張 榮, 李曉歌▲, 陳雁斌, 蔣思怦, 楊 麗, 袁中華△
(1南華大學(xué)心血管疾病研究所,動(dòng)脈硬化學(xué)湖南省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,湖南省動(dòng)脈硬化性疾病國際科技創(chuàng)新合作基地,湖南衡陽421001;2湘南學(xué)院附屬醫(yī)院,湖南郴州423000)
動(dòng)脈粥樣硬化(atherosclerosis,AS)是以脂質(zhì)代謝紊亂和炎癥為主要病理基礎(chǔ)的疾病,其發(fā)病機(jī)制尚未闡明[1]。動(dòng)脈粥樣硬化的主要細(xì)胞學(xué)改變是泡沫細(xì)胞的形成,泡沫細(xì)胞是由巨噬細(xì)胞或血管壁平滑肌細(xì)胞攝入大量脂質(zhì)轉(zhuǎn)化而來。大量攝入的脂質(zhì)以脂滴(lipid droplets,LDs)的形式貯存在細(xì)胞內(nèi)[2]。減少脂滴數(shù)量,抑制脂質(zhì)蓄積有助于防治動(dòng)脈粥樣硬化。小GTP結(jié)合蛋白Rab18是位于脂滴表面的脂滴包被蛋白[3],參與調(diào)節(jié)脂質(zhì)代謝和脂滴形成[4]。此外,有研究表明過表達(dá)Rab18時(shí)細(xì)胞內(nèi)脂質(zhì)蓄積減少,能減緩動(dòng)脈粥樣硬化的發(fā)生,但尚未闡明其具體機(jī)制[5-6]。
脂肪分化相關(guān)蛋白——脂滴包被蛋白2(perilip?in 2,PLIN2)是PAT家族中的一員,包裹在脂滴周圍[7]。參與脂滴形成和脂質(zhì)蓄積[8-9]。本課題組前期研究發(fā)現(xiàn)沉默表達(dá)PLIN2后,細(xì)胞內(nèi)脂質(zhì)蓄積減少,過表達(dá)PLIN2時(shí)脂質(zhì)蓄積增加[10]。過表達(dá)高活型Rab18明顯降低PLIN2表達(dá),減少脂質(zhì)蓄積[11]。過氧化物酶體增殖物激活受體γ(peroxisome proliferatoractivated receptorγ,PPARγ)是核受體超家族PPARs中的重要成員,主要分布在脂肪組織及巨噬細(xì)胞中,是脂質(zhì)合成的重要調(diào)節(jié)因子[12]。在PPARγ?/?小鼠中,脂質(zhì)蓄積明顯減少。PPARγ過表達(dá)可上調(diào)PLIN2表達(dá),且促進(jìn)細(xì)胞內(nèi)脂質(zhì)蓄積[13-14]。
Li等[15]發(fā)現(xiàn),Rab21可通過PPARγ影響脂質(zhì)蓄積。Rab18與Rab21均為Rab家族成員,推測Rab18或許也可通過PPARγ來影響脂質(zhì)蓄積。此外,本課題組前期實(shí)驗(yàn)已證實(shí)PLIN2升高可促進(jìn)巨噬細(xì)胞內(nèi)脂質(zhì)蓄積[16]。因此,本研究在此基礎(chǔ)上進(jìn)一步探討Rab18是否通過影響PPARγ表達(dá)而調(diào)控PLIN2水平,進(jìn)而影響巨噬細(xì)胞內(nèi)脂質(zhì)蓄積。
THP-1細(xì)胞購自中國科學(xué)院上海生命科學(xué)研究院生物化學(xué)與細(xì)胞生物學(xué)研究所。RPMI-1640培養(yǎng)液(HyClone);胎牛血清(杭州四季青公司);氧化型低密度脂蛋白(oxidized low-density lipoprotein,ox-LDL)購自奕源生物科技公司;Lipo-6000TM轉(zhuǎn)染試劑(上海碧云天生物科技公司);表達(dá)高活型(high-ac?tivity,HA)Rab18[Rab18(Q67L)]、野生型(wildtype,WT)Rab18[Rab18(WT)]和低活型(low-activi?ty,LA)Rab18[Rab18(S22N)]的慢病毒載體質(zhì)粒及DH5α甘油菌購自佳和生物科技有限公司;PPARγ激動(dòng)劑GW1929和抑制劑T0070907購自MCE;抗PLIN2、PPARγ、Rab18和GAPDH抗體及山羊抗兔/抗鼠IgGⅡ抗均購自Proteintech;其它試劑均為進(jìn)口或國產(chǎn)分析純。
