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      榔榆組織培養(yǎng)再生體系構建及其移栽苗耐鹽耐鎘性試驗

      2021-10-30 07:34:46郭佳惠
      江蘇林業(yè)科技 2021年4期
      關鍵詞:莖段外植體生根

      周 潔,郭佳惠

      (1.江蘇省林業(yè)科學研究院,江蘇 南京 211153;2.南京林業(yè)大學,江蘇 南京 210037)

      榔榆(UlmusparvifoliaJacq.)為榆科(Ulmaceae)榆屬的落葉喬木,別名蚊榔樹、脫皮榆、小葉榆等,是珍貴硬闊用材樹種,其樹高達25 m,胸徑可達1.2 m[1-2]。榔榆適應性較強,喜光,喜溫暖濕潤氣候,耐干旱瘠薄,對土壤的酸堿度要求較低,在不同土質下均能正常生長[3-5],以氣候溫暖,土壤肥沃、排水良好的中性土壤為最適宜的生境。

      榔榆為適合江蘇發(fā)展的鄉(xiāng)土優(yōu)質珍貴用材樹種和我國雜木類盆景中嶺南派盆景的重要樹種之一[6]。作為榆科中抗榆樹荷蘭病重要的種質資源,其也是礦區(qū)的重要綠化樹種[7]和鹽堿地生態(tài)修復樹種。目前榔榆的繁殖方法主要為扦插、播種、嫁接,育苗周期長,不利于新品種的快速推廣和應用。建立榔榆組織培養(yǎng)快繁技術體系對于榔榆新品種的快速推廣具有重要的意義。

      近年來,在榔榆的抗性方面開展了抗旱[8-9]、干濕交替[10]、耐熱等研究。2005年,韋小麗在貴州喀斯特地貌區(qū)進行青檀、樸樹、榔榆的水分脅迫試驗,發(fā)現(xiàn)榔榆抗旱能力更強。吳曉宇[6]研究了榔榆的低溫脅迫生理變化,發(fā)現(xiàn)榔榆是通過體內(nèi)膜透性的改變以及滲透物質積累來抵抗低溫造成的傷害。但在耐重金屬和耐鹽方面研究還較少。為此,本文利用組培養(yǎng)技術對榔榆進行擴大繁殖,對其移栽苗進行了耐鹽和耐重金屬鎘的抗性試驗。

      1 材料與方法

      1.1 試驗材料

      選取生長健壯的榔榆優(yōu)良無性系,采用未木質化或半木質化的1年生帶芽莖段作為外植體,進行脫毒、誘導叢生苗,進而增殖培養(yǎng),最后進行壯苗生根培養(yǎng)。本試驗包括芽誘導培養(yǎng)基、增殖培養(yǎng)基和生根培養(yǎng)基。培養(yǎng)室溫度為22—25 ℃,光照度2 000—3 000 lx,16 h/d光照培養(yǎng)。

      1.2 外植體脫毒

      從植株上剪取嫩梢及半木質化莖段,用自來水沖洗10 min,再用洗衣粉溶液漂洗5—10 min,放入70%酒精中浸泡30 s,然后用2%和5%的次氯酸鈉溶液分別浸泡1—2,2—5,5—8,8—10 min,最后用無菌水沖洗5次。將沖洗后的芽置于無菌濾紙上,吸干表面水分,用剪刀剪去基部傷口部分,將莖段接種于已滅菌的初代培養(yǎng)基上。

      1.3 試管苗的誘導、增殖和生根培養(yǎng)

      切去莖段2端,將帶芽莖段接種于添加了不同質量濃度植物生長調節(jié)劑的誘導培養(yǎng)基中。待莖段長出幼苗,將誘導得到的無菌苗進行繼代、增殖和生根培養(yǎng)。培養(yǎng)基中含有不同質量濃度的6-BA(0.05,0.20,0.50,1.00 mg/L)與IBA(0.025,0.005,0.002 mg/L)或NAA(0.01,0.05,0.10,0.50,1.00 mg/L),TDZ(0.01,0.02,0.10 mg/L)組合的MS 和WP培養(yǎng)基中,所用誘導、增殖和生根培養(yǎng)基如表1,根據(jù)出苗和出芽狀態(tài)篩選培養(yǎng)基配方。蔗糖為30 g/L,瓊脂8 g/L,pH5.8。

