牛宏澤,馬政禹,靳天宇,石 磊,任有蛇
(山西農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科學(xué)學(xué)院,山西太谷 030801)
目前,受精液保存技術(shù)限制,綿羊精液通過低溫保存為主,這既能保存一定時(shí)間,還能保證較高的受胎率。在低溫保存過程中,精子產(chǎn)生的大量活性氧(Reactive Oxygen Species,ROS)會損傷質(zhì)膜,破壞精子的結(jié)構(gòu)與功能。因此,精液低溫保存的關(guān)鍵是在稀釋液中添加一定量的牛血清蛋白、褪黑素、維生素E等抗氧化物質(zhì),從而緩解保存過程中精子受到的氧化損傷。
蜂王漿是工蜂下咽腺和下頜腺的分泌物,其含有多種能清除氧自由基的物質(zhì),可緩解氧化損傷。研究表明,在稀釋液中添加適宜濃度的蜂王漿能顯著提高精子的活率、活力、運(yùn)動能力、質(zhì)膜完整性和頂體完整率,從而延長精液保存時(shí)間,并且蜂王漿中的糖類能夠?yàn)榫踊顒犹峁┠茉?。精子攝能需要糖轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白的轉(zhuǎn)運(yùn),GLUTs 蛋白是由基因編碼的膜轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白,可轉(zhuǎn)運(yùn)葡萄糖、果糖等多種糖類,已知的GLUTs 結(jié)構(gòu)有14種。目前發(fā)現(xiàn)與哺乳動物精子有關(guān)的糖轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白有GLUT 1~3、GLUT 5 和GLUT 8。其中GLUT 3 是精子質(zhì)膜上豐富的膜蛋白之一,介導(dǎo)糖轉(zhuǎn)運(yùn),能夠直接影響精子線粒體的活性;GLUT 8 是睪丸組織內(nèi)主要的糖轉(zhuǎn)運(yùn)體,與精子的發(fā)生密切相關(guān),靳天宇等發(fā)現(xiàn)綿羊精子中GLUT 3 和GLUT 8 的分布在精子中線粒體密集區(qū)域,表明它們與精子線粒體的能量代謝相關(guān)。
有關(guān)蜂王漿對低溫保存綿羊精子質(zhì)量的影響及其機(jī)制尚不明確,本實(shí)驗(yàn)在稀釋液中添加不同濃度的蜂王漿,研究其對低溫保存綿羊精子質(zhì)量和糖轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白GLUT 3和GLUT 8 表達(dá)的影響,為其在動物精液保存中的研究和應(yīng)用提供依據(jù)。
1.1 實(shí)驗(yàn)試劑 蜂王漿來自山西農(nóng)業(yè)大學(xué)養(yǎng)蜂實(shí)驗(yàn)室,由意大利蜜蜂采集油菜花蜜粉后分泌,收集時(shí)間為2018 年12 月,蜂王漿分裝至-20℃長期保存。Tris、果糖、檸檬酸、二甲基亞砜(Dimethyl sulfoxide,DMSO)、青鏈霉素混合液、甘氨酸均購于北京索萊寶生物科技有限公司,JC-1、碘化丙啶(Propidium Iodide,PI)購于美國Med Chem Express 公司,Anti-GLUT 3 antibody、Anti-GLUT 8 antibody、-actin antibody 購于北京博奧森生物技術(shù)有限公司,熒光二抗購自美國LI-COR 公司,硝酸纖維膜、脫脂奶粉、SDS-PAGE 凝膠試劑盒、SDS-PAGE 蛋白上樣緩沖液、RIPA 蛋白裂解液、廣譜蛋白酶抑制劑購自武漢博士德生物有限公司。
1.2 實(shí)驗(yàn)動物 選用山西省太谷縣保森畜牧集團(tuán)有限公司體況良好的2~3 歲杜泊種公羊8 只,假陰道法采集精液后,將鮮精活率不低于0.8 的精液混池,用于后續(xù)試驗(yàn)。本研究采精時(shí)間為2018 年12 月—2019 年12 月。
