楊冠宇,王 斐,張艷杰,馬 力,李佳純,歐春青,姜淑苓
(中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院果樹研究所,農(nóng)業(yè)農(nóng)村部園藝作物種質(zhì)資源利用重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,遼寧興城 125100)
梨是一種世界性的水果,在我國(guó)水果產(chǎn)業(yè)中有著舉足輕重的地位,栽培面積和產(chǎn)量?jī)H次于柑橘和蘋果,位居第三[1]。隨著我國(guó)梨產(chǎn)業(yè)的快速發(fā)展以及環(huán)境和氣候條件的日益變化,砧木作為梨樹的重要組成部分,對(duì)梨樹生長(zhǎng)的影響越來(lái)越大。我國(guó)梨生產(chǎn)上常用的梨砧木主要有杜梨(Pyrus betulifoliaBunge)、豆梨(Pyrus calleryanaDecne)、山梨(Pyrus ussuriensisMaxim)、川梨(Pyrus pashiaBuch.-Ham.ex D.Don)和木梨(Pyrus xerophilaT.T.Yu)等[2],其中杜梨具有抗干旱、耐寒、分布廣、適應(yīng)性強(qiáng)、結(jié)果期早、壽命長(zhǎng)等特點(diǎn)[3],是應(yīng)用最廣泛的梨砧木之一。目前,生產(chǎn)中使用的杜梨砧木多為實(shí)生種子繁殖,種子來(lái)源各不相同,生產(chǎn)的苗木參差不齊,不利于現(xiàn)代化標(biāo)準(zhǔn)化梨園的建設(shè)。梨組織培養(yǎng)具有用材少、不受季節(jié)影響、繁殖系數(shù)高等優(yōu)點(diǎn),生產(chǎn)的苗木整齊一致,能滿足短期大規(guī)模生產(chǎn)需要[4],并且可以加快育種進(jìn)程[5],在梨無(wú)性系砧木生產(chǎn)和現(xiàn)代生物育種中具有重要作用。
目前,已有關(guān)于梨組培擴(kuò)繁研究的報(bào)道,李本波[6]探究了NAA 與6-BA 等植物生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑組合對(duì)杜梨繼代組培苗的影響,發(fā)現(xiàn)NAA 濃度在0.1~0.5 mg/L、6-BA 濃度在0.5~2.0 mg/L 時(shí)組培苗生長(zhǎng)狀況較好。盧明艷等[7]在對(duì)梨砧木優(yōu)系1-127 的研究中發(fā)現(xiàn),組培苗適宜的增殖培養(yǎng)基為WPM+2.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L IBA。苗冉冉等[8]研究發(fā)現(xiàn),津香蜜梨適宜的繼代增殖培養(yǎng)基為MS+1.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA,增殖系數(shù)為5.73,巴梨適宜的繼代增殖培養(yǎng)基為MS+1.0 mg/L 6-BA+0.05 mg/L NAA,增殖系數(shù)為3.83。劉春等[9]在對(duì)京白梨的研究中發(fā)現(xiàn),采用MS+3 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA+1.5 mg/L GA3作為增殖培養(yǎng)基,可有效提高京白梨優(yōu)良單株組培快繁育苗效率。李昌珠等[10]用12個(gè)基因型的歐洲梨作為試材,研究表明梨的不同基因型間離體繁殖和形態(tài)分化顯著不同。在梨組織培養(yǎng)方面,還需加大對(duì)不同品種的研究范圍,建立多品種適宜的組織培養(yǎng)快繁體系。