      表1 參試培養(yǎng)基生長調節(jié)劑配方

      1.4 煉苗及移栽

      用于抗性試驗的組織培養(yǎng)幼苗移栽在光照培養(yǎng)室內(nèi)進行,溫度保持在22—25 ℃,光照強度為20 000 lx,光照周期為16 h/8 h。選用1 L的塑料罐,裝入泥炭土,將帶根的整株組織培養(yǎng)苗移栽到塑料罐中,用噴壺噴施罐子四周有水珠但不滴水,用保鮮膜進行封口,7 d后將保鮮膜周邊和中間扎洞,待植株新長出2—3片新的嫩葉后揭開一半保鮮膜,14—21 d后完全揭開,2—3 d用噴壺噴水保濕,防止強光照導致嫩葉失水。煉苗28 d后,將組織培養(yǎng)苗移栽至溫室大棚,進行容器育苗。容器選用直徑為12 cm的黑色塑料袋,基質配方為泥炭∶蛭石∶珍珠巖=7∶2∶1(容積比),每7 d澆水1次,澆水溶肥1次,水溶肥為1 000倍的花多多1號。

      1.5 移栽苗抗性試驗

      將移栽到育苗袋中的組織培養(yǎng)苗進行鹽脅迫和鎘脅迫試驗,鹽脅迫采用100 mM的NaCl溶液,鎘脅迫采用20 mg/kg的CdCl2溶液(pH 5.5),試驗處理苗各15株,3組重復,脅迫處理21 d,取葉樣各0.5 g,放4 ℃冰箱備用,測取各生理指標。

      1.6 生理指標的測定

      取出葉片,按照組織質量(g)∶提取液體積(mL)為1∶(5—10)的比例(本試驗稱取組織約0.1 g,加入提取液1 mL),進行冰浴勻漿。4 ℃下以8 000 g離心10 min,取上清液,置冰上待測。各指標采用試劑盒法測定(蘇州科銘生物技術有限公司):超氧化物歧化酶SOD(貨號SOD-2-Y)、過氧化物酶POD(貨號POD-2-Y)、過氧化氫酶CAT(貨號CAT-2-Y)、丙二醛MDA(貨號MDA-2-Y)。

      2 結果與分析

      2.1 外植體的滅菌試驗

      榔榆優(yōu)良無性系莖段外植體用不同質量分數(shù)的次氯酸鈉溶液進行滅菌處理,結果發(fā)現(xiàn)新萌出的綠色嫩梢在2% NaClO溶液中滅菌2—5 min效果最好,可以獲得無菌莖段。NaClO質量分數(shù)高,嫩梢會產(chǎn)生毒害,發(fā)黑死亡;處理時間超過5 min新梢莖段褐化,葉片發(fā)黑。半木質化的莖段在5%的NaClO溶液5—8 min效果較好,時間延長后容易產(chǎn)生毒害,莖段褐化,不利于萌出新芽(如圖1)。

      圖1 不同質量分數(shù)的NaClO溶液對莖段滅菌試驗

      2.2 外植體的誘導培養(yǎng)

      剪取長約3—5 cm的無菌莖段接種到配制的培養(yǎng)基上誘導嫩芽(見圖2),可以看出S2,S3,S7,S8,S9均能誘導出嫩芽。S2誘導的幼苗生長速度較快,20 d能進行繼代培養(yǎng);S3則長出較多愈傷組織,S7的苗生長較慢,長勢弱,沒有顯著的高生長;S8誘導的苗較小;其余培養(yǎng)基均未誘導出健康的幼苗。認為榔榆較適誘導培養(yǎng)基為S2:MS+1.00 mg/L 6-BA + 0.002 mg/L IBA,蔗糖30 g/L,pH 5.8。

      圖2 誘導培養(yǎng)基篩選

      2.3 試管苗的增殖培養(yǎng)

