌菌株并且進(jìn)行了菌種鑒定。根據(jù)高中南等[31]、徐玲玲等[32]的研究結(jié)果，活菌能夠促進(jìn)蘭科種子萌發(fā)，但在本實(shí)驗(yàn)中活菌將種子吞沒(méi)當(dāng)作養(yǎng)分，因此采用真菌誘導(dǎo)子的方法進(jìn)行萌發(fā)實(shí)驗(yàn)。內(nèi)生真菌誘導(dǎo)子的主要成分有低聚糖、糖蛋白、蛋白質(zhì)、不飽和脂肪酸等[33]。為進(jìn)一步研究該內(nèi)生真菌誘導(dǎo)子的作用，可深入研究15號(hào)內(nèi)生真菌誘導(dǎo)子毛栓菌（T. hirsuta）的代謝產(chǎn)物，該代謝產(chǎn)物有可能為白芨種子萌發(fā)創(chuàng)造有利條件，這種萌發(fā)機(jī)制有待進(jìn)一步研究。毛栓菌制作成真菌誘導(dǎo)子對(duì)白芨生長(zhǎng)具有促進(jìn)作用，王洪亮[34]也發(fā)現(xiàn)該真菌的代謝產(chǎn)物在抗癌、抗瘧疾等疾病藥物的開發(fā)中有巨大潛力。

4 ?結(jié)論

本研究從寒蘭根部分離出23個(gè)內(nèi)生真菌菌株，制作成真菌誘導(dǎo)子，對(duì)白芨種子及其幼苗進(jìn)行促生生長(zhǎng)試驗(yàn)，結(jié)果表明，15號(hào)真菌誘導(dǎo)子有顯著性促生作用，經(jīng)鑒定為多孔菌科栓菌屬毛栓菌。該菌種可能對(duì)蘭屬植物有一定促生作用。

關(guān)于真菌誘導(dǎo)子的有效成分仍須進(jìn)一步研究，對(duì)其有效成分進(jìn)行分析，或在其中添加輔助成分有可能提高該誘導(dǎo)子的誘導(dǎo)效果。

參考文獻(xiàn)

Rodriguez R J， White J J， Arnold A E， et al. Fungal endophytes： diversity and functional roles[J]. New Phytol， 2009， 182（2）： 314-330.

Malinowski D P， Belesky D P. Adaptations of endophyte-infected cool-season grasses to environmental stresses： mechanisms of drought and mineral stress tolerance[J]. Crop Science， 2000， 40（4）： 923-940.

White R H， Engelke M C， Morton S J， et al. Acremonium endophyte effects on tall fescue drought tolerance[J]. Crop Science， 1992， 32（6）： 1392-1396.

張 ?爽， 郭盛磊， 王謙博， 等. 刺五加內(nèi)生真菌誘導(dǎo)子對(duì)宿主生長(zhǎng)及抗氧化酶系統(tǒng)影響[J]. 中國(guó)中藥雜志， 2019， 44（8）： 1517-1523.

孫牧笛， 胡麗杰， 李文學(xué)， 等. 苦豆子內(nèi)生真菌誘導(dǎo)子促進(jìn)宿主生物堿合成積累的生理防衛(wèi)反應(yīng)[J]. 干旱地區(qū)農(nóng)業(yè)研究， 2019， 37（3）： 60-65， 71.

Banerjee D， Manna S， Mahapatra S， et al. Fungal endophytes in three medicinal plants of Lamiaceae[J]. Acta Microbiologica et Immunologica Hungarica， 2009， 56（3）： 243.

Zhang Q， Qi C， Wang H， et al. Biocompatible and degradable Bletilla striata polysaccharide hemostasis sponges constructed from natural medicinal herb Bletilla striata[J]. Carbohydrate Polymers， 2019， 226： 115304.

Wang W， Meng H. Cytotoxic， anti-inflammatory and hemostatic spirostane-steroidal saponins from the ethanol extract of the roots of Bletilla striata[J]. Fitoterapia， 2015， 101（Complete）： 12-18.

Takagi S， Yamaki M， Inoue K. Antimicrobial agents from Bletilla striata[J]. Phytochemistry， 1983， 22（4）： 1011-1015.

盧 ?莉. 鐵皮石斛共生真菌的分離及其功能初探[D]. 太原： 山西大學(xué)， 2018.

陳金花， 王 ?存， 石 ?蕾， 等. 六種真菌誘導(dǎo)子對(duì)石斛蘭“088”組培苗生長(zhǎng)的影響[J]. 湖南農(nóng)業(yè)科學(xué)， 2014（3）： 28-31.

張晉彥. 春蘭‘宋梅和雜交蘭組培苗的菌根化研究[D]. 杭州： 浙江農(nóng)林大學(xué)， 2016.

李尚真. 華石斛菌根真菌鑒定及其對(duì)華石斛與文心蘭成苗影響研究[D]. ?？冢?海南大學(xué)， 2015.

徐小萍， 賴瑞聯(lián)， 林玉玲， 等. 真菌誘導(dǎo)子對(duì)龍眼胚性愈傷組織生長(zhǎng)和多糖積累的影響[J]. 熱帶作物學(xué)報(bào)， 2016， 37（11）： 2216-2221.