2.1 細(xì)胞培養(yǎng) 在5%CO2、37℃的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)THP-1巨噬細(xì)胞,視細(xì)胞生長狀態(tài)換液,細(xì)胞貼壁率約75%時(shí)傳代。
2.2 質(zhì)粒擴(kuò)增與檢測 根據(jù)Ozeki等[17]的報(bào)道,我們在巨噬細(xì)胞中,分別用Rab18(WT)、Rab18(Q67L)和Rab18(S22N)質(zhì)粒制備表達(dá)WT、HA和LA Rab18的細(xì)胞。將含Rab18(WT)、Rab18(Q67L)和Rab18(S22N)質(zhì)粒的菌液解凍混勻,用接種環(huán)蘸取菌液劃板,倒置放于37℃細(xì)菌培養(yǎng)箱中培養(yǎng)12~16 h。將不同活性的Rab18大腸桿菌視菌落生長情況,分別加入含有3 mL氨芐西林液體的培養(yǎng)液中,37℃搖床上擴(kuò)增12 h(220 r/min)。分別取1 mL擴(kuò)增后的培養(yǎng)液轉(zhuǎn)移至100 mL液體培養(yǎng)液中,37℃搖床上(220 r/min)繼續(xù)擴(kuò)增大腸桿菌,12 h后收菌。將各菌液分別用無內(nèi)毒素大提質(zhì)粒盒提取Rab18(WT)和Rab18(Q67L)、Rab18(S22N)質(zhì)粒,用紫外分光光度法測量A260/A280比值,檢測提取各質(zhì)粒的濃度及純度。
2.3 細(xì)胞轉(zhuǎn)染 將THP-1巨噬細(xì)胞在轉(zhuǎn)染前一天接種到不含抗生素的6孔板中,待細(xì)胞密度達(dá)到75%左右后進(jìn)行轉(zhuǎn)染。分別用250μL DMEM培養(yǎng)液稀釋5μg Rab18(WT)、Rab18(Q67L)和Rab18(S22N)質(zhì)粒靜置5 min,取10μL Lipo-6000TM轉(zhuǎn)染試劑用移液槍加入250μL DMEM培養(yǎng)液中靜置5 min。然后將上述試劑分別混勻靜置20 min后分別加入6孔板中,并置于37℃細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)4~6 h。然后將6孔板中的培養(yǎng)基更換為只含血清的培養(yǎng)基,繼續(xù)培養(yǎng)1~2 d后用Western blot或熒光顯微鏡檢測轉(zhuǎn)染效果。
2.4 油紅O染色 將THP-1細(xì)胞種于6孔板中,用50 mg/L ox-LDL孵育0、6、12和24 h,然后使用50 mg/L ox-LDL孵育24 h;PBS沖洗細(xì)胞(3次,每次10 min),在室溫下用4%甲醛溶液固定30 min,再次用PBS沖洗細(xì)胞(3次,每次10 min)后與新鮮的過濾油紅色O溶液一起孵育30 min;最后用蘇木素復(fù)染,在光學(xué)顯微鏡下記錄細(xì)胞的圖像并根據(jù)油紅O染色后的細(xì)胞內(nèi)脂滴的面積進(jìn)行半定量分析。
2.5 細(xì)胞免疫熒光染色 室溫下,用?20℃保存的100%乙醇固定細(xì)胞,10 min后用PBS清洗。室溫下,將固定好的細(xì)胞加入0.2%Triton X-100,5 min后用PBS清洗3 min×3次。然后,加入用PBS稀釋的5%的血清,室溫下封閉1 h。吸出封閉液,并加入稀釋好的Ⅰ抗,室溫下孵育1.5 h后用PBS清洗3 min×3次。加入棕色EP管中稀釋好的熒光Ⅱ抗,室溫、避光、潮濕條件下孵育1 h后,用PBS清洗3 min×3次。然后用DAPI染細(xì)胞核,10 min后避光拍照,存檔。