由于杜梨為野生類型,不同株系的組培特性、抗性和適應(yīng)性等性狀各不相同,為進(jìn)一步豐富杜梨組培資源,篩選適宜的株系進(jìn)行砧木苗繁育和生物育種研究,本試驗(yàn)以不同來(lái)源的杜梨實(shí)生種子和新梢為外植體,開展不同消毒劑和消毒時(shí)間的消毒效果以及最佳繼代增殖和生根培養(yǎng)基的篩選研究,以期為我國(guó)梨砧木規(guī)模化生產(chǎn)提供技術(shù)支持,為梨遺傳轉(zhuǎn)化體系構(gòu)建和轉(zhuǎn)基因研究奠定基礎(chǔ)。
不同杜梨砧木的組培擴(kuò)繁與生根移栽情況Tissue culture propagation,rooting and transplanting of different Pyrus betulifolia rootstocks
試驗(yàn)材料采集于中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院果樹研究所梨育種試驗(yàn)園保存的來(lái)自山西、河北、遼寧等不同地區(qū)收集的實(shí)生杜梨株系,樹齡均在10 年以上。其中,選取樹體健壯、新梢發(fā)育良好的株系11 個(gè),于春季新梢剛剛長(zhǎng)至5~8 cm 時(shí)取田間幼嫩的新梢為外植體,于秋季采集21 個(gè)株系上健康成熟果實(shí)的種子為外植體,分別開展組培試驗(yàn)。
1.2.1 外植體消毒與初代培養(yǎng)
將采回來(lái)的枝條剪成2~3 cm 的單芽莖段,種子經(jīng)層積處理,然后依次用洗衣粉上清液浸泡30 min,用清水清理干凈洗衣粉殘留,移至無(wú)菌環(huán)境,無(wú)菌水沖洗3 遍,75%酒精浸泡30 s,再分別用0.1%HgCl2溶液處理5、8、10、12 min 或5%NaClO 溶液處理5、8、10、15 min,無(wú)菌水沖洗3~5 遍,最后將清洗干凈的外植體用無(wú)菌濾紙吸干水分,接種到MS+6.5 g/L 瓊脂+30 g/L 蔗糖+0.2 mg/L ZT+0.15 mg/L 6-BA+0.2 mg/L IAA+0.1 mg/L IBA+0.5 mg/L GA 的初代培養(yǎng)基上,置于25 ℃、光照16 h 黑暗8 h 光周期下培養(yǎng)。分別在上述試驗(yàn)材料中各選取4個(gè)株系的種子和莖段開展上述試驗(yàn),每處理每個(gè)株系接種種子和莖段各5 粒(個(gè)),3 次重復(fù)。每隔3~5 d 觀察1 次,及時(shí)為有污染外植體瓶中的未被污染的外植體更換培養(yǎng)基,40 d 后統(tǒng)計(jì)污染率以及成活率,篩選出最佳的消毒方法和生長(zhǎng)良好的株系。其余株系的種子和莖段以篩選出來(lái)的最佳方案處理。
1.2.2 繼代培養(yǎng)
以初代培養(yǎng)獲得的2 個(gè)生長(zhǎng)較良好的株系為試材,分別在初代培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上,設(shè)置0.1、0.15、0.2、0.25、0.3、0.5、1.0、1.5、2.0、2.5、3.0 mg/L的6-BA 梯度處理。每個(gè)處理接種3 瓶,每瓶接種5 個(gè)外植體,3 次重復(fù)。40 d 后調(diào)查外植體擴(kuò)繁梢數(shù)和幼苗高度,并計(jì)算增殖倍數(shù)。
1.2.3 生根培養(yǎng)和移栽
生根試驗(yàn)采用一步生根法和兩步生根法[11]2 種方法。
(1)一步生根法。取長(zhǎng)勢(shì)良好的培養(yǎng)苗,切取長(zhǎng)度3~4 cm 的無(wú)根新莖,接種到分別添加0.1、0.3、0.5、1.0、2.0、3.0 mg/L IBA 的1/2MS 生根培養(yǎng)基上。每個(gè)處理接種2 瓶,每瓶接種5 個(gè)外植體,3 次重復(fù)。30 d 后統(tǒng)計(jì)生根率和生根條數(shù)。
