雷靜 劉澤世 高興輝 湯一葦★ 耿燕★
碳青霉烯類抗菌藥物具有抗菌譜廣、對(duì)大多數(shù)β?內(nèi)酰胺酶穩(wěn)定、不易被水解、不良反應(yīng)相對(duì)較少的特點(diǎn),是有效治療革蘭陰性桿菌嚴(yán)重感染的抗菌藥物之一。然而,在抗生素濫用問題日益嚴(yán)峻的今天,碳青霉烯類抗菌藥物也無法避免出現(xiàn)耐藥危機(jī),碳青霉烯類耐藥腸桿菌目細(xì)菌(carbap?enem?resistant Enterobacterales,CRE)的出現(xiàn),無疑使臨床抗感染治療陷于無藥可用的境地[1]。CRE耐藥問題不容小覷,尤其是產(chǎn)碳青霉烯酶腸桿菌目細(xì)菌(carbapenemase?producing Enterobacterales,CPE),早期快速、準(zhǔn)確地檢測(cè)CPE 是遏制其傳播的關(guān)鍵,也有助于精準(zhǔn)用藥治療[2]。
美國(guó)疾病預(yù)防與控制中心(centers for disease control and prevent,CDC)將CRE 定義為滿足以下任一條件:①腸桿菌目細(xì)菌對(duì)亞胺培南、美羅培南、厄他培南或多利培南任何一種碳青霉烯類抗菌藥物耐藥;對(duì)亞胺培南天然敏感性降低的細(xì)菌(如摩根菌屬、變形桿菌屬和普羅威登菌屬等),需參考除亞胺培南外的其他碳青霉烯類抗菌藥物的藥敏結(jié)果;②產(chǎn)碳青霉烯酶[3]。
產(chǎn)碳青霉烯酶是CRE 耐藥最主要的機(jī)制,其余耐藥機(jī)制還包括外膜孔蛋白缺失或突變協(xié)同AmpC 酶或超廣譜β?內(nèi)酰胺酶的表達(dá)、外排泵系統(tǒng)過度表達(dá)[4?5]。根據(jù)Ambler 分子分類方法,可將碳青霉烯酶分為A、B 和D 三類。見表1。
表1 碳青霉烯酶分類Table 1 classification of carbapenemases
Carba NP 試驗(yàn)是2015年CLSI 推薦的對(duì)CPE和產(chǎn)碳青霉烯酶銅綠假單胞菌的一種檢測(cè)方法,其原理為碳青霉烯酶水解亞胺培南后導(dǎo)致溶液PH值改變而發(fā)生顏色變化。據(jù)報(bào)道,Carba NP 試驗(yàn)檢測(cè)腸桿菌目細(xì)菌和銅綠假單胞菌產(chǎn)KPC、NDM、VIM、IMP 等碳青霉烯酶的靈敏度和特異度均>90%,但由于OXA?48 對(duì)碳青霉烯類藥物活性較弱,導(dǎo)致其結(jié)果具有較高的假陰性。因此,Carba NP 試驗(yàn)在OXA?48 高流行區(qū)域(如土耳其和其他中東地區(qū)等)不具備檢測(cè)優(yōu)勢(shì)[6?7]。另外,進(jìn)行Car?ba NP 試驗(yàn)應(yīng)選用非選擇性培養(yǎng)基進(jìn)行菌株培養(yǎng)。研究表明,從麥康凱和顯色培養(yǎng)基獲取的菌株在檢測(cè)VIM 或OXA?48 存在假陰性,而使用MH 平板時(shí),當(dāng)菌株同時(shí)攜帶OXA?48 和NDM/VIM 時(shí),結(jié)果存在假陰性[8?9]。
2017年,CLSI 推薦改良碳青霉烯滅活試驗(yàn)(modified carbapenem inactivation method,mCIM)用于檢測(cè)CPE。2018年,增加了EDTA 改良碳青霉烯滅活試驗(yàn)(EDTA?modified carbapenemase in?activation method,eCIM),根據(jù)碳青霉烯酶可水解美羅培南以及EDTA 可抑制金屬β?內(nèi)酰胺酶活性的原理,可區(qū)分細(xì)菌產(chǎn)酶類型。研究表明,mCIM檢測(cè)CPE 的靈敏度和特異度均為100%;eCIM 區(qū)分絲氨酸酶的靈敏度和特異度分別為100%、95.1%,MBLs 的靈敏度和特異度為98.4%和100%,若待測(cè)菌株同時(shí)存在絲氨酸酶和MBLs,eCIM 試驗(yàn)結(jié)果將出現(xiàn)誤差[10?12]。