2.6 Western blot分析 將待提取的未處理THP-1細(xì)胞或經(jīng)轉(zhuǎn)染后的THP-1細(xì)胞中加入細(xì)胞裂解液置冰上裂解,提取總蛋白。使用BCA法對蛋白定量。制備10%SDS-PAGE分離蛋白,蛋白經(jīng)SDS-PAGE凝膠分離后轉(zhuǎn)移至聚偏二氟乙烯膜上;轉(zhuǎn)膜結(jié)束后經(jīng)脫脂牛奶4℃搖床封閉4 h,后分別加入相應(yīng)Ⅰ抗,4℃搖床上搖動(dòng)孵育過夜;用TBST以10 min每次清洗3次;接著加入對應(yīng)的Ⅱ抗,4℃搖床震蕩孵育2 h,TBST洗膜,使用ECL法進(jìn)行顯影。
使用GraphPad Prism 8.0、SPSS和Image-Pro Plus軟件統(tǒng)計(jì)分析結(jié)果,并作圖。重復(fù)上述實(shí)驗(yàn)3次以上,實(shí)驗(yàn)結(jié)果用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示。多組間均數(shù)比較用單因素方差分析,兩兩比較采用SNK-q檢驗(yàn)。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
用50 mg/L ox-LDL孵育THP-1巨噬細(xì)胞0、6、12和24 h。Western blot檢測結(jié)果顯示,在巨噬細(xì)胞中Rab18、PPARγ及PLIN2的蛋白表達(dá)水平在24 h內(nèi)隨ox-LDL處理時(shí)間的延長而增加(P<0.05),見圖1。
油紅O染色后脂質(zhì)半定量分析結(jié)果顯示,巨噬細(xì)胞中脂質(zhì)蓄積隨著ox-LDL孵育時(shí)間的延長而不斷增多(P<0.05),見圖2。
不同活性Rab18質(zhì)粒轉(zhuǎn)染細(xì)胞的免疫熒光染色圖見圖3。
Western blot檢測結(jié)果顯示,50 mg/L ox-LDL孵育各組細(xì)胞24 h后,WT組、HA組和LA組中Rab18表達(dá)較control組明顯升高,但各轉(zhuǎn)染組間Rab18表達(dá)的差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著性,見圖4A;與control組相比,WT組和HA組細(xì)胞中PPARγ和PLIN2的表達(dá)量均顯著下降(P<0.05),LA組細(xì)胞中PPARγ和PLIN2表達(dá)無明顯變化,見圖4B。
油紅O染色結(jié)果顯示,與control相比,WT組與HA組細(xì)胞內(nèi)脂質(zhì)蓄積均明顯減少(P<0.05),而LA組細(xì)胞內(nèi)脂質(zhì)蓄積無明顯變化,見圖5。
首先我們用免疫熒光法觀察荷脂巨噬細(xì)胞中Rab18與PPARγ的共定位情況,發(fā)現(xiàn)Rab18(紅色熒光)與PPARγ(綠色熒光)在荷脂巨噬細(xì)胞中確實(shí)存在免疫熒光共定位(圖6A)。然后,我們將細(xì)胞分為control組和HA組,用50 mg/L ox-LDL孵育24 h后,免疫熒光觀察PPARγ核轉(zhuǎn)位情況,結(jié)果顯示,與control組相比,HA組細(xì)胞核內(nèi)綠色熒光明顯減弱(圖6B)。
將細(xì)胞分為4組:control組、HA組、HA+GW1929(600 nmol/L孵育24 h)組和HA+T0070907(100 nmol/L孵育24 h)組,各組分別加入ox-LDL共孵育24 h。
Western blot檢測結(jié)果顯示,在荷脂巨噬細(xì)胞中,與control組相比,HA組PLIN2表達(dá)顯著降低(P<0.05);HA組加入PPARγ激動(dòng)劑GW1929后,PLIN2表達(dá)明顯增多(P<0.05);與HA組比,HA+T0070907組PLIN2表達(dá)進(jìn)一步降低(P<0.05),見圖7。