(2)兩步生根法。取長(zhǎng)勢(shì)良好的培養(yǎng)苗,切取長(zhǎng)度3~4 cm 的無(wú)根新莖,接種到分別添加2.0、3.0、4.0 mg/L IBA 的MS 生根培養(yǎng)基上,分別暗處理2、3、4、5 d,然后轉(zhuǎn)移至不添加任何生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑的1/2MS 培養(yǎng)基中。每處理接種3 瓶,每瓶接種3 個(gè)外植體,3 次重復(fù)。30 d 后統(tǒng)計(jì)生根率和生根條數(shù)。
當(dāng)試管苗根長(zhǎng)3~4 cm 時(shí),打開瓶口進(jìn)行5 d的煉苗。然后清洗試管苗根部培養(yǎng)基,移栽至營(yíng)養(yǎng)缽中,覆膜保濕,培養(yǎng)基質(zhì)為草炭土∶黏土=1∶1。15 d 后,逐漸打開薄膜繼續(xù)培養(yǎng),待緩苗后帶土移栽至田間。
試驗(yàn)數(shù)據(jù)用Excel 軟件進(jìn)行處理和統(tǒng)計(jì),用SPSS 軟件進(jìn)行差異顯著性分析。
2.1.1 不同消毒劑和消毒時(shí)間對(duì)杜梨種子消毒效果的影響
杜梨砧木種子經(jīng)過滅菌后接種到初代培養(yǎng)基上,5 d 后出現(xiàn)不同程度的污染。如表1 所示,在2種不同的消毒劑處理下,隨著消毒時(shí)間的延長(zhǎng),外植體的污染率均呈逐漸下降的趨勢(shì),存活率均呈先上升后下降的趨勢(shì)。0.1%HgCl2處理10 min,雖然污染率(13.33%)略高于12 min 處理(10.00%),但外植體存活率最高(66.67%),消毒效果最好。5%NaClO 處理10 min 也具有較好的消毒效果,但存活率只有53.33%,低于0.1%HgCl2處理。綜合污染率和存活率,最適合杜梨種子外植體的消毒方式為0.1%HgCl2處理10 min。上述處理共獲得了14 份杜梨組培株系(圖版2-A),其中,株系7-4 長(zhǎng)勢(shì)良好,用于下一步的繼代增殖研究。
表1 不同消毒劑及消毒時(shí)間對(duì)杜梨種子消毒效果的影響
2.1.2 不同消毒劑和消毒時(shí)間對(duì)杜梨砧木莖段消毒效果的影響
杜梨莖段經(jīng)過滅菌后接種到初代培養(yǎng)基上,3 d后出現(xiàn)污染,不同消毒時(shí)間和消毒劑處理下其污染率、存活率均有差異。如表2 所示,在2 種不同的消毒劑處理下,外植體的污染率和存活率也隨著消毒時(shí)間延長(zhǎng)分別呈逐漸下降和先上升后下降的趨勢(shì),2 種消毒劑分別在處理12 min 和15 min 時(shí),污染率均降到了0,但存活率均較低。綜合考慮污染率和存活率,以5%NaClO 處理10 min 效果最好,外植體存活率可達(dá)77.78%。上述處理共獲得了7 份杜梨組培株系(圖版2-B),其中,株系11-2 長(zhǎng)勢(shì)較好,用于下一步的繼代增殖研究。
表2 不同消毒劑及消毒時(shí)間對(duì)杜梨莖段消毒效果的影響
2.2.1 不同濃度6-BA 對(duì)杜梨株系7-4 生長(zhǎng)和增殖的影響
由圖版2-C 和表3 可以看出,杜梨株系7-4 組培苗在6-BA 濃度較低時(shí),增殖系數(shù)較低,但株高較高,其中,6-BA 濃度為0.15 mg/L 時(shí),株高最高,且葉片較大,枝條更為粗壯,適合進(jìn)一步進(jìn)行移栽、生根、再生等試驗(yàn)。隨著6-BA 濃度的升高,7-4組培苗的增殖系數(shù)呈上升趨勢(shì),但濃度過高,會(huì)產(chǎn)生玻璃化現(xiàn)象且株高降低。其中,在6-BA 濃度為2.5 mg/L 時(shí),增殖系數(shù)最高,達(dá)到6.33,但是組培苗有玻璃化現(xiàn)象。因此,綜合考慮組培苗的生長(zhǎng)狀態(tài),0.3~1.5 mg/L 的6-BA 濃度均可取得較好的增殖效果。
