劉思敏,從艷霞,黃俊圻,陳 歡,龔 任,李 冰, 張海龍,齊玉堂,張維農
(1.武漢輕工大學 食品科學與工程學院,武漢430023; 2.國糧武漢科學研究設計院有限公司,武漢430079)
二亞油酰磷脂酰膽堿(DLPC)是大豆卵磷脂(PC)的主要活性成分[1],具有抗氧化[2]、預防纖維化[3]、抗炎、調節(jié)細胞凋亡、修復和保護細胞膜[4]等獨特的藥用價值及特殊生理功能。但天然存在的DLPC含量并不高,以大豆磷脂為例,其中的DLPC含量僅為10%左右。
國內外對磷脂的研究多集中在磷脂大類及磷脂酰膽堿(PC)分子種類的高效液相色譜檢測方法和營養(yǎng)功能上[5-10],對特異性磷脂分子(如DLPC、二油酰磷脂酰膽堿這類具有特定脂肪酰種類和位置的磷脂分子)的分離純化以及合成的相關報道較少。史蘇佳等[11]提出用正相硅膠柱純化二亞麻酰磷脂酰膽堿,但未提及對DLPC的純化程度,且以正己烷-甲醇-水作為洗脫劑,不利于回收,同時也不利于產品安全和環(huán)境友好[12]。酶法合成DLPC具有反應條件溫和、溶劑使用量少的特點,但目前該法對DLPC含量提高有限。因此,尋找一種高效、綠色環(huán)保的方法制備高純度DLPC具有很好的經(jīng)濟效益與社會價值。本文以大豆粉末磷脂為原料,經(jīng)95%乙醇溶液處理后,得到高純度的磷脂酰膽堿,再將磷脂酰膽堿溶于乙醇,用反相C18柱進行分離。考慮到甲醇在有機溶劑中價格低廉,而乙醇在食品加工中無毒無害,本研究考察了甲醇和乙醇作為洗脫劑對DLPC的分離純化效果,以期為制備高純度的DLPC提供參考。
1.1.1 原料與試劑
大豆粉末磷脂(PC含量30%,DLPC含量8.5%),安徽素之味生物科技有限公司;無水乙醇、乙醚、丙酮、甘油、乙酸銨,均為分析純;甲醇、正己烷、無水乙醇,均為色譜純;L-α-磷脂酰膽堿標準品(純度≥98%),百靈威科技有限公司;1,2-二亞油?;?3-sn-磷脂酰膽堿(DLPC,純度≥99%),美國Sigma公司。
1.1.2 儀器與設備
CHEETAHTMMP 100/200中壓快速純化制備系統(tǒng)、中壓制備型Claricep Flash C18色譜柱(20~35 μm,100 ?,40 g)、Venusil XBP C18色譜柱(250 mm×4.6 mm,5 μm),博納艾杰爾公司; Waters2996高效液相色譜儀(PDA 檢測器)、Waters1525 二元 HPLC 泵,Waters公司;ME204/02 電子天平,梅特勒-托利多儀器有限公司;YRE2000E旋轉蒸發(fā)儀,鞏義市予華儀器有限責任公司;DF-101S型集熱式恒溫磁力攪拌器,常州國華電器有限公司。
1.2.1 DLPC的分離純化
以大豆粉末磷脂為原料,DLPC的分離純化工藝流程如圖1所示。
1.2.1.1 原料預處理
取20 g大豆粉末磷脂于燒杯中,加入40 mL 95%的乙醇溶液,在50℃水浴中加熱攪拌均勻,靜置,收集上清液,于50℃旋轉蒸發(fā)除去溶劑,得到磷脂酰膽堿粗提物。取5 g磷脂酰膽堿粗提物于具塞圓底燒瓶中,加入20 mL 95%的乙醇溶液,于60℃加熱攪拌溶解,降溫至-7℃,保溫24 h,直接收集上清液,于50℃旋轉蒸發(fā)除去溶劑,得到高純度的磷脂酰膽堿(磷脂酰膽堿含量為90%,其中DLPC含量為28%)。
1.2.1.2 反相C18色譜柱分離純化DLPC
采用中壓制備型Claricep Flash C18色譜柱對磷脂酰膽堿中的DLPC進行分離純化。將1.2.1.1制備的磷脂酰膽堿溶解于乙醇中(料溶比0.5∶1),以此作為上樣原料進行上樣,然后用洗脫劑進行洗脫,每10 mL收集一玻璃試管,采用HPLC分析DLPC的純度,合并DPLC純度大于50%的洗脫液,真空脫溶得產品DLPC。
1.2.2 DLPC的HPLC測定[8]