Figure 2.Lipid accumulation was increased in THP-1 macrophages with the extension of ox-LDL incubation time(oil red O staining,sclae bar=20μm).Mean±SD.n=3.*P<0.05 vs0 h group.圖2 隨著ox-LDL孵育時(shí)間的延長巨噬細(xì)胞中脂質(zhì)蓄積增加
免疫熒光染色結(jié)果顯示,與control組相比,HA組中PLIN2熒光強(qiáng)度明顯減弱;與HA組相比,HA+GW1929組細(xì)胞中PLIN2熒光強(qiáng)度明顯增強(qiáng);另外,HA+T0070907組細(xì)胞中PLIN2熒光強(qiáng)度較HA組進(jìn)一步減弱(P<0.05),見圖8。
油紅O染色結(jié)果顯示,與對照組相比,HA細(xì)胞組脂質(zhì)蓄積減少,加入PPARγ抑制劑后脂質(zhì)蓄積進(jìn)一步減少;與HA組相比,加入PPARγ激動(dòng)劑組細(xì)胞內(nèi)脂質(zhì)蓄積明顯增加(P<0.05),見圖9。
AS性心腦血管疾病嚴(yán)重?fù)p害人體健康,是當(dāng)前病死率較高的一類疾病[18],其發(fā)病機(jī)制尚不明確,脂質(zhì)代謝異常是公認(rèn)的主要發(fā)病因素之一[19-20]。Rab18與以AS為病理基礎(chǔ)的心血管疾病密切相關(guān)[21]。Rab18存在于真核細(xì)胞幾乎全部的細(xì)胞器膜上,有活化和失活兩種形式[22]。Rab18中的G結(jié)構(gòu)域與GTP結(jié)合時(shí)Rab18活化并可以被募集在細(xì)胞器膜如脂滴膜上,進(jìn)而與其效應(yīng)蛋白相互作用,發(fā)揮膜運(yùn)輸、囊泡轉(zhuǎn)運(yùn)和信號轉(zhuǎn)導(dǎo)等作用[17];當(dāng)GTP轉(zhuǎn)換為GDP時(shí),Rab18失活并失去生物學(xué)功能[23]。脂滴分解時(shí)高活型Rab18分布在脂滴的表面加速基礎(chǔ)脂肪的分解進(jìn)而減少脂質(zhì)蓄積[24],這提示Rab18可通過減少泡沫細(xì)胞形成進(jìn)而抑制AS發(fā)生發(fā)展,但Rab18減少脂質(zhì)蓄積的具體機(jī)制尚不明了。本研究則表明,Rab18是通過PPARγ調(diào)控PLIN2的表達(dá)從而抑制了巨噬細(xì)胞內(nèi)脂質(zhì)蓄積。
Figure 3.Immunofluorescence experiments showed wild-type(WT),high-activity(HA)and low-activity(LA)Rab18 plasmid trans?fection situation.Rab18 visualized by FITC-conjugated AffiniPure(green).The scale bar=20μm.圖3 野生型、高活型和低活型Rab18質(zhì)粒的轉(zhuǎn)染情況
Figure 4.The changes of the expression of Rab18(A),PLIN2 and PPARγ(B)in the cells expressing wild-type(WT),high-activity(HA)and low-activity(LA)Rab18.Mean±SD.n=3.*P<0.05 vs control group.圖4 各轉(zhuǎn)染組細(xì)胞中Rab18、PPARγ和PLIN2表達(dá)的變化