根據(jù)3?氨基苯硼酸和乙二胺四乙酸可分別抑制絲氨酸酶和金屬β?內(nèi)酰胺酶活性的原理,可判斷待測(cè)菌株產(chǎn)酶類型,但無法檢測(cè)OXA 酶[13]。研究顯示,碳青霉烯酶抑制劑增強(qiáng)試驗(yàn)檢測(cè)單一酶型菌株的靈敏度為100%,特異度>98.8%,檢測(cè)同時(shí)產(chǎn)絲氨酸酶和MBLs 的靈敏度為96.8%,特異度為100%[14]。
基質(zhì)輔助激光解吸電離飛行時(shí)間質(zhì)譜(matrix?assisted laser desorption ionization time?of?flight mass spectrometry,MALDI?TOF MS)是近年來快速發(fā)展起來的一種檢測(cè)生物大分子的重要手段,被認(rèn)為是快速鑒定臨床微生物的新利器,通過測(cè)定蛋白特征峰或碳青霉烯類藥物結(jié)構(gòu)的完整性檢測(cè)酶的存在。結(jié)合目前研究結(jié)果,MALDI?TOF MS 技術(shù)檢測(cè)KPC 酶的靈敏度和特異度分別為85.1%和100%[15?16]。目前MALDI?TOF MS 在此方面的研究存在異質(zhì)性且無統(tǒng)一標(biāo)準(zhǔn)化的操作方法,進(jìn)行酶水解法時(shí)某些抗菌藥物溶液需自配,并需與待測(cè)菌共孵育1~2.5 h,且不同酶型孵育時(shí)間不同。
顯色培養(yǎng)基已廣泛應(yīng)用于臨床微生物的鑒別診斷,其原理為目標(biāo)細(xì)菌產(chǎn)生的特異性酶作用于底物而長(zhǎng)成有色菌落,由于添加抗菌藥物或其他抑制劑,非目標(biāo)性細(xì)菌生長(zhǎng)受限,可從樣本中直接分離出CRE。近年來,不同廠家研發(fā)了不同CRE商品化產(chǎn)品,如Brilliance CRE、bioMérieux chromID Carba、CHROMagar Colorex KPC 等。兩項(xiàng)研究表明,與PCR 相比,以上3 種顯色培養(yǎng)基的靈敏度分別為77.6%~78.0%、89.8%~91.0%和56.0%~83.7%,特異度分別為60.0%~87.1%、76.0%~95.0%和70.0~92.1%,但其對(duì)OXA?48 的檢測(cè)能力有待提高[17?18]。此外,一些產(chǎn)中間型碳青霉烯酶(NDM?1)菌株可能生長(zhǎng)不良[19]。CRE 表型檢測(cè)方法。見表2。
表2 CRE 表型檢測(cè)方法Table 2 CRE phenotypic testing methods
碳青霉烯酶基因型檢測(cè)是檢測(cè)能夠編碼碳青霉烯酶的DNA 序列。其主要檢測(cè)方法包括靶向基因檢測(cè)和二代測(cè)序。與表型方法相比,基因型方法的優(yōu)勢(shì)是能夠檢測(cè)并明確碳青霉烯酶基因型,檢測(cè)速度快,節(jié)省時(shí)間;劣勢(shì)是技術(shù)要求高,不能確定基因是否表達(dá),檢測(cè)成本高。見表3。
表3 CRE 耐藥基因檢測(cè)方法Table 3 CRE resistance genotype detection methods
酶免疫層析技術(shù)是一種以抗原抗體反應(yīng)為基礎(chǔ),用于體外快速檢測(cè)陽(yáng)性血培養(yǎng)物以及純菌落中碳青霉烯酶。近年來,不同廠家基于此技術(shù)推出不同的試劑盒,如NG?Test CARBA 5、RESIST?4 O.K.N.V.和免疫顯色試劑,可對(duì)blaKPC、blaNDM、blaVIM、blaIMP(RESIST?4 O.K.N.V.不能檢測(cè))和blaOXA?48進(jìn)行檢測(cè)。研究顯示,酶免疫層析技術(shù)檢測(cè)碳青霉烯酶的靈敏度和特異度均>92.0%,但當(dāng)細(xì)菌攜帶2 種或以上的酶型后,酶免疫層析方法只能檢測(cè)到部分酶型從而產(chǎn)生重大錯(cuò)誤[20?21]。
