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      多重PCR 結(jié)合毛細(xì)管電泳檢測(cè)兒童呼吸道病原體方法的建立及應(yīng)用

      2022-01-28 06:30:44馬菁菁陶桂香
      關(guān)鍵詞:毛細(xì)管電泳病原體

      馬菁菁,陶桂香,陳 倩*

      1南京醫(yī)科大學(xué)附屬兒童醫(yī)院兒科研究所,江蘇 南京 210029;2南京醫(yī)科大學(xué)兒科學(xué)院,江蘇 南京 210029

      [關(guān)鍵字]兒童;呼吸道病原體;多重PCR;毛細(xì)管電泳

      急性呼吸道感染(acute respiratory infections,ARI)是兒科最常見的呼吸系統(tǒng)疾病,ARI 的發(fā)病率占兒童呼吸系統(tǒng)疾病首位[1-3],據(jù)統(tǒng)計(jì),5歲以下兒童每年發(fā)生的600 萬例死亡中有100 萬例是由ARI 引起的[4-5],給兒童的生長(zhǎng)發(fā)育和身體健康帶來了較大危害。許多病毒和細(xì)菌都能引起ARI,并且由于患者可能攜帶不止一種病原體,不同病毒之間以及病毒和細(xì)菌之間的臨床體征相互重疊,往往使得僅基于臨床表現(xiàn)的病因診斷變得困難,無法確定致病原因,導(dǎo)致抗生素治療無效,造成抗生素濫用以及醫(yī)源性交叉感染[6-7],因此需要對(duì)呼吸道病原體進(jìn)行快速檢測(cè),從而幫助診斷和準(zhǔn)確用藥。

      目前國(guó)內(nèi)外對(duì)呼吸道病原體檢測(cè)的方法較多,主要包括傳統(tǒng)的分離培養(yǎng)方法、免疫學(xué)檢測(cè)方法以及新興的分子生物學(xué)檢測(cè)方法[8-10]。病毒的分離培養(yǎng)及鑒定周期較長(zhǎng);免疫學(xué)方法在窗口期通常不能反映現(xiàn)癥感染;單病原體的PCR 方法檢測(cè)通量較低。隨著病原體分子診斷技術(shù)的不斷提高,多重核酸擴(kuò)增檢測(cè),已經(jīng)被逐漸運(yùn)用在臨床檢驗(yàn)過程中,它是一種速度快、靈敏性高、特異性強(qiáng)的檢測(cè)方法,可以顯著減少檢測(cè)操作時(shí)間和成本,并且能夠快速得到結(jié)果[11]。此外,多重核酸擴(kuò)增檢測(cè)能夠提供多目標(biāo)產(chǎn)物的共擴(kuò)增,從而能夠?qū)粑兰膊』旌细腥镜念A(yù)后和復(fù)發(fā)提供重要信息。但是,目前通常使用的多重PCR檢測(cè)試劑盒檢測(cè)病原體的種類有限:Zhang 等[12]的研究只能檢測(cè)大腸桿菌的各種亞型,不能檢測(cè)多種病原體;劉曉萌等[13]對(duì)肺炎常見病原菌的多重PCR 檢測(cè),僅能檢測(cè)肺炎鏈球菌、流感嗜血桿菌、肺炎克雷伯菌3 種病原體。這一現(xiàn)狀導(dǎo)致在快速鑒別病原體方面存在較大困難,不能及時(shí)指導(dǎo)臨床治療。

      本研究以兒童常見呼吸道病原體:肺炎支原體(Mycoplasma pneumoniae,MP)、金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus,S.au)、肺炎克雷伯菌(Klebsiella pneumoniae,KP)、銅綠假單胞菌(Pseudomonas aeruginosa,P.Ae)、陰溝桿菌(Enterobacter cloacae,Ecl)、白色假絲酵母菌(Candida albicans,Cal)、鮑曼不動(dòng)桿菌(Acinetobacter baumannii,Aba)作為診斷目標(biāo),建立多重PCR 結(jié)合毛細(xì)管電泳法檢測(cè)體系,以提高兒童呼吸道感染診斷的效率。