既往研究表明,PLIN2是脂滴膜上的重要圍脂滴蛋白[25]。PLIN2 N端的PAT結(jié)構(gòu)域維持脂滴的穩(wěn)定;其親脂性C端,促進(jìn)脂質(zhì)合成[9,25]。此外PLIN2能通過調(diào)節(jié)脂滴周圍脂肪合成與分解相關(guān)的酶,促進(jìn)脂滴中脂質(zhì)核心膽固醇酯和甘油三酯的合成,進(jìn)而增加細(xì)胞內(nèi)脂質(zhì)蓄積[8,26]。細(xì)胞受脂肪分解刺激時(shí),泛素-蛋白酶體溶解PLIN2的N端,脂滴的動(dòng)態(tài)平衡被破壞,細(xì)胞脂質(zhì)蓄積減少[25,27]。Makino等[28]研究顯示,Rab18與PLIN2均參與調(diào)節(jié)以AS為病理基礎(chǔ)的心血管疾病,且過表達(dá)高活型Rab18時(shí)PLIN2下調(diào),但兩者之間的具體機(jī)制尚不清楚。細(xì)胞核轉(zhuǎn)錄因子PPARγ是巨噬細(xì)胞內(nèi)脂質(zhì)代謝的重要調(diào)節(jié)因子[29],其C端有配體結(jié)合區(qū)域,與配體結(jié)合后被激活,然后其N端的DNA結(jié)合結(jié)構(gòu)域與視黃醇類X受體(reti?noicacid retinoid X receptor,RXR)結(jié)合形成異二聚體,進(jìn)而與下游基因啟動(dòng)區(qū)域中的DNA序列即過氧化物酶體增殖物反應(yīng)元件(peroxisome proliferator re?sponse element,PPRE)序列相結(jié)合,從而調(diào)節(jié)目的基因的轉(zhuǎn)錄。PLIN2是PPARγ的靶基因之一,PPARγ可與PLIN2啟動(dòng)子上的PPRE序列相結(jié)合,促進(jìn)PLIN2的表達(dá)及LDs形成[30]。Rab21可通過PPARγ/肝X受體(liver X receptors,LXR)信號通路,促進(jìn)脂質(zhì)蓄積。Rab18與Rab21均為Rab家族中成員。由此我們猜想Rab18是否也可通過PPARγ調(diào)節(jié)脂質(zhì)蓄積。PPARγ 過表達(dá)時(shí)PLIN2的表達(dá)升高[29],提示Rab18與PPARγ和PLIN2之間可能存在相互作用,但其具體機(jī)制尚不明確。
Figure 5.Changes in intracellular lipid accumulation in each transfection group(oil red O staining,sclae bar=20μm).Mean±SD.n=3.*P<0.05 vs control group.圖5 各轉(zhuǎn)染組細(xì)胞內(nèi)脂質(zhì)蓄積變化情況
Figure 6.Co-localization of Rab18(red)and PPARγ(green)in lipid-laden macrophages(A),and the effect of Rab18 on PPARγ(green)protein and its nuclear(blue)translocation in lipid-laden macrophages(B).The scale bar=20μm.圖6 荷脂巨噬細(xì)胞中Rab18與PPARγ共定位情況及Rab18對PPARγ蛋白及其核轉(zhuǎn)位的影響
Figure 7.Effects of GW1929 and T0070907 on the expression of PLIN2 in the lipid-laden macrophages expressing high-activity(HA)Rab18 were detected by Western blot.Mean±SD.n=3.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs HA group.圖7 Western blot檢測GW1929和T0070907對表達(dá)高活型Rab18的荷脂巨噬細(xì)胞中PLIN2表達(dá)的影響