1.3 精液處理 100 mL稀釋液22.3 mmol/L Tris,5.3 mmol/L果糖,7.2 mmol/L 檸檬酸,15 mL 卵黃和10 mL 100 IU單位青鏈霉素,配置完成后搖勻并5℃保存。將稀釋液分為5 組,分別添加0.00%、0.25%、0.50%、0.75%、1.00%的蜂王漿,分別將5 組精液逐步稀釋至8 倍,放入5℃冰箱使其2 h 內(nèi)降至5℃,然后保存。
1.4 實(shí)驗(yàn)方法 取保存0、24、48 h 和72 h 的精液,置于37℃水浴鍋中孵育3 min,輕輕混勻,分別檢測精子的活率(Motility)、活力(Viability)、運(yùn)動參數(shù)、質(zhì)膜完整性和線粒體活性。
1.4.1 精子運(yùn)動能力測定 取10 μL 精液,壓片后在400 倍鏡下在計(jì)算機(jī)輔助精子分析系統(tǒng)中檢測精子活率、活力、直線運(yùn)動速率(Straight-line Velocity,VSL)、路徑速度(Average Path Velocity,VAP)及曲線運(yùn)動速率(Curvilinear Velocity,VCL)。
1.4.2 質(zhì)膜完整性測定 采用低滲膨脹實(shí)驗(yàn)測定質(zhì)膜完整性。吸取10 μL 精液加入預(yù)熱的離心管中,再加入100 μL 預(yù)熱的低滲溶液(稱取1.35 g 果糖和0.375 g 檸檬酸鈉,溶于100 mL 蒸餾水)37℃水浴鍋孵育30 min后混勻,吸取混合液滴于載玻片涂片,風(fēng)干后在400 倍顯微鏡下觀察,隨機(jī)拍取400 個(gè)以上精子。質(zhì)膜完整性=(彎尾精子數(shù)/總精子數(shù))×100%。
1.4.3 線粒體活性測定 通過JC-1 與PI 雙熒光探針技術(shù)檢測線粒體活性。吸取80 μL 精液加入預(yù)熱的離心管中,加入4 μL JC-1 和2 μL PI,避光孵育30 min,然后加入總體積10%的Hancock's Solution 溶液混勻,吸取混合液于載玻片上,壓片后400 倍熒光顯微鏡下觀察,隨機(jī)計(jì)數(shù)400 個(gè)以上精子。線粒體活性=(尾部呈黃色熒光的精子數(shù)/總精子數(shù))×100%。
1.4.4 綿羊精子能量代謝蛋白的豐度的檢測 采用Western Blot 法檢測綿羊精子能量代謝蛋白的豐度。取保存0、24、48 h 和72 h 精子的總蛋白并測定蛋白濃度,按照精子蛋白:蛋白上樣緩沖液=4:1,加入上樣緩沖液,在95℃條件下變性10 min。保證每孔上樣的蛋白量為50 μg,經(jīng)SDS-PAGE 凝膠電泳(濃縮膠5% 80 V 30 min,分離膠10% 120 V 1.5 h)后將蛋白轉(zhuǎn)至硝酸纖維膜,將膜浸于5% 脫脂奶粉中室溫封閉1 h。然后將不同的膜浸于GLUT 3(1:500)、GLUT 8(1:800)、-actin(1:5000)蛋白抗體孵育4℃過夜。TBST 漂洗3 次,每次10 min,加入熒光二抗(1:15000)避光孵育1 h 后,TBST 漂洗3 次,每次10 min,用OdysseyCLΧ 雙色近紅外成像系統(tǒng)拍照。GLUT 蛋白豐度值=GLUT 蛋白灰度值/內(nèi)參蛋白灰度值。
1.5 統(tǒng)計(jì)分析 用SPSS 22.0 軟件進(jìn)行單因素方差分析,用LSD 法進(jìn)行多重比較。結(jié)果用平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤表示。Western Blot 結(jié)果用Image J 軟件進(jìn)行分析,通過Graphpad Prism 7.0 作圖。<0.05 表示差異顯著,>0.05 表示差異不顯著。
