PEDV E 蛋白的跨膜結(jié)構(gòu)域?qū)ζ浼毎ㄎ坏挠绊懷芯?/h1>
2022-08-29 08:40:00郭德軒鄭亮張寧鄭小會吳志軍1曹宏偉1張華1
黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)學(xué)報 2022年4期
郭德軒，鄭亮，張寧，鄭小會，吳志軍1，，曹宏偉1，，張華1，
（2.黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)生命科學(xué)技術(shù)學(xué)院，大慶 163319；2.黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)動物科技學(xué)院；3.黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)生物技術(shù)中心）
豬流行性腹瀉（Porcine Epidemic Diarrhea，PED）是由豬流行性腹瀉病毒（Porcine Epidemic Diarrhea Virus，PEDV）引起的一種急性、高度接觸性腸道傳染病，主要以嘔吐、腹瀉和脫水為特征，感染此病毒的哺乳仔豬死亡率高達100%[1]。自1971 年英國首次報道PED 以來[2-3]，該病在許多國家頻繁爆發(fā)。盡管已有部分PEDV 疫苗上市[4-5]，但疫情仍然持續(xù)爆發(fā)，給世界各國養(yǎng)豬業(yè)造成巨大經(jīng)濟損失，引發(fā)公共衛(wèi)生問題[6]，受到世界各國養(yǎng)豬業(yè)和相關(guān)科研人員的關(guān)注。
PEDV 是導(dǎo)致PED 的病原體[7]。研究發(fā)現(xiàn)，PEDV屬于冠狀病毒科甲型冠狀病毒屬，是一種有囊膜的單股正鏈RNA 病毒，具有感染性，其基因組編碼了4個結(jié)構(gòu)蛋白：纖突蛋白（S）、膜蛋白（M）、囊膜蛋白（E）和核衣殼蛋白（N），16 個非結(jié)構(gòu)蛋白（nsp1-nsp16）和ORF3[8]。在PEDV 全基因組中，其所編碼的E 蛋白是病毒最小的結(jié)構(gòu)蛋白，由76 個氨基酸組成，分子質(zhì)量為8.8 kDa，它是位于病毒囊膜上的小包膜蛋白，E蛋白決定病毒的形狀并參與病毒的復(fù)制[9]。此外，E 蛋白是一個離子通道蛋白，具有離子通道（Ion channel，IC）活性，有較強的疏水性[10]。有研究報道，冠狀病毒E 蛋白可分為三個不同的氨基酸區(qū)域，分別為NTD區(qū)域、跨膜區(qū)域和CTD 區(qū)域，并且該基因序列的保守性很高，不同冠狀病毒該區(qū)域的氨基酸數(shù)量有較小差別[11-12]。研究表明，PEDV E 蛋白定位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)和細胞核內(nèi)，可引起內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激[13]。Zheng 等[14]發(fā)現(xiàn)PEDV E 蛋白能夠在IPEC-J2 細胞中表達，亞細胞定位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)區(qū)域。在研究中，通過分析PEDV E 蛋白生物學(xué)特性發(fā)現(xiàn)，PEDV E 蛋白是具有一個跨膜區(qū)的跨膜蛋白，該區(qū)域是調(diào)控全長蛋白的關(guān)鍵氨基酸區(qū)域。所以，推測該跨膜氨基酸區(qū)域可能在病毒蛋白亞細胞定位及行使功能過程中起到關(guān)鍵作用。
內(nèi)質(zhì)網(wǎng)是蛋白質(zhì)的翻譯重要場所，是蛋白質(zhì)合成的主要細胞器，一方面選擇性運出分泌蛋白和膜蛋白，另一方面保留內(nèi)質(zhì)網(wǎng)定位蛋白以維持其結(jié)構(gòu)和功能[15]。對內(nèi)質(zhì)網(wǎng)定位信號的研究，有助于對其他細胞器蛋白定位及運輸?shù)奶接慬16]。
為了驗證此猜想，研究圍繞跨膜區(qū)氨基酸構(gòu)建了三種重組質(zhì)粒，并驗證其正確表達后轉(zhuǎn)染HEK-293T 細胞和IPEC-J2 細胞，檢測其重組蛋白分布情況以及亞細胞定位情況。為進一步研究其跨膜區(qū)在E蛋白行使功能過程中起到何種作用奠定了基礎(chǔ)。尤其是對研究PEDV E 蛋白定位信號具有指導(dǎo)性，研究將有助于了解PEDV 包裝過程，更有助于進一步探索PEDV 的發(fā)病機理和預(yù)防。