1.2.2.1 標準曲線的制作
分別配制質量濃度梯度為0.10、0.25、0.50、0.75、1.00 mg/mL的DLPC標準溶液, 經(jīng)0.22 μm尼龍濾膜過濾后,進行HPLC分析。以峰面積(Y)為縱坐標,DLPC的質量濃度(X)為橫坐標繪制標準曲線,得到標準曲線方程(Y=13 074 294.896 8X+151 506.853 7,r2=0.997)。
HPLC分析條件:Venusil XBP C18色譜柱(250 mm×4.6 mm,5 μm);流動相為甲醇-正己烷-0.05 mol/L乙酸銨-甘油(體積比84∶6∶8∶0.6);檢測波長203 nm;流速1 mL/min;柱溫35℃;進樣量20 μL。
1.2.2.2 樣品處理及測定
對于洗脫液,直接取1 mL經(jīng)0.22 μm尼龍濾膜過濾后進行HPLC分析。對于DLPC產品,取50 mg DLPC產品,用3 mL乙醇溶解并定容于25 mL 容量瓶中,再取1 mL經(jīng)0.22 μm尼龍濾膜過濾后進行HPLC分析。采用面積歸一化法計算DLPC的純度。將樣品中DLPC的峰面積代入1.2.2.1標準曲線回歸方程,得到DLPC含量。分別按式(1)和式(2)計算洗脫液和DLPC產品中DLPC的得率。
Y1=c1V1/m×100%
(1)
式中:Y1為洗脫液中DLPC得率;c1為洗脫液中DLPC含量,mg/mL;V1為洗脫液體積,mL;m為上樣量,mg。
Y2=c2V2/m
(2)
式中:Y2為產品中DLPC得率;c2為產品乙醇溶解液中DLPC含量,mg/mL;V2為定容體積,mL;m為上樣量,mg。
2.1.1 洗脫流速的影響
在柱分離過程中洗脫流速是影響分離效果和成本的重要因素,洗脫流速過快時,樣品來不及平衡,影響分離效果;洗脫流速過慢時,會導致柱內擴散現(xiàn)象嚴重,同樣會影響分離效果[13]。此外,洗脫流速過快或者過慢還可能造成溶劑消耗量過大,增加生產成本。因此,有必要確立適宜的洗脫流速。本實驗以甲醇作為洗脫劑,固定上樣量為0.5 g(以40 g C18柱填充材料為基準,下同),在洗脫流速分別為12、20、28 mL/min時,對合并洗脫液的DLPC純度和得率進行分析,結果分別如圖1和表1所示。
圖1 甲醇洗脫體系下不同洗脫流速時的色譜圖
表1 甲醇洗脫體系下洗脫流速對DLPC分離效果的影響
由圖1可見,隨著洗脫流速的加快,DLPC在更短的時間內被洗脫出來,但不同結構的磷脂酰膽堿分離效果變差。由表1可知,隨著洗脫流速的增加,DLPC純度降低,得率升高。洗脫流速為20、28 mL/min時,DLPC純度分別為85.1%和83.7%,二者純度相差不大,同時二者溶劑消耗量接近;但洗脫流速為28 mL/min時DLPC得率更高,且洗脫時間更短。相比之下,以28 mL/min的洗脫流速進行洗脫在生產上更具有實際價值。
2.1.2 甲醇體積分數(shù)的影響
在反相柱分離系統(tǒng)中,洗脫劑中添加適量水分能提高分離效果,但水分含量過高會使反相柱的保留性能大大減弱[14]。本實驗中固定洗脫流速為28 mL/min,上樣量為0.5 g,以不同體積分數(shù)的甲醇為洗脫劑,對合并洗脫液的DLPC純度和得率進行分析,結果如圖2和表2所示。
圖2 甲醇洗脫體系下不同甲醇體積分數(shù)時的色譜圖
表2 甲醇洗脫體系下甲醇體積分數(shù)對DLPC分離效果的影響
由表2和圖2可見,隨著甲醇體積分數(shù)的降低,DLPC純度提高,在甲醇體積分數(shù)為90%時,DLPC純度高達95.5%,與 95%的甲醇相比,以90%甲醇作為洗脫劑進行洗脫時,其純度提高不到2百分點,但洗脫時間延長了3倍,溶劑消耗量增加了3倍。綜合考慮,95%甲醇更適合作為DLPC的洗脫劑。
2.1.3 上樣量的影響