Carba?R Assay 是一種熒光定量PCR 檢測(cè)方法,可在50 min 內(nèi)檢測(cè)直腸拭子、尿液和純菌落中5 種碳青霉烯酶。一項(xiàng)多中心研究發(fā)現(xiàn),在直腸拭子和臨床菌株中,與測(cè)序結(jié)果相比,Carba?R 檢測(cè)碳青霉烯酶基因的總陽(yáng)性符合率分別為96.0%和99.7%,總陰性符合率分別為94.0%和98.0%[22]。此外,在301 份痰標(biāo)本中,Carba?R Assay 與PCR 方法相比,其陽(yáng)性一致率和陰性一致率分別為92.9%和86.7%[23]。而檢測(cè)血流感染菌株和陽(yáng)性血培養(yǎng)物時(shí),Carba?R 特異度為100%,NG?Test CARBA5和Carba?R 檢測(cè)菌株的靈敏度分別為92.1%和100.0%,陽(yáng)性血培養(yǎng)物的靈敏度分別為79.3%和100%[20]。應(yīng)用Carba?R 對(duì)CPE 定植患者進(jìn)行快速篩查,可將CPE 的定植率從28.6%降至5.6%,感染率從35.7%降至2.8%,有效地限制了其在醫(yī)療環(huán)境中傳播[24]。
BD MAX 是一種單試劑、即用、全自動(dòng)的多重實(shí)時(shí)PCR 體外診斷產(chǎn)品,能夠檢測(cè)菌株和直腸拭子中的blaKPC、blaNDM、blaVIM/blaIMP和blaOXA?48基因。一項(xiàng)研究結(jié)果顯示,BD MAX 檢測(cè)碳青霉烯酶的靈敏度和特異度可達(dá)97.1%和98.8%,但不能檢測(cè)到IMP?11、IMP?13、IMP?14 和OXA?535 突變體,而在直腸拭子標(biāo)本中,其靈敏度和特異度分別為92.8%和97.8%[25]。由于VIM 和IMP 之間缺乏區(qū)分,可能會(huì)限制BD MAX 在這些酶廣泛流行的地區(qū)應(yīng)用。
LightMix Modular Carbapenemases Kits 是一種多重PCR 方法,可根據(jù)需求選擇檢測(cè)靶標(biāo)數(shù)量,操作時(shí)間約5 min,90 min 內(nèi)報(bào)告結(jié)果。與測(cè)序結(jié)果相比,其對(duì)118 份臨床分離株的總體敏感性和特異性分別為99%和100%,且在CPE 定植患者中,Light?Mix Modular Carbapenemases Kits 與Xpert Carba?R檢測(cè)結(jié)果一致[26]。
ePlex BCID?GN panel 是一種采用電潤(rùn)濕和電子傳感器技術(shù)對(duì)血培養(yǎng)陽(yáng)性瓶進(jìn)行提取、擴(kuò)增和競(jìng)爭(zhēng)性DNA 雜交,可鑒定56 種細(xì)菌和真菌以及包括碳青霉烯酶在內(nèi)的β?內(nèi)酰胺酶檢測(cè)試劑盒。研究顯示,BCID?GN panel 對(duì)碳青霉烯酶的PPA 和NPA 分別為98.1%和99.9%[27]。
Verigene Gram?negative blood culture test 是一種非擴(kuò)增方法,其依賴于從陽(yáng)性血培養(yǎng)物中提取核酸,然后使用捕獲和檢測(cè)探針進(jìn)行基于微陣列的檢測(cè)。一項(xiàng)多中心研究表明,Verigene 與參考方法相比,對(duì)5 種碳青霉烯酶基因的陽(yáng)性一致率>94.3%,陰性一致率>99.9%[28]。若陽(yáng)性血培養(yǎng)物中為混合菌,Verigene 則無法確定耐藥基因與特定細(xì)菌之間的關(guān)聯(lián)[29]。