1 材料與方法
1.1 材料
1.1.1 質(zhì)粒與細胞
pCMV-Myc 質(zhì)粒、pCMV-Myc-E 質(zhì)粒由黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)生物技術(shù)中心509 實驗室構(gòu)建并保存。DH5α 感受態(tài)細胞由黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)生物技術(shù)中心509 實驗室制備。豬小腸上皮細胞（IPECJ2）、人胚腎細胞（HEK-293T）由黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)生物技術(shù)中心509 實驗室保存。
1.1.2 試劑與抗體
TRIzol 試劑（101002）購自Thermo Fisher Scientific 公司；反轉(zhuǎn)錄酶M-MLV（Rnase H-）、限制性內(nèi)切酶、Ex Taq 聚合酶均購自Takara 公司；轉(zhuǎn)染試劑LippfectamineTM2000（11668019）購自Invitrogen 公司；質(zhì)粒小提試劑盒（D6943-02）和膠回收試劑盒（D2500-02）購自O(shè)mega 公司。小鼠抗Myc 標(biāo)簽單克隆抗體（TA-01）、TRITC 標(biāo)記的羊抗小鼠IgG（ZF-0313）均購自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司。
1.1.3 引物設(shè)計
根據(jù)已發(fā)表在GenBank 網(wǎng)站中的PEDV CV777毒株基因序列報道，設(shè)計具有特異性的E 基因上下游引物，上游序列：5’-CCGGAATTCGGATGCTACAATTAGTGAATGATA-3’（EcoR I）和下游引物：5’-ATAAGAATGCGGCCGCTACGTCAATAACAGTAC-3’（Not I）。E 蛋白截短基因E-T1 上下游引物，上游序列：5’-CCGGAATTCGGATGCTACAATTAGTGAATGATA-3’（EcoR I）和下游引物：5’-GGGGTACCCAGTTAACCAATTGGACGAAGGTA-3’（Kpn I），E 蛋白截短基因E-T2 上下游引物，上游序列：5’-CCGGAATTCGGATACTTTGGCTTTTCGTACT-3’（EcoR I）和下游 引 物：5’-GGGGTACCCAGTTAACCAATTGGACGAAGGTA-3’（Kpn I），E 蛋白截短基因E-T3 上下游引物，上游序列：5’-CCGGAATTCGGTGCTTCACTTGTCACCGGTTGTGTA-3’（EcoR I）和下游引物：5’-GGGGTACCTACGTCAATAACAGTACTGGGGAGGG-3’（Kpn I）。將E 基因插入到pCMV-Myc 的EcoR I/Not I 位點，將E-T1、E-T2、E-T3 基因插入到pCMVMyc 的EcoR I/Kpn I 位點。
1.2 實驗方法
1.2.1 RNA 的提取
采用TRIzol 法提RNA，從-80 ℃冰箱取出病變豬小腸，將組織用液氮研磨，收集在DEPC 水浸泡過高壓滅菌烘干（無RNA 酶）的1.5 mL 的離心管中，并加入500 μL 的Trizol 溶液，劇烈搖晃1 min 左右，靜置10~15 min，使組織充分裂解。取200 μL 的三氯甲烷溶液加入離心管中，立刻上下顛倒15 s，靜置12 min。13 200 r·min-1低溫高速離心10 min。離心后上下分層，吸取上清到新的DEPC 水浸泡過高壓滅菌烘干（無RNA 酶）1.5 mL 離心管中，再取600 μL 的異丙醇溶液加入管中，緩慢地上下顛倒15 s，放在冰盒中靜置12 min。13 200 r·min-1低溫高速離心15 min。吸棄掉600 μL 上清，吸取600 μL 的75%乙醇溶液到離心管，上下顛倒混勻，冰盒中靜置5 min，10 500 r·min-1低溫高速離心5 min。棄掉大部分上清，4 ℃離心，13 200 g 離心1 min。吸棄掉剩余液體，吹干酒精5 min，再加入20 μL 的DEPC 水，靜置15 min，使RNA 充分溶解。溶解后，檢測其總RNA 濃度標(biāo)記好，進行反轉(zhuǎn)錄試驗。
1.2.2 RT-PCR