在制備液相色譜中,樣品的上樣量是影響分離效果的重要因素之一。固定相負載樣品的能力是一定的,上樣量過多或者過少都不利于分離。上樣量過小,分離效率變低;上樣量過大,會導致相鄰峰的分離度降低,甚至重疊在一起無法分離,分離效果變差[15]。本實驗以95%甲醇為洗脫劑,固定洗脫流速為28 mL/min,以不同的上樣量進行上樣,對合并洗脫液的DLPC純度和得率進行分析,結果如圖3和表3所示。
圖3 甲醇洗脫體系下不同上樣量時的色譜圖
由圖3可見,不同上樣量下DLPC的洗脫時間無明顯差異。由表3可見,整體來看隨著上樣量的增加,DLPC純度呈下降趨勢,而得率呈升高趨勢??紤]到將該方法投入到生產中應盡可能提高樣品處理量,選擇0.5 g上樣量,既達到DLPC較高純度的要求,又達到更高產量的要求。
表3 甲醇洗脫體系下上樣量對DLPC分離效果的影響
2.2.1 洗脫流速的影響
按2.1.1分離條件,將洗脫劑甲醇換為乙醇,考察不同洗脫流速對DLPC分離效果的影響,結果如圖4和表4 所示。
圖4 乙醇洗脫體系下不同洗脫流速時的色譜圖
表4 乙醇洗脫體系下洗脫流速對DLPC分離效果的影響
由圖4可見,乙醇作為洗脫劑時,不同結構的磷脂酰膽堿重疊在一個峰上,無法分離。與甲醇相比,乙醇極性更弱,洗脫能力更強,磷脂酰膽堿更快流出,導致分離效果變差。由表4可見,在3種洗脫流速下,DLPC純度介于50% ~ 60%之間,得率介于21%~ 24%之間。綜合考慮效率和成本,選擇洗脫流速為28 mL/min。
2.2.2 乙醇體積分數(shù)的影響
相較甲醇洗脫體系,乙醇對磷脂酰膽堿洗脫能力更強,為了提高分離效果,需考慮更高水分含量對DLPC分離效果的影響。按2.1.2分離條件,將洗脫劑不同體積分數(shù)的甲醇換成不同體積分數(shù)的乙醇,考察乙醇體積分數(shù)對DLPC分離效果的影響,結果如圖5和表5所示。
圖5 乙醇洗脫體系下不同乙醇體積分數(shù)時的色譜圖
表5 乙醇洗脫體系下乙醇體積分數(shù)對DLPC分離效果的影響
由圖5和表5可見,隨著乙醇體積分數(shù)的降低,DLPC分離效果得到明顯改善。乙醇體積分數(shù)為90%時,DLPC純度僅為77.7%,遠未達到高純度磷脂酰膽堿的要求;而乙醇體積分數(shù)為80%時,DLPC純度可達96.1%。因此,選擇80%乙醇作為洗脫劑。
2.2.3 上樣量的影響
以80%乙醇為洗脫劑,固定洗脫流速為28 mL/min,考察上樣量對DLPC分離效果的影響,結果如圖6和表6所示。
圖6 乙醇洗脫體系下不同上樣量時的色譜圖
表6 乙醇洗脫體系下上樣量對DLPC分離效果的影響
由圖6可見,不同上樣量下DLPC的洗脫時間無明顯差異。由表6可見,隨著上樣量的增加,DLPC的純度略有下降,但都高于90%,上樣量0.75 g 與0.50 g相比,得率上升不到2百分點。綜合考慮分離效果和成本,選擇上樣量為0.75 g。
對優(yōu)化的甲醇洗脫體系(95%甲醇,洗脫流速28 mL/min,上樣量0.5 g)和乙醇洗脫體系(80%乙醇,洗脫流速28 mL/min,上樣量0.75 g)下產品DLPC的純度和得率進行檢測,結果表明,甲醇洗脫體系得到的產品DLPC純度為91.2%,得率為21.5%,乙醇洗脫體系得到的產品DLPC純度為92.6%,得率為20.1%。與優(yōu)化的甲醇洗脫體系相比,乙醇洗脫體系得到的DLPC純度更高,但得率有所下降,溶劑消耗量也更大。實際工業(yè)生產,需結合標準和法規(guī)選擇合適的洗脫體系。
以大豆粉末磷脂為原料提取磷脂酰膽堿,再采用反相制備色譜系統(tǒng)從磷脂酰膽堿中分離純化DLPC,以不同體積分數(shù)的甲醇或者乙醇作為洗脫劑均可實現(xiàn)DLPC的分離純化,其純度均能達到90%以上。本實驗采用的中壓柱色譜分離技術易于工業(yè)化,分離效果好,本研究結果將利于推進DLPC的制備及應用。