2.1 稀釋液中添加蜂王漿對低溫保存的綿羊精子運(yùn)動能力的影響 由表1 和表2 可知,保存0 h 和24 h,5 個(gè)處理組間精子的活率和活力差異均不顯著;在保存48 h和72 h 時(shí),0.75% 蜂王漿組的精子活率和活力顯著高于對照組,其余試驗(yàn)組與對照組間、試驗(yàn)組間精子活率和活力的差異均不顯著。
表1 稀釋液中不同濃度蜂王漿對低溫保存綿羊精子活率的影響 %
表2 稀釋液中不同濃度RJ 對低溫保存綿羊精子活力的影響 %
由表3 可知,保存0 h 和24 h 時(shí),5 個(gè)處理組間精子的VAP、VCL 和VSL 差異均不顯著。保存48 h 時(shí),試驗(yàn)組精子的VAP 均顯著高于對照組,但試驗(yàn)組間差異不顯著;0.75%蜂王漿組的VCL 和VSL 顯著高于對照組,其他試驗(yàn)組與對照組間差異不顯著。保存72 h時(shí),試驗(yàn)組精子的VAP 均顯著高于對照組,其中0.75%蜂王漿組精子VAP 顯著高于0.25%、1.00%蜂王漿組;0.75%、0.50%蜂王漿組精子的VCL 均顯著高于對照組,但與其他2 個(gè)試驗(yàn)組間差異不顯著;0.75%蜂王漿組精子的VSL 顯著高于對照組。
表3 稀釋液中不同濃度蜂王漿對低溫保存綿羊精子運(yùn)動參數(shù)的影響 μm/s
2.2 稀釋液中添加RJ 對低溫保存綿羊精子質(zhì)膜完整性和線粒體活性的影響 由表4 可知,保存0 h 和24 h 時(shí),5個(gè)處理組間精子的質(zhì)膜完整性差異均不顯著。保存48 h,0.50%、0.75%蜂王漿組精子的質(zhì)膜完整性均顯著高于對照組。保存72 h,0.75%蜂王漿組精子的質(zhì)膜完整性顯著高于對照組,而其他間的差異均不顯著。
表4 稀釋液中不同濃度RJ 對低溫保存綿羊精子質(zhì)膜完整性的影響 %
由表5 可知,保存0 h,5 個(gè)處理組間精子的線粒體活性差異不顯著。保存24 h 時(shí),0.75% 蜂王漿組的線粒體活性顯著高于對照組。保存48 h 和72 h 時(shí),試驗(yàn)組精子的線粒體活性均顯著高于對照組,0.75%蜂王漿組精子的線粒體活性顯著高于0.25% 蜂王漿組;保存48 h 時(shí)0.50%蜂王漿組精子的線粒體活性也顯著高于0.25%蜂王漿組,但與0.75%、1.00%蜂王漿組間差異不顯著;保存72 h,0.50%、0.75%、1.00% 蜂王漿組間精子的線粒體活性差異不顯著。
表5 稀釋液中不同濃度蜂王漿對低溫保存綿羊精子線粒體活性的影響 %
2.3 保存時(shí)間和0.75% 蜂王漿對綿羊精子蛋白GLUT 3表達(dá)量的影響 由圖1 和圖2 可知,精子GLUT 3 的蛋白豐度隨保存天數(shù)延長而下降,但差異不顯著;保存72 h,0.75%蜂王漿組精子的GLUT 3 蛋白豐度顯著高于對照組。
圖1 低溫保存0~72 h 精子GLUT 3 蛋白豐度變化
圖2 精子蛋白GLUT 3 保存72 h 后豐度結(jié)果
2.4 保存時(shí)間和0.75% 蜂王漿對綿羊精子蛋白GLUT 8表達(dá)量的影響 圖3 和圖4 顯示,保存72 h GLUT 8蛋白豐度顯著低于0 h;與對照組相比,72 h 時(shí)0.75%蜂王漿組的GLUT 8 蛋白豐度顯著提高。
圖3 低溫保存0~72 h 精子GLUT 8 蛋白豐度變化
圖4 精子蛋白GLUT 8 保存72 h 后豐度結(jié)果