取DEPC 水浸泡過高壓滅菌烘干（無RNA 酶）PCR 管，體系如下：模板0.5 μg，10 mM Oligo（dT）1 μL，DEPC 水2 μL。RT-PCR 的溫度設(shè)置：70 ℃運行10 min，4 ℃保存。一個循環(huán)后放在冰中3 min 冷卻。之后向上述PCR 管中分別加入如下體系：5×MMLV buffer 2 μL，dNTP Mixture 2 μL，RNase Inhibitor（40 U·μL-1）0.5 μL，RTase M-MLV 0.5 μL，DEPC水1.5 μL。PCR 儀設(shè)置程序：30 ℃運行10 min，42 ℃運行60 min，70 ℃運行15 min，4 ℃保存，一個循環(huán)后取出，放在冰上冰2 min。得到cDNA 樣品作為模板進行常規(guī)PCR 或于-20 ℃冰箱保存。
1.2.3 PCR 擴增
以cDNA 為模板進行配置，體系如下：模板1 μL，dNTP 2.0 μL，10×PCR buffer 3.0 μL，上下游物各0.2 μL，Taq 酶0.13 μL，用ddH2O 補足20 μL。放到PCR 儀中進行擴增，運行期間，配置1%瓊脂糖凝膠，待膠凝固后，點樣跑膠。跑完膠后切下帶有目的條帶的膠，進行膠回收后，直接連接或保存在-20 ℃。
1.2.4 轉(zhuǎn)化
取出在16 ℃水浴鍋中的連接產(chǎn)物，置于DH5α感受態(tài)細胞中，再放進冰中冰浴30 min。時間結(jié)束之后，42 ℃熱激90 s，立刻放入冰中，靜置3 min。加入900 μL 無抗性LB 培養(yǎng)液，37 ℃搖晃復(fù)蘇30~60 min。復(fù)蘇后，5 000 r·min-1離心3 min，涂布于含有氨芐青霉素的固體培養(yǎng)基上，隨后倒置放在37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。第二天觀察菌落，若有菌落出現(xiàn)，挑下菌落對應(yīng)抗性的培養(yǎng)基中，37 ℃搖床培養(yǎng)16 h，隨后使用質(zhì)粒試劑盒提取質(zhì)粒。
1.2.5 轉(zhuǎn)染細胞
將HEK-293T 和IPEC-J2 細胞進行傳代，每孔500 μL 鋪板到24 孔板中，第二天觀察細胞長到每孔的80%左右時，轉(zhuǎn)染轉(zhuǎn)化得到的質(zhì)粒。先向離心管中加入適量的無血清的DMEM 培養(yǎng)基，之后按照每孔800 ng 質(zhì)粒和每孔1 μL 脂質(zhì)體Lippfectamine TM2000 分別加進去，靜置5 min。將裝有質(zhì)粒與脂質(zhì)體LippfectamineTM2000 的溶液混合，靜置20 min，將混合液加入到相應(yīng)的孔中，放入二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng)，6 h 后將不含胎牛血清的DMEM 培養(yǎng)基換成10%胎牛血清的DMEM 培養(yǎng)基，繼續(xù)培養(yǎng)。
1.2.6 間接免疫熒光（IFA）鑒定
待轉(zhuǎn)染質(zhì)粒24 h 后，從溫箱中取出細胞培養(yǎng)板，吸棄細胞培養(yǎng)液，用PBS 清洗細胞培養(yǎng)孔兩遍，多聚甲醛加入到每個細胞培養(yǎng)孔500 μL，固定10 min。時間結(jié)束后，吸棄多聚甲醛，用PBS 清洗細胞孔三遍，15 min 換液洗一遍。每孔加入0.1%Trion-100（曲拉通）500 μL，透膜放置20 min，用PBS 清洗細胞孔三遍，15 min 換液洗一遍。每孔加入500 μL 的5%BSA封閉2 h，用PBS 清洗細胞孔三遍，15 min 換液洗一遍。用鼠源抗Myc 單克隆抗體（1∶500）作為一抗，室溫孵育2 h，用PBS 清洗細胞孔三遍，15 min 換液洗一遍。用TRITC 標(biāo)記的山羊抗小鼠IgG（1∶500）作為二抗室溫避光孵育2 h，用PBS 清洗細胞孔三遍，15 min換液洗一遍。用免疫熒光顯微鏡觀察PEDV E 以及E-T1、E-T2、E-T3 的蛋白表達，待正確表達后，用熒光封片劑DAPI 進行壓片染核。
2 結(jié)果與分析
2.1 PEDV E 基因、E-T1 基因、E-T2 基因和E-T3基因的擴增
在感染PEDV 的病變豬小腸中含有PEDV 全基因組，所以研究利用Trizol 裂解法提取病變的豬小腸總RNA，再通過反轉(zhuǎn)錄的將RNA 反轉(zhuǎn)錄成cDNA。以cDNA 為模板，用設(shè)計好的PEDV E 基因、E-T1 基因、E-T2 基因和E-T3 基因的上下游引物（含雙酶切位點）進行PCR 擴增。已知PEDV E 蛋白的15-37 氨基酸區(qū)域是跨膜區(qū)域，研究圍繞此跨膜區(qū)構(gòu)建不同截短基因，最終得到對應(yīng)大小的PEDV E 基因、E-T1基因、E-T2 基因和E-T3 基因的片段，符合預(yù)期結(jié)果，結(jié)果如圖1。