      1 材料和方法

      1.1 材料

      引物由金斯瑞生物科技有限公司合成,磁珠法病毒總核酸提取試劑盒(西安天隆科技有限公司),毛細(xì)管電泳儀(Bioptic,江蘇光鼎生物公司)。

      1.2 方法

      1.2.1 對(duì)象

      隨機(jī)收集南京市兒童醫(yī)院2020年11—12月266例兒童呼吸道病原體臨床檢測(cè)剩余樣本。

      1.2.2 痰液處理及核酸提取

      本研究創(chuàng)造性使用了一種高效核酸釋放劑,使得細(xì)菌的細(xì)胞壁以及病毒的核衣殼充分破裂,核酸更加充分地釋放出來。同時(shí)釋放的核酸尤其是一些病毒的核酸是RNA,RNA 非常不穩(wěn)定,通過加入RNA 酶抑制劑和RNA 保護(hù)劑等,最大程度防止RNA 的降解;又針對(duì)細(xì)菌核酸提取,在裂解液中加chelex-100 提高核酸純度。通過以上方式的優(yōu)化,在痰液樣本被充分液化的基礎(chǔ)上,樣本中的細(xì)菌或病毒被充分純化,同時(shí)將后續(xù)核酸的提取時(shí)間從傳統(tǒng)的柱膜法或磁珠法的30~60 min縮短到僅需約8 min,核酸釋放量也是傳統(tǒng)方法的兩倍左右。

      1.2.3 引物設(shè)計(jì)、PCR擴(kuò)增體系及條件建立

      我們利用相同的嵌合引物來設(shè)計(jì)特異引物,首先確定基本的PCR 反應(yīng)體系,進(jìn)行單重PCR,篩選出最佳基因特異性引物濃度。按照上述引物濃度以及PCR促進(jìn)劑濃度[四甲基氯化銨(TMAC)、甜菜堿、BSA、四甲基亞砜(TMSO)、海藻糖等],進(jìn)行了多重?cái)U(kuò)增體系的摸索,最終建立起一個(gè)7重?cái)U(kuò)增體系,分別包括肺炎支原體、肺炎克雷伯菌、銅綠假單胞菌、金黃色葡萄球菌、陰溝桿菌、白色假絲酵母菌、鮑曼不動(dòng)桿菌。其引物設(shè)計(jì)如表1所示。擴(kuò)增體系為50 μL:ddH2O 34.5 μL,10×Taq buffer 5 μL,dNTP Mix1μL,Primer Pool 4.0 μL,模 板5 μL,Taq 酶0.5 μL。單重PCR擴(kuò)增條件方案:95 ℃5 min;95 ℃15 s、55~60 ℃40 s、72 ℃30 s(10個(gè)循環(huán));95 ℃15 s、55~60 ℃30 s、72 ℃30 s(20 個(gè)循環(huán));72 ℃5 min。多重PCR 擴(kuò)增條件方案:95 ℃5 min;95 ℃15 s、58 ℃40 s、72 ℃30 s(10 個(gè)循環(huán));95 ℃15 s、60 ℃30 s、72 ℃30 s(20個(gè)循環(huán));72 ℃5 min。

      表1 本文所使用引物

      1.2.4 毛細(xì)管電泳檢測(cè)

      取1 μL 擴(kuò)增后核酸樣本,使用毛細(xì)管電泳儀對(duì)PCR擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行檢測(cè)。

      1.2.5 臨床樣本檢測(cè)

      采用上述建立方法檢測(cè)266例臨床檢測(cè)剩余樣本。

      2 結(jié)果

      2.1 7 種呼吸道病原體單重PCR 產(chǎn)物毛細(xì)管電泳檢測(cè)分析

      對(duì)7 種呼吸道病原體:MP、S.au、KP、P.Ae、Ecl、Cal、Aba 分別進(jìn)行單重PCR 擴(kuò)增,產(chǎn)物經(jīng)毛細(xì)管電泳后均檢測(cè)到相應(yīng)片段,無明顯的感染雜峰出現(xiàn),引物設(shè)計(jì)合理(圖1)。

      圖1 7種呼吸道病原體單重PCR結(jié)合毛細(xì)管電泳檢測(cè)結(jié)果

      2.2 7 種呼吸道病原體多重PCR 擴(kuò)增結(jié)合毛細(xì)管電泳檢測(cè)分析

      對(duì)7 種呼吸道病原體逐步進(jìn)行多重PCR 擴(kuò)增,調(diào)整擴(kuò)增程序以及引物濃度,至無非特異性擴(kuò)增條帶,最終建立一個(gè)7種呼吸道病原體多重PCR擴(kuò)增結(jié)合毛細(xì)管電泳的檢測(cè)系統(tǒng),該系統(tǒng)擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行毛細(xì)管電泳,均檢測(cè)到對(duì)應(yīng)片段,無明顯雜峰出現(xiàn)(圖2)。