      將初代培養(yǎng)誘導的嫩苗剪成3 cm左右的莖段放置在表1的培養(yǎng)基上,以期誘導榔榆的叢生芽(見圖3)。由圖3可以看出,在培養(yǎng)基1上生長,3 d后側芽開始萌動,7 d左右生成幼苗;在培養(yǎng)基2—5中均能產(chǎn)生叢芽。在培養(yǎng)基3,4中產(chǎn)生較多愈傷組織,芽淺綠,愈傷組織發(fā)黃成塊,容易褐化,在培養(yǎng)基5上增殖系數(shù)較高,能長出芽8—10個,芽綠色健壯,認為5號為適宜增殖培養(yǎng)基,配方為MS+0.50 mg/L 6-BA +0.10 mg/L NAA +0.01 mg/L TDZ。

      圖3 叢芽增殖培養(yǎng)

      2.4 試管苗的芽伸長培養(yǎng)

      誘導叢芽后,芽經(jīng)過高生長長成植株(見圖4)。從圖4中可以看出,S1,S4和5號可以誘導芽的生長,S5,S6芽粗壯,但是高沒有生長。S1,S4為嫩苗生長,5號為在增殖培養(yǎng)基上繼續(xù)生長,可以省去換培養(yǎng)基的步驟,但是容易木質化,幼嫩的芽容易褐化。所以可以選擇S4作為生長培養(yǎng)基,配方為S4:MS+ 0.50 mg/L 6-BA + 0.05 mg/L NAA + 0.02 mg/L TDZ。

      圖4 芽伸長培養(yǎng)

      2.5 試管苗的生根培養(yǎng)

      在瓶內(nèi)生根形成完整植株,可以提高移栽成活率。在生根培養(yǎng)基表1的配方中,R1,R2培養(yǎng)基生長的根較細,R3的生根速度最快,7—10 d就能生根,根較為健壯,且根系發(fā)達,R4生根粗壯,但是根部愈傷組織容易褐化,影響植株的生長(見圖5)。所以R3:WPM+0.50 mg/L NAA 為最適生根培養(yǎng)基。

      2.6 移栽苗的鹽脅迫和鎘脅迫試驗

      在鹽脅迫下,榔榆移栽苗的SOD活性升高,達938.21 U/g;CAT的活性有所降低,為112.59 nmol/(min·g);POD活性降低最多,由未處理的5 548.58 U/g,降至為1 859.23 U/g;MDA含量升高,為80.50 nmol/g(見圖6)。在酸性的重金屬Cd脅迫21 d,榔榆移栽苗SOD活性降至650.93 U/g;CAT的活性升高至182.44 nmol/(min·g);POD活性降低最多,由未處理的5 548.58 U/g降至1 550.63 U/g;而MDA含量升高,為86.29 nmol/g(見圖6)。

      圖6 榔榆耐鹽和耐鎘脅迫的生理變化

      3 討論與結論

      榆屬常見樹種組織培養(yǎng)工作在國內(nèi)外已經(jīng)取得了一些成果。Dorion,Bolyard,F(xiàn)enning等[11-13]利用美國榆嫩枝的形成層組織作為外植體,獲得了愈傷組織,但是沒有分化。Thakur等人獲得愈傷組織并進行2次繼代培養(yǎng),使其分化出叢生芽得到了植株[14]。國內(nèi)相繼建立了白榆[15]、黃榆[16]、家榆[17]、金葉榆[18]等組織培養(yǎng)體系,但是榔榆的組織培養(yǎng)還未見研究。本研究獲得了榔榆的誘導、增殖、伸長和生根的培養(yǎng)基配方,建立了榔榆的工廠化育苗快繁體系。

      本研究成功建立了珍貴彩色鄉(xiāng)土樹種榔榆優(yōu)良無性系的組織培養(yǎng)再生體系,探究了移栽苗對鹽脅迫和重金屬鎘脅迫的應答反應,說明榔榆組織培養(yǎng)移栽苗對于高鹽和重金屬鎘土壤具有一定的適應性,為榔榆種苗繁育和推廣應用提供了技術參考,對生態(tài)環(huán)境綠化和修復具有一定意義。

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