圖1 PEDV E 基因、E-T1 基因、E-T2 基因和E-T3 的擴增Fig.1 Amplification of PEDV E gene，E-T1 gene，E-T2 gene and E-T3
2.2 E 基因、E-T1 基因、E-T2 基因、E-T3 基因及載體的雙酶切
利用對應(yīng)限制性內(nèi)切酶EcoR I/Not I 切割E 基因以及pCMV-Myc 載體片段，用EcoR I/Kpn I 切割E-T1 基因、E-T2 基因、E-T3 基因片段，通過常規(guī)PCR 電泳得到相對應(yīng)的基因和載體的雙酶切條帶，符合預(yù)期結(jié)果，結(jié)果如圖2。
圖2 PEDV E 基因、E-T1 基因、E-T2 基因和E-T3 基因雙酶切Fig.2 Double restriction digestion of PEDV E gene，E-T1 gene，E-T2 gene and E-T3 gene
2.3 重組質(zhì)粒的雙酶切鑒定
經(jīng)過雙酶切、連接、轉(zhuǎn)化、提取質(zhì)粒后，取重組質(zhì)粒pCMV-Myc-E 加入EcoR I/Not I 兩種限制性內(nèi)切酶、Myc-E-T1、Myc-E-T2 和Myc-E-T3 加入EcoR I/Kpn I 兩種限制性內(nèi)切酶，最后放入37 ℃水浴鍋酶切12 h 或過夜進行雙酶切鑒定。通過常規(guī)PCR 電泳得到基因和載體相對應(yīng)片段的雙酶切鑒定條帶，符合預(yù)期結(jié)果，結(jié)果如圖3。
圖3 PEDV E 基因、E-T1 基因、E-T2 基因和E-T3 基因雙酶切鑒定Fig.3 Identification of PEDV E gene，E-T1 gene，E-T2 gene and E-T3 gene by double restriction digestion
2.4 免疫熒光鑒定重組質(zhì)粒的表達情況
將pCMV-Myc-E 質(zhì)粒、Myc-E-T1、Myc-E-T2和Myc-E-T3 質(zhì)粒分別轉(zhuǎn)染HEK-293T、IPEC-J2 細胞系24 h 后，利用間接免疫熒光方法檢測其核分布情況，結(jié)果顯示，在HEK-293T 細胞系內(nèi)，轉(zhuǎn)染pCMV-Myc-E 質(zhì)粒的實驗組檢測到了PEDV E 蛋白定位在細胞質(zhì)上，并且發(fā)現(xiàn)Myc-E-T1 和Myc-E-T2分布在細胞質(zhì)中，與Myc-E 的分布極其相似；而Myc-E-T3 的細胞定位在整個細胞中，其中在細胞核的區(qū)域較多，在細胞質(zhì)的區(qū)域中較少，在IPEC-J2 細胞系內(nèi)有同樣的結(jié)果，結(jié)果如圖4。
圖4 PEDV E、T1、T2、T3 蛋白的間接免疫熒光檢查Fig.4 PEDV E，T1，T2，T3 protein indirect immunofluorescence（IFA）
2.5 亞細胞定位
轉(zhuǎn)染pCMV-Myc-E 質(zhì)粒、Myc-E-T1、Myc-E-T2和Myc-E-T3 質(zhì)粒到HEK-293T、IPEC-J2 細胞系24 h 后，利用間接免疫熒光的方法檢測其與內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的共定位情況，發(fā)現(xiàn)PEDV E 蛋白能夠定位于細胞內(nèi)質(zhì)網(wǎng)區(qū)域，而T1 和T2 能夠與內(nèi)質(zhì)網(wǎng)發(fā)生強烈的共定位現(xiàn)象，與E 蛋白相似，但T3 則未見此定位情況，結(jié)果如圖5。綜上結(jié)果說明T1 和T2 可能行使著與E 蛋白類似的功能，而T3 則沒有。
圖5 PEDV E、T1、T2、T3 蛋白亞細胞定位Fig.5 PEDV E，T1，T2，T3 protein subcellular localization
3 討論
豬流行性腹瀉（PED）是由豬流行性腹瀉病毒（PEDV）引起的傳染性腸疾病，以嘔吐，腹瀉和脫水為病癥基本特征。20 世紀(jì)80 年代后該病在中國廣泛傳播，從那時起，PEDV 成為引起腹瀉最常見的病毒之一。2010 年10 月，由PEDV 變異毒株引起的PED大規(guī)模暴發(fā)，給全國養(yǎng)豬業(yè)帶來了巨大的經(jīng)濟損失[17]。目前，PED 是中國養(yǎng)豬行業(yè)最大威脅之一。PEDV 的高變異性越加復(fù)雜異構(gòu)，對高效疫苗的發(fā)展構(gòu)成了重大挑戰(zhàn)，PEDV 的研究也將會越來越廣泛和深入。