精液低溫保存過程中,精子會產(chǎn)生大量的ROS,引起氧化應(yīng)激,對精子造成損傷,降低精子質(zhì)量。低溫保存會使精液中ROS 和丙二醛(Malondialdehyde,MDA)水平升高,從而降低精液中抗氧化酶的活性,導(dǎo)致精子的質(zhì)膜完整性和頂體完整率降低,使精子受到損傷。本實(shí)驗(yàn)在5℃保存72 h,各組精子的活率和活力均有所下降,精子已經(jīng)發(fā)生氧化應(yīng)激,其運(yùn)動能力、質(zhì)膜完整性和線粒體完整性均顯著降低,這表明5℃保存過程中綿羊精子質(zhì)量會有所下降。同時(shí)低溫引起精子的膜損傷會影響其對外界營養(yǎng)物質(zhì)的攝取,Sancho 等研究發(fā)現(xiàn),冷凍后的精子細(xì)胞膜上的GLUT 3 表達(dá)量顯著下降。本研究的Western Blot 結(jié)果顯示在精液5℃保存72 h 的過程中,精子中GLUT 3 和GLUT 8 的表達(dá)量隨著保存時(shí)間延長而逐漸下降,這可能是由于保存過程中精子產(chǎn)生過量的ROS,改變了線粒體膜的通透性,引起線粒體吸水膨脹導(dǎo)致外膜破裂。
有研究表明,蜂王漿的抗氧化特性源于其成分中含有可以清除自由基的酚類物質(zhì)。Asadi 等研究發(fā)現(xiàn),對精索靜脈曲張誘導(dǎo)的大鼠補(bǔ)充200 mg/kg/d蜂王漿,其睪丸的總抗氧化能力(Total Antioxidant Capacity,T-AOC)較對照組顯著提高,超氧化物歧化酶(Superoxide Dismutase,SOD)、過氧化氫酶(Catalase,CAT)和谷胱甘肽過氧化物酶(Glutathione Peroxidase,GPx)活性也顯著增加,這表明添加適宜濃度的蜂王漿能夠緩解精子的氧化應(yīng)激,提高精子質(zhì)量。本研究中,添加0.75%的蜂王漿具有緩解氧化應(yīng)激造成的精子活率、活力下降與質(zhì)膜完整性降低的作用,還能維持保存過程中綿羊精子的線粒體活性,這與前人的研究結(jié)果一致。
精子中最重要的細(xì)胞器是線粒體,它具有促進(jìn)細(xì)胞能量轉(zhuǎn)換,參與細(xì)胞凋亡的作用,與氧化應(yīng)激密切相關(guān)。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,低溫保存過程中0.75% 蜂王漿組的線粒體活性在72 h 顯著高于對照組,這是由于蜂王漿緩解了氧化應(yīng)激對線粒體的損傷,降低了線粒體通透性,減緩細(xì)胞色素的釋放,防止線粒體功能發(fā)生障礙。Shahzad 等研究表明0.1%的蜂王漿可提高水牛精子的運(yùn)動性能與活力,維持質(zhì)膜完整性,這與本研究結(jié)果一致。另外本研究發(fā)現(xiàn),在稀釋液中添加0.75% 的蜂王漿,5℃保存72 h 后GLUT 3 和GLUT 8 的表達(dá)較對照組顯著提高。這是因?yàn)榉渫鯘{中含有的黃酮類物質(zhì)能夠降低精子細(xì)胞內(nèi)Ca濃度和酪氨酸激酶磷酸化程度,從而抑制精子獲能,保護(hù)GLUTs 蛋白,與本實(shí)驗(yàn)中的線粒體活性和質(zhì)膜完整性結(jié)果相互映證。
本研究中,保存72 h 時(shí)1.00% 蜂王漿組精子的各項(xiàng)參數(shù)均低于0.75% 蜂王漿組但高于對照組,這是因?yàn)镽OS 在體內(nèi)參與眾多正常生理反應(yīng),但過量會導(dǎo)致機(jī)體內(nèi)部的氧化還原系統(tǒng)失衡,如果機(jī)體補(bǔ)充外源性抗氧化劑則會防止這一現(xiàn)象發(fā)生。若是外源性抗氧化劑補(bǔ)充過量,即使有一定的抗氧化作用,但ROS 會繼續(xù)與這些過量的抗氧化劑結(jié)合,導(dǎo)致機(jī)體的氧化還原狀態(tài)依然不平衡。本實(shí)驗(yàn)中添加蜂王漿能緩解精子受到的氧化應(yīng)激,但補(bǔ)充過量又會使精子再次處于異常的氧化還原狀態(tài)中。
本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,在綿羊精液的低溫保存過程中,稀釋液中添加0.75 %的蜂王漿能顯著提高精子活率、活力、質(zhì)膜完整性和線粒體活性,并通過影響綿羊精子中GLUT 3 和GLUT 8 的表達(dá),調(diào)節(jié)綿羊精液低溫保存過程的能量代謝,從而改善低溫保存綿羊精子的質(zhì)量。