Figure 8.Effects of GW1929 and T0070907 on the expression of PLIN2 in the lipid-laden macrophages expressing high-activity(HA)Rab18 were detected by immunofluorescence staining(scale bar=20μm).Mean±SD.n=3.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs HA group.圖8 免疫熒光染色檢測GW1929和T0070907對表達(dá)高活型Rab18的荷脂巨噬細(xì)胞中PLIN2表達(dá)的影響
我們的研究結(jié)果顯示Rab18各活性轉(zhuǎn)染組間Rab18表達(dá)水平的差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著性,但表達(dá)野生型Rab18和高活型Rab18的細(xì)胞中PPARγ和PLIN2表達(dá)量均顯著下降,脂質(zhì)蓄積減少;表達(dá)低活型Rab18的細(xì)胞中PPARγ和PLIN2表達(dá)及脂質(zhì)蓄積均無明顯變化。不同活性Rab18在巨噬細(xì)胞中表達(dá)無差異但對PPARγ和PLIN2表達(dá)及脂質(zhì)蓄積影響不同,是因?yàn)閷?shí)驗(yàn)中不同活性Rab18發(fā)揮生物學(xué)作用的差異與其蛋白表達(dá)量無關(guān),而與其自身生物學(xué)功能有關(guān)[31]。這進(jìn)一步說明Rab18與PPARγ可能存在相互作用。同時(shí),我們觀察到Rab18與PPARγ存在共定位,表達(dá)高活型Rab18的細(xì)胞中轉(zhuǎn)入細(xì)胞核內(nèi)的PPARγ明顯減少,且細(xì)胞內(nèi)PPARγ含量明顯降低。以上實(shí)驗(yàn)結(jié)果說明,Rab18能下調(diào)PPARγ表達(dá),且抑制PPARγ轉(zhuǎn)入細(xì)胞核內(nèi)。轉(zhuǎn)入細(xì)胞核的PPARγ減少,是否會(huì)影響其下游基因PLIN2表達(dá)尚待進(jìn)一步研究。Kim等[13]發(fā)現(xiàn)PPARγ激動(dòng)時(shí)PLIN2表達(dá)明顯上調(diào)。本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),表達(dá)高活型Rab18的細(xì)胞中PPARγ激動(dòng)時(shí),PLIN2表達(dá)與對照組相比差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)顯著性。這說明活化的Rab18能抑制PPARγ激動(dòng)時(shí)對PLIN2表達(dá)的促進(jìn)作用。另外,我們的檢測結(jié)果顯示表達(dá)高活型Rab18的細(xì)胞中PPARγ被抑制時(shí),Rab18抑制PLIN2的作用進(jìn)一步增強(qiáng),說明Rab18可通過PPARγ影響PLIN2的表達(dá),從而調(diào)控巨噬細(xì)胞脂質(zhì)蓄積。
Figure 9.Effects of GW1929 and T0070907 on lipid accumulation in the lipid-laden macrophages expressing high-activity(HA)Rab18(oil red Ostaining,sclae bar=20μm).Mean±SD.n=3.*P<0.05 vs control group;#P<0.05 vs HA group.圖9 GW1929和T0070907對過表達(dá)Rab18的荷脂巨噬細(xì)胞脂質(zhì)蓄積的影響
綜上所述,我們的實(shí)驗(yàn)表明,Rab18可減少巨噬細(xì)胞脂質(zhì)蓄積,其發(fā)生機(jī)制是通過PPARγ下調(diào)PLIN2的表達(dá),從而減少細(xì)胞脂質(zhì)蓄積。這一機(jī)制的發(fā)現(xiàn)可能為AS的防治提供新的實(shí)驗(yàn)依據(jù)。