E 蛋白是構(gòu)成PEDV 的結(jié)構(gòu)蛋白之一，能夠參與病毒囊膜的形成并且在病毒復(fù)制與出芽過程中發(fā)揮重要作用[18]。Xu 等[19]發(fā)現(xiàn)PEDV E 蛋白能夠在IEC細胞中表達，亞細胞定位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)區(qū)域，產(chǎn)生非折疊蛋白，激活細胞中GRP78 的蛋白表達；同時，PEDV E蛋白對p65 蛋白表達呈現(xiàn)出上調(diào)的趨勢。PEDV E 蛋白跨膜區(qū)16-20AA 缺失和L25P 突變的新變異進一步上調(diào)了內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激指標(biāo)的產(chǎn)生，改善了IL-6 和IL-8 的表達，并在體外促進了細胞凋亡[20]。余麗蕓等[21]通過把PEDV 的E 基因?qū)爰撞《据d體系統(tǒng)，構(gòu)建成攜帶PEDV 的E 基因的重組SFV 病毒顆粒。
通過生物信息學(xué)軟件分析發(fā)現(xiàn)[22]，PEDV E 蛋白是一個具有一個跨膜區(qū)的跨膜蛋白，推測跨膜區(qū)可能在蛋白行使功能中占有重要的地位。以PEDV E蛋白作為研究對象，發(fā)現(xiàn)通過其跨膜結(jié)構(gòu)域構(gòu)建三個不同的截短基因，經(jīng)通過克隆技術(shù)后得到相應(yīng)的重組質(zhì)粒，將其轉(zhuǎn)染細胞，發(fā)現(xiàn)重組質(zhì)粒Myc-E-T1、Myc-E-T2 與pCMV-Myc-E 蛋白類似，定位在細胞質(zhì)上并與內(nèi)質(zhì)網(wǎng)發(fā)生共定位，而Myc-E-T3 則沒有。說明T1 與T2 行使著與E 蛋白相同的功能。后續(xù)研究會更加深入地了解PEDV 生物學(xué)以及致病機制，并為開發(fā)有效疫苗和控制策略提供理論基礎(chǔ)。
猜你喜歡
內(nèi)質(zhì)網(wǎng)自噬及其與疾病的關(guān)系研究進展解放軍醫(yī)學(xué)雜志(2021年12期)2022-01-18 03:53:24 靜置狀態(tài)蓄冷水箱斜溫層的實驗與模擬研究煤氣與熱力(2021年4期)2021-06-09 06:16:56 憤怒誘導(dǎo)大鼠肝損傷中內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激相關(guān)蛋白的表達現(xiàn)代臨床醫(yī)學(xué)(2021年1期)2021-01-26 00:55:52 BamHⅠ+XhoⅠ雙酶切質(zhì)粒電泳彌散原因初探山西醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(2017年11期)2017-12-01 07:22:37 LPS誘導(dǎo)大鼠肺泡上皮細胞RLE-6 TN內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激及凋亡研究安徽醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(2016年12期)2017-01-15 14:21:55 鹿骨雙酶法酶解工藝的研究食品研究與開發(fā)(2016年9期)2016-06-13 08:26:16 超聲波輔助復(fù)合酶提取雞軟骨中硫酸軟骨素哈爾濱商業(yè)大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版)(2016年1期)2016-04-22 07:04:42 聚能雙酶水溶肥農(nóng)村百事通(2015年8期)2015-05-19 08:07:27 Caspase12在糖尿病大鼠逼尿肌細胞內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激中的表達中國當(dāng)代醫(yī)藥(2015年33期)2015-03-01 02:09:08 橋梁群樁基礎(chǔ)壓力注漿靜置時間預(yù)測試驗西安建筑科技大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版)(2014年1期)2014-11-12 13:03:42