表3 不同濃度6-BA 對(duì)7-4 生長(zhǎng)和增殖的影響
2.2.2 不同濃度6-BA 對(duì)杜梨株系11-2 生長(zhǎng)和增殖的影響
如圖版2-D、表4 所示,杜梨株系11-2 組培苗在不同6-BA 濃度處理下,整體株高和增殖系數(shù)均低于株系7-4,說(shuō)明基因型對(duì)其組培苗的生長(zhǎng)影響較大。當(dāng)6-BA 濃度為0.1 mg/L 時(shí),11-2 的株高最高,為2.32 cm,適合進(jìn)一步進(jìn)行移栽、生根、再生等試驗(yàn)。在各6-BA 濃度處理下,11-2 的增殖系數(shù)均較低,甚至不增殖,在濃度為2.0 mg/L 時(shí),增殖系數(shù)最高,為1.88,此時(shí)的株高也較高,可作為株系11-2 增殖培養(yǎng)適宜的6-BA 濃度。
表4 不同濃度6-BA 對(duì)11-2 生長(zhǎng)和增殖的影響
前期試驗(yàn)得出11-2 苗矮,生長(zhǎng)緩慢,不適宜進(jìn)行生根試驗(yàn);杜梨株系7-4 組培苗生長(zhǎng)健壯,株高和繁殖系數(shù)均較高,對(duì)其進(jìn)行了生根培養(yǎng)試驗(yàn)。如表5 所示,不同方法和不同濃度的IBA 處理對(duì)杜梨株系7-4 的生根影響較大,其中,一步生根法中不同濃度IBA 處理均能誘導(dǎo)其生根,但低濃度下生根率較低,濃度在0.3 mg/L 以下時(shí),生根率在5.00%以下,當(dāng)IBA 濃度增加到2.0 mg/L 時(shí),其生根率達(dá)到最高,為85.00%,且顯著高于其他處理,此時(shí)的平均生根數(shù)為3.82 條,也是所有處理中最高的。兩步生根法中,前期IBA 處理天數(shù)對(duì)7-4 的生根影響較大,其中以4.0 mg/L IBA 處理3 d 效果最好,生根率(55.56%)和平均生根數(shù)(2.67 條)均較高,但低于一步生根法中的最佳濃度。因此,IBA 濃度為2.0 mg/L 的一步生根法最有利于杜梨株系7-4 的生根,將以此方法生根的7-4 組培苗進(jìn)行了移栽,移栽成活率在90%以上(圖版2-E)。
表5 不同生根方法對(duì)7-4 生根的影響
氯化汞是一種劇毒的重金屬消毒劑,次氯酸鈉是一種氧化還原消毒劑,常用于植物組織培養(yǎng)的外植體消毒,殺菌時(shí)間過長(zhǎng),植物組織會(huì)中毒,生長(zhǎng)點(diǎn)會(huì)被殺死,進(jìn)而影響成活率;殺菌時(shí)間太短,將導(dǎo)致外源菌不能被完全殺死,增加污染率,合理的滅菌時(shí)間對(duì)于外植體的接種非常重要[12]。本研究中杜梨種子和幼嫩莖段分別以0.1%HgCl2消毒10 min和5%NaClO 消毒10 min 效果最好,這是由于種子具有種皮,而種皮較厚,可以使用更加強(qiáng)力的消毒劑,而莖段組織較為幼嫩,毒性過強(qiáng)的消毒劑在滅殺外源菌的同時(shí),也提高了外植體的致死率,所以2 種外植體選用的最佳消毒劑有所不同。這與王瑩等[13]對(duì)耐鹽彩葉杜梨莖尖消毒試驗(yàn)的研究結(jié)果不同,其原因可能是選用的材料品種和試驗(yàn)部位不同。而本試驗(yàn)中種子材料采用5%NaClO 消毒10 min 也獲得了53.33%的外植體存活率,雖然低于HgCl2處理,從環(huán)保的角度來(lái)看,該消毒方法也是一個(gè)不錯(cuò)的選擇。