      圖2 7種呼吸道病原體多重PCR結(jié)合毛細(xì)管電泳檢測(cè)結(jié)果

      2.3 臨床樣本檢測(cè)結(jié)果

      對(duì)266例兒童呼吸道病原體痰液樣本,進(jìn)行7重PCR擴(kuò)增并結(jié)合毛細(xì)管電泳分析,結(jié)果顯示37例陽性,其中:8例肺炎支原體陽性(陽性率為3.0%),2例白色假絲酵母陽性(陽性率為0.8%),10 例金黃色葡萄球菌陽性(陽性率為3.8%),8 例肺炎克雷伯菌陽性(陽性率為3.0%),2例銅綠假單胞菌陽性(陽性率為0.8%),1 例陰溝桿菌復(fù)合群陽性(陽性率為0.4%),3例鮑曼不動(dòng)桿菌陽性(陽性率為1.1%)。該檢測(cè)結(jié)果同痰培養(yǎng)以及實(shí)時(shí)熒光定量PCR(因肺炎支原體較難培養(yǎng),故與實(shí)時(shí)熒光定量PCR結(jié)果作對(duì)比)比較,敏感性提高,多檢測(cè)3例(表2)。

      表2 兩種檢測(cè)方法陽性對(duì)比 (n)

      2.4 多重PCR 與單重PCR 結(jié)合毛細(xì)管電泳檢測(cè)的比較

      在266 例兒童呼吸道病原體痰液標(biāo)本中,隨機(jī)選擇100 例,分別進(jìn)行7 種病原體的單重PCR 擴(kuò)增并結(jié)合毛細(xì)管電泳和多重PCR 結(jié)合毛細(xì)管電泳檢測(cè)分析,結(jié)果一致(表3)。

      表3 多重PCR結(jié)合毛細(xì)管電泳與單重PCR結(jié)合毛細(xì)管電泳檢測(cè)方法對(duì)比 (n)

      3 討論

      引起兒童ARI 的病原體種類較多,涉及多種病毒和細(xì)菌,且臨床癥狀表現(xiàn)相似,因此臨床醫(yī)生很難根據(jù)臨床癥狀做出準(zhǔn)確的病因診斷,如何快速準(zhǔn)確地檢測(cè)出患者所感染的呼吸道病原體一直是臨床診斷面臨的難點(diǎn)[14]。本研究建立了7種呼吸道病原體PCR擴(kuò)增結(jié)合毛細(xì)管電泳分析的技術(shù)。

      這種檢測(cè)方法可以一次性檢測(cè)并區(qū)分多種呼吸道感染的病原體。本研究選取各種呼吸道感染病原體的保守序列進(jìn)行PCR分析,在設(shè)計(jì)引物的同時(shí)注意不同病原體產(chǎn)物長(zhǎng)度的差異化,以便于毛細(xì)管電泳的直觀判斷分析。陽性參考品經(jīng)毛細(xì)管電泳檢測(cè),條帶長(zhǎng)度與設(shè)計(jì)長(zhǎng)度基本一致,未出現(xiàn)明顯非特異性檢測(cè)峰;利用此方法檢測(cè)了2020年11—12 月隨機(jī)收集的266 例兒童呼吸道病原體痰液樣本,各病原體的檢出率高于痰培養(yǎng)及實(shí)時(shí)熒光定量PCR,且檢測(cè)時(shí)間遠(yuǎn)遠(yuǎn)短于細(xì)菌培養(yǎng),能夠滿足臨床實(shí)驗(yàn)室診斷的需求。除此之外,本研究在266 例上述標(biāo)本中,隨機(jī)選取100例標(biāo)本,進(jìn)行7種病原體單重PCR結(jié)合毛細(xì)管電泳檢測(cè),該結(jié)果與多重PCR結(jié)果完全一致,進(jìn)一步佐證了多重PCR結(jié)合毛細(xì)管電泳檢測(cè)技術(shù)的可靠性。

      多重PCR結(jié)合毛細(xì)管電泳檢測(cè),在發(fā)揮毛細(xì)管電泳檢測(cè)技術(shù)優(yōu)勢(shì)的前提下,最大程度降低檢測(cè)成本,提高檢測(cè)效率[15],未來該技術(shù)值得在臨床大范圍推廣和應(yīng)用。

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