郭德軒，鄭亮，張寧，鄭小會，吳志軍1，，曹宏偉1，，張華1，
（2.黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)生命科學(xué)技術(shù)學(xué)院，大慶 163319；2.黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)動物科技學(xué)院；3.黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)生物技術(shù)中心）
豬流行性腹瀉（Porcine Epidemic Diarrhea，PED）是由豬流行性腹瀉病毒（Porcine Epidemic Diarrhea Virus，PEDV）引起的一種急性、高度接觸性腸道傳染病，主要以嘔吐、腹瀉和脫水為特征，感染此病毒的哺乳仔豬死亡率高達100%[1]。自1971 年英國首次報道PED 以來[2-3]，該病在許多國家頻繁爆發(fā)。盡管已有部分PEDV 疫苗上市[4-5]，但疫情仍然持續(xù)爆發(fā)，給世界各國養(yǎng)豬業(yè)造成巨大經(jīng)濟損失，引發(fā)公共衛(wèi)生問題[6]，受到世界各國養(yǎng)豬業(yè)和相關(guān)科研人員的關(guān)注。
PEDV 是導(dǎo)致PED 的病原體[7]。研究發(fā)現(xiàn)，PEDV屬于冠狀病毒科甲型冠狀病毒屬，是一種有囊膜的單股正鏈RNA 病毒，具有感染性，其基因組編碼了4個結(jié)構(gòu)蛋白：纖突蛋白（S）、膜蛋白（M）、囊膜蛋白（E）和核衣殼蛋白（N），16 個非結(jié)構(gòu)蛋白（nsp1-nsp16）和ORF3[8]。在PEDV 全基因組中，其所編碼的E 蛋白是病毒最小的結(jié)構(gòu)蛋白，由76 個氨基酸組成，分子質(zhì)量為8.8 kDa，它是位于病毒囊膜上的小包膜蛋白，E蛋白決定病毒的形狀并參與病毒的復(fù)制[9]。此外，E 蛋白是一個離子通道蛋白，具有離子通道（Ion channel，IC）活性，有較強的疏水性[10]。有研究報道，冠狀病毒E 蛋白可分為三個不同的氨基酸區(qū)域，分別為NTD區(qū)域、跨膜區(qū)域和CTD 區(qū)域，并且該基因序列的保守性很高，不同冠狀病毒該區(qū)域的氨基酸數(shù)量有較小差別[11-12]。研究表明，PEDV E 蛋白定位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)和細胞核內(nèi)，可引起內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激[13]。Zheng 等[14]發(fā)現(xiàn)PEDV E 蛋白能夠在IPEC-J2 細胞中表達，亞細胞定位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)區(qū)域。在研究中，通過分析PEDV E 蛋白生物學(xué)特性發(fā)現(xiàn)，PEDV E 蛋白是具有一個跨膜區(qū)的跨膜蛋白，該區(qū)域是調(diào)控全長蛋白的關(guān)鍵氨基酸區(qū)域。所以，推測該跨膜氨基酸區(qū)域可能在病毒蛋白亞細胞定位及行使功能過程中起到關(guān)鍵作用。
內(nèi)質(zhì)網(wǎng)是蛋白質(zhì)的翻譯重要場所，是蛋白質(zhì)合成的主要細胞器，一方面選擇性運出分泌蛋白和膜蛋白，另一方面保留內(nèi)質(zhì)網(wǎng)定位蛋白以維持其結(jié)構(gòu)和功能[15]。對內(nèi)質(zhì)網(wǎng)定位信號的研究，有助于對其他細胞器蛋白定位及運輸?shù)奶接慬16]。
為了驗證此猜想，研究圍繞跨膜區(qū)氨基酸構(gòu)建了三種重組質(zhì)粒，并驗證其正確表達后轉(zhuǎn)染HEK-293T 細胞和IPEC-J2 細胞，檢測其重組蛋白分布情況以及亞細胞定位情況。為進一步研究其跨膜區(qū)在E蛋白行使功能過程中起到何種作用奠定了基礎(chǔ)。尤其是對研究PEDV E 蛋白定位信號具有指導(dǎo)性，研究將有助于了解PEDV 包裝過程，更有助于進一步探索PEDV 的發(fā)病機理和預(yù)防。
1 材料與方法
1.1 材料
1.1.1 質(zhì)粒與細胞