夏 ?偉， 熊玉萍， 朱畇昊， 等. 真菌誘導(dǎo)子對(duì)懷地黃組培苗生長(zhǎng)及次生代謝產(chǎn)物合成的影響[J]. 中國(guó)實(shí)驗(yàn)方劑學(xué)雜志， 2017， 23（3）： 25-29.

孫牧笛， 張慶宸， 胡麗杰， 等. 苦豆子內(nèi)生真菌誘導(dǎo)子促進(jìn)宿主生物堿合成關(guān)鍵酶基因表達(dá)的熒光定量PCR檢測(cè)[J]. 中草藥， 2018， 49（19）： 4621-4627.

胡翠珍. 西蘭花毛狀根擴(kuò)增體系的建立及真菌誘導(dǎo)子對(duì)其蘿卜硫素累積的調(diào)控[D]. 蘭州： 甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué)， 2016.

許道琦. 真菌誘導(dǎo)白樺三萜積累的營(yíng)養(yǎng)生理和分子機(jī)制的初步研究[D]. 哈爾濱： 東北林業(yè)大學(xué)， 2013.

蓋雪鴿， 邢曉科， 郭順星. 蘭科菌根的生態(tài)學(xué)研究進(jìn)展[J]. 菌物學(xué)報(bào)， 2014， 33（4）： 753-767.

杜高峰. 白芨快繁體系建立及不同地區(qū)根際土壤微生物研究[D]. 合肥： 安徽農(nóng)業(yè)大學(xué)， 2018.

楊前宇. 蘭科菌根真菌多樣性研究及其對(duì)蘭科植物的影響[D]. 北京： 中國(guó)林業(yè)科學(xué)研究院， 2018.

覃曉娟， 陳廷速， 李冬萍， 等. 香蕉根系叢枝菌根（AM）真菌染色方法比較[J]. 基因組學(xué)與應(yīng)用生物學(xué)， 2017， 36（6）： 2447-2451.

齊鳳慧， 陳思齊， 景天忠， 等. 真菌誘導(dǎo)子對(duì)茶條槭細(xì)胞沒(méi)食子酸積累的影響[J]. 植物研究， 2018， 38（6）： 948-955.

梁楚欣， 于榮敏， 朱建華. 真菌誘導(dǎo)子在長(zhǎng)春花培養(yǎng)體系中的應(yīng)用[J]. 食品與藥品， 2018， 20（1）： 60-64.

劉生財(cái)， 段俊朋， 徐小萍， 等. 真菌誘導(dǎo)子對(duì)龍眼胚性愈傷組織中類黃酮、類胡蘿卜素和單寧含量的影響[J]. 熱帶作物學(xué)報(bào)， 2018， 39（9）： 1778-1785.

Farmer E E. Effects of fungal elicitor on lignin biosynthesis in cell suspension cultures of soybean[J]. Plant Physiology， 1985， 78（2）： 338-342.

文 ?濤， 曾 ?楊， 喻 ?曉， 等. 真菌誘導(dǎo)子對(duì)虎杖愈傷組織中白藜蘆醇合成的影響[J]. 核農(nóng)學(xué)報(bào)， 2008（4）： 435-438， 419.

高 ?媛， 孫牧笛， 徐全智， 等. 苦豆子內(nèi)生真菌對(duì)宿主培養(yǎng)物生長(zhǎng)及喹諾里西啶類生物堿合成的影響[J]. 干旱地區(qū)農(nóng)業(yè)研究， 2017， 35（3）： 212-218.

Qin J， Zhang W， Ge Z， et al. Molecular identifications uncover diverse fungal symbionts of Pleione （Orchidaceae）[J]. Fungal Ecology， 2019， 37： 19-29.

田佩雯. 白及內(nèi)生真菌誘導(dǎo)子對(duì)宿主生長(zhǎng)和主要活性物質(zhì)的影響及調(diào)控[D]. 南寧： 廣西大學(xué)， 2019.

高中南， 余磊磊， 周京龍， 等. 白芨種子共生及非共生萌發(fā)的研究進(jìn)展[J]. 長(zhǎng)江大學(xué)學(xué)報(bào)（自然科學(xué)版）， 2017， 14（14）： 58-61.

徐玲玲， 張 ?焱， 趙明陽(yáng)， 等. 菌根真菌對(duì)白及種子萌發(fā)和幼苗生根的作用[J]. 菌物學(xué)報(bào)， 2019， 38（9）： 1440-1449.

Kumarihamy M， Ferreira D， Croom E， et al. Antiplasmodial and cytotoxic cytochalasins from an endophytic fungus， Nemania sp. UM10M， isolated from a diseased Torreya taxifolia leaf[J]. Molecules， 2019， 24（4）： 777.

王洪亮. 三種珊瑚共附生真菌的化學(xué)成分及生物活性研究[D]. 上海： 中國(guó)人民解放軍海軍軍醫(yī)大學(xué)， 2019.

責(zé)任編輯：白 ?凈