細(xì)胞分裂素和生長(zhǎng)素是影響試管苗器官形成的主要因素[14]。前人研究表明,同一品種在不同培養(yǎng)基上的表現(xiàn)不同,不同品種在同一培養(yǎng)條件下表現(xiàn)也有所不同[15]。本試驗(yàn)中杜梨砧木莖段的增殖分化與細(xì)胞分裂素6-BA 濃度有關(guān),在一定濃度范圍內(nèi),莖段的增殖系數(shù)隨著6-BA 濃度的升高而升高,但是當(dāng)6-BA 超過一定濃度后,組培苗的生長(zhǎng)狀態(tài)出現(xiàn)異常。對(duì)于杜梨株系7-4 而言,當(dāng)6-BA 濃度達(dá)到2.5 mg/L 時(shí),組培苗開始出現(xiàn)玻璃化現(xiàn)象,并且開始變矮,雖然增殖系數(shù)有所增高,但是苗的狀態(tài)已經(jīng)不利于進(jìn)一步的培養(yǎng),植株纖細(xì),有效莖少,多為簇狀的無(wú)效莖;當(dāng)6-BA 的濃度達(dá)到3.0 mg/L時(shí),莖的增殖開始被抑制,增殖系數(shù)降低并且生成的無(wú)效莖多,不適宜進(jìn)行增殖;當(dāng)6-BA 的濃度為0.3、0.5、1.0、1.5 mg/L 時(shí),其植株生長(zhǎng)正常,其增殖系數(shù)均在3.9 以上。因此,本試驗(yàn)中確定7-4 株系增殖培養(yǎng)的最佳6-BA 濃度為0.3~1.5 mg/L。由此可知,想要進(jìn)行有效的增殖,需要適當(dāng)?shù)?-BA濃度,過高或過低的6-BA 濃度都不利于增殖,6-BA的用量?jī)H能在一定的范圍內(nèi)提高增殖率,這與王蘇珂等[4]、湯紹虎等[16]和金青等[17]在6-BA 對(duì)梨組織培養(yǎng)影響的研究結(jié)果相一致。對(duì)于株系11-2 來(lái)說(shuō),在不同6-BA 濃度處理下,莖的增殖系數(shù)均較低,這可能與品種本身的基因型有關(guān),然而除了6-BA,生長(zhǎng)素和其他類型細(xì)胞分裂素組合也可能對(duì)其生長(zhǎng)產(chǎn)生重要影響。如在邱玉賓等[18]和方明等[19]的研究中,生長(zhǎng)素就分別對(duì)北美豆梨和杜梨的增殖產(chǎn)生了重要影響。本研究中僅對(duì)單一水平的生長(zhǎng)素與不同濃度的6-BA 組合進(jìn)行了試驗(yàn),其他生長(zhǎng)調(diào)節(jié)劑組合能否提高11-2 株系的增殖系數(shù),還需要做進(jìn)一步研究。
不定根誘導(dǎo)是組培過程中關(guān)鍵的一步[20],不定根的生長(zhǎng)對(duì)組培苗在生產(chǎn)中大規(guī)模應(yīng)用有著重要的意義,為組培苗的移栽和生長(zhǎng)提供了良好的基礎(chǔ)。生長(zhǎng)素是誘導(dǎo)組培苗生根的重要因素,但生長(zhǎng)素的種類和濃度都會(huì)對(duì)生根率和平均生根數(shù)有影響,濃度過高或過低都不利于組培苗的生根。目前,應(yīng)用最多的生根誘導(dǎo)劑主要是IBA。前人研究表明,低糖低鹽培養(yǎng)基有利于多數(shù)植物試管苗生根[21-22],而IBA 可以刺激嫩葉和嫩芽形成的IAA 的運(yùn)輸,從而促進(jìn)生根,也可以在輔酶的作用下轉(zhuǎn)化成IAA 發(fā)揮作用[23-24]。本研究以2.0 mg/L IBA 的一步生根法,在杜梨株系7-4 的生根研究中取得了良好效果,這與羅嘉亮等[25]研究的杜梨不定芽生根最理想的IBA 濃度為0.5 mg/L 的結(jié)果不同,可能是選用的杜梨株系和生長(zhǎng)狀態(tài)不同導(dǎo)致,但生根率與其比較有明顯的提高,該結(jié)果可為7-4 株系的大規(guī)模生產(chǎn)應(yīng)用提供有效的技術(shù)支撐。