pCMV-Myc 質(zhì)粒、pCMV-Myc-E 質(zhì)粒由黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)生物技術(shù)中心509 實驗室構(gòu)建并保存。DH5α 感受態(tài)細胞由黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)生物技術(shù)中心509 實驗室制備。豬小腸上皮細胞（IPECJ2）、人胚腎細胞（HEK-293T）由黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)生物技術(shù)中心509 實驗室保存。
1.1.2 試劑與抗體
TRIzol 試劑（101002）購自Thermo Fisher Scientific 公司；反轉(zhuǎn)錄酶M-MLV（Rnase H-）、限制性內(nèi)切酶、Ex Taq 聚合酶均購自Takara 公司；轉(zhuǎn)染試劑LippfectamineTM2000（11668019）購自Invitrogen 公司；質(zhì)粒小提試劑盒（D6943-02）和膠回收試劑盒（D2500-02）購自O(shè)mega 公司。小鼠抗Myc 標(biāo)簽單克隆抗體（TA-01）、TRITC 標(biāo)記的羊抗小鼠IgG（ZF-0313）均購自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司。
1.1.3 引物設(shè)計
根據(jù)已發(fā)表在GenBank 網(wǎng)站中的PEDV CV777毒株基因序列報道，設(shè)計具有特異性的E 基因上下游引物，上游序列：5’-CCGGAATTCGGATGCTACAATTAGTGAATGATA-3’（EcoR I）和下游引物：5’-ATAAGAATGCGGCCGCTACGTCAATAACAGTAC-3’（Not I）。E 蛋白截短基因E-T1 上下游引物，上游序列：5’-CCGGAATTCGGATGCTACAATTAGTGAATGATA-3’（EcoR I）和下游引物：5’-GGGGTACCCAGTTAACCAATTGGACGAAGGTA-3’（Kpn I），E 蛋白截短基因E-T2 上下游引物，上游序列：5’-CCGGAATTCGGATACTTTGGCTTTTCGTACT-3’（EcoR I）和下游 引 物：5’-GGGGTACCCAGTTAACCAATTGGACGAAGGTA-3’（Kpn I），E 蛋白截短基因E-T3 上下游引物，上游序列：5’-CCGGAATTCGGTGCTTCACTTGTCACCGGTTGTGTA-3’（EcoR I）和下游引物：5’-GGGGTACCTACGTCAATAACAGTACTGGGGAGGG-3’（Kpn I）。將E 基因插入到pCMV-Myc 的EcoR I/Not I 位點，將E-T1、E-T2、E-T3 基因插入到pCMVMyc 的EcoR I/Kpn I 位點。
1.2 實驗方法
1.2.1 RNA 的提取
采用TRIzol 法提RNA，從-80 ℃冰箱取出病變豬小腸，將組織用液氮研磨，收集在DEPC 水浸泡過高壓滅菌烘干（無RNA 酶）的1.5 mL 的離心管中，并加入500 μL 的Trizol 溶液，劇烈搖晃1 min 左右，靜置10~15 min，使組織充分裂解。取200 μL 的三氯甲烷溶液加入離心管中，立刻上下顛倒15 s，靜置12 min。13 200 r·min-1低溫高速離心10 min。離心后上下分層，吸取上清到新的DEPC 水浸泡過高壓滅菌烘干（無RNA 酶）1.5 mL 離心管中，再取600 μL 的異丙醇溶液加入管中，緩慢地上下顛倒15 s，放在冰盒中靜置12 min。13 200 r·min-1低溫高速離心15 min。吸棄掉600 μL 上清，吸取600 μL 的75%乙醇溶液到離心管，上下顛倒混勻，冰盒中靜置5 min，10 500 r·min-1低溫高速離心5 min。棄掉大部分上清，4 ℃離心，13 200 g 離心1 min。吸棄掉剩余液體，吹干酒精5 min，再加入20 μL 的DEPC 水，靜置15 min，使RNA 充分溶解。溶解后，檢測其總RNA 濃度標(biāo)記好，進行反轉(zhuǎn)錄試驗。
1.2.2 RT-PCR