FilmArrayBloodCultureIdentification2(BCID2)采用巢式多重PCR 技術(shù),可在1 h 內(nèi)檢測(cè)包括blaKPC、blaIMP、blaNDM、blaOXA?48?like、blaVIM在內(nèi)的10 種耐藥基因[30]。一項(xiàng)研究顯示BCID2 鑒定微生物種類的靈敏度和特異度分別為98.8%和99.9%,檢測(cè)耐藥基因的靈敏度和特異度均為100%[31]。然而,在FilmArray 上進(jìn)行測(cè)試的成本超過100 美元,這限制了該方法在低中度流行環(huán)境下檢測(cè)blaKPC的實(shí)用性。
全基因組測(cè)序(whole genome sequencing,WGS)被認(rèn)為是檢測(cè)碳青霉烯酶基因的最全面的分子檢測(cè)方法,它還可測(cè)定除碳青霉烯酶外的其他耐藥基因。在過去十年中,WGS 的成本急劇下降,在臨床微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)室中的應(yīng)用已指日可待。然而,在將該技術(shù)納入常規(guī)臨床微生物學(xué)之前,還需要克服一些障礙,包括周轉(zhuǎn)時(shí)間長(zhǎng)和數(shù)據(jù)管理困難。宏基因組測(cè)序與WGS 類似,但它是直接從臨床樣本(如痰)中獲得DNA,由于數(shù)據(jù)分析的高成本和復(fù)雜性,目前還不足以對(duì)感染進(jìn)行評(píng)估。
進(jìn)行以上碳青霉烯酶實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)時(shí),應(yīng)同時(shí)測(cè)試相應(yīng)的陽(yáng)性和陰性質(zhì)控菌株。首選的陽(yáng)性質(zhì)控菌株為肺炎克雷伯菌ATCC BAA?1705(產(chǎn)KPC 型碳青霉烯酶)、肺炎克雷伯菌ATCC BAA?2146(產(chǎn)NDM 型金屬β?內(nèi)酰胺酶)和肺炎克雷伯菌ATCC BAA?2524(產(chǎn)OXA?48 型碳青霉烯酶),首選的陰性質(zhì)控菌株為肺炎克雷伯菌BAA?1706(不產(chǎn)碳青霉烯酶)。若實(shí)驗(yàn)室不具備上述首選質(zhì)控菌株,可選擇經(jīng)DNA 測(cè)序后相應(yīng)已明確的碳青霉烯酶基因型作為陽(yáng)性質(zhì)控菌株,而陰性質(zhì)控菌株可選擇大腸埃希菌ATCC 25922[13]。
目前實(shí)驗(yàn)室的CRE 表型檢測(cè)方法,靈敏度較高、操作方便、價(jià)格較低,但存在特異度較低、缺乏標(biāo)準(zhǔn)化、耗時(shí)較長(zhǎng)等缺點(diǎn),限制了其進(jìn)一步使用。隨著CRE 基因型方法的出現(xiàn),提高了檢測(cè)的靈敏度和特異度,且操作簡(jiǎn)單,但也只能檢測(cè)已知基因,不能檢測(cè)未知基因。全基因測(cè)序方法彌補(bǔ)這個(gè)缺陷,能夠檢測(cè)已知和未知CRE 基因,這能夠幫助臨床解決疑難問題。
隨著CRE 在包括中國(guó)在內(nèi)的全球范圍內(nèi)不斷地蔓延,一些菌株攜帶CRE 酶型種類和數(shù)量也在增加。未來的CRE 實(shí)驗(yàn)室檢測(cè)方法和應(yīng)用可能有下面一些趨勢(shì):第一是檢測(cè)樣本的類型會(huì)拓展,除了已應(yīng)用的菌落、陽(yáng)性血培養(yǎng)物以及肛拭子以外,呼吸道標(biāo)本可能獲得更多的應(yīng)用。第二是在檢測(cè)CRE 存在的前提下,迅速對(duì)其酶型進(jìn)行判斷,可用于臨床指導(dǎo)治療依據(jù)。第三是既往菌種鑒定基礎(chǔ)上的耐藥性檢測(cè)有望被快速的CRE 酶型檢測(cè)的“功能性”鑒定所取代。