取DEPC 水浸泡過高壓滅菌烘干（無RNA 酶）PCR 管，體系如下：模板0.5 μg，10 mM Oligo（dT）1 μL，DEPC 水2 μL。RT-PCR 的溫度設(shè)置：70 ℃運行10 min，4 ℃保存。一個循環(huán)后放在冰中3 min 冷卻。之后向上述PCR 管中分別加入如下體系：5×MMLV buffer 2 μL，dNTP Mixture 2 μL，RNase Inhibitor（40 U·μL-1）0.5 μL，RTase M-MLV 0.5 μL，DEPC水1.5 μL。PCR 儀設(shè)置程序：30 ℃運行10 min，42 ℃運行60 min，70 ℃運行15 min，4 ℃保存，一個循環(huán)后取出，放在冰上冰2 min。得到cDNA 樣品作為模板進行常規(guī)PCR 或于-20 ℃冰箱保存。
1.2.3 PCR 擴增
以cDNA 為模板進行配置，體系如下：模板1 μL，dNTP 2.0 μL，10×PCR buffer 3.0 μL，上下游物各0.2 μL，Taq 酶0.13 μL，用ddH2O 補足20 μL。放到PCR 儀中進行擴增，運行期間，配置1%瓊脂糖凝膠，待膠凝固后，點樣跑膠。跑完膠后切下帶有目的條帶的膠，進行膠回收后，直接連接或保存在-20 ℃。
1.2.4 轉(zhuǎn)化
取出在16 ℃水浴鍋中的連接產(chǎn)物，置于DH5α感受態(tài)細胞中，再放進冰中冰浴30 min。時間結(jié)束之后，42 ℃熱激90 s，立刻放入冰中，靜置3 min。加入900 μL 無抗性LB 培養(yǎng)液，37 ℃搖晃復(fù)蘇30~60 min。復(fù)蘇后，5 000 r·min-1離心3 min，涂布于含有氨芐青霉素的固體培養(yǎng)基上，隨后倒置放在37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。第二天觀察菌落，若有菌落出現(xiàn)，挑下菌落對應(yīng)抗性的培養(yǎng)基中，37 ℃搖床培養(yǎng)16 h，隨后使用質(zhì)粒試劑盒提取質(zhì)粒。
1.2.5 轉(zhuǎn)染細胞
將HEK-293T 和IPEC-J2 細胞進行傳代，每孔500 μL 鋪板到24 孔板中，第二天觀察細胞長到每孔的80%左右時，轉(zhuǎn)染轉(zhuǎn)化得到的質(zhì)粒。先向離心管中加入適量的無血清的DMEM 培養(yǎng)基，之后按照每孔800 ng 質(zhì)粒和每孔1 μL 脂質(zhì)體Lippfectamine TM2000 分別加進去，靜置5 min。將裝有質(zhì)粒與脂質(zhì)體LippfectamineTM2000 的溶液混合，靜置20 min，將混合液加入到相應(yīng)的孔中，放入二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng)，6 h 后將不含胎牛血清的DMEM 培養(yǎng)基換成10%胎牛血清的DMEM 培養(yǎng)基，繼續(xù)培養(yǎng)。
1.2.6 間接免疫熒光（IFA）鑒定
待轉(zhuǎn)染質(zhì)粒24 h 后，從溫箱中取出細胞培養(yǎng)板，吸棄細胞培養(yǎng)液，用PBS 清洗細胞培養(yǎng)孔兩遍，多聚甲醛加入到每個細胞培養(yǎng)孔500 μL，固定10 min。時間結(jié)束后，吸棄多聚甲醛，用PBS 清洗細胞孔三遍，15 min 換液洗一遍。每孔加入0.1%Trion-100（曲拉通）500 μL，透膜放置20 min，用PBS 清洗細胞孔三遍，15 min 換液洗一遍。每孔加入500 μL 的5%BSA封閉2 h，用PBS 清洗細胞孔三遍，15 min 換液洗一遍。用鼠源抗Myc 單克隆抗體（1∶500）作為一抗，室溫孵育2 h，用PBS 清洗細胞孔三遍，15 min 換液洗一遍。用TRITC 標(biāo)記的山羊抗小鼠IgG（1∶500）作為二抗室溫避光孵育2 h，用PBS 清洗細胞孔三遍，15 min換液洗一遍。用免疫熒光顯微鏡觀察PEDV E 以及E-T1、E-T2、E-T3 的蛋白表達，待正確表達后，用熒光封片劑DAPI 進行壓片染核。
2 結(jié)果與分析
2.1 PEDV E 基因、E-T1 基因、E-T2 基因和E-T3基因的擴增
在感染PEDV 的病變豬小腸中含有PEDV 全基因組，所以研究利用Trizol 裂解法提取病變的豬小腸總RNA，再通過反轉(zhuǎn)錄的將RNA 反轉(zhuǎn)錄成cDNA。以cDNA 為模板，用設(shè)計好的PEDV E 基因、E-T1 基因、E-T2 基因和E-T3 基因的上下游引物（含雙酶切位點）進行PCR 擴增。已知PEDV E 蛋白的15-37 氨基酸區(qū)域是跨膜區(qū)域，研究圍繞此跨膜區(qū)構(gòu)建不同截短基因，最終得到對應(yīng)大小的PEDV E 基因、E-T1基因、E-T2 基因和E-T3 基因的片段，符合預(yù)期結(jié)果，結(jié)果如圖1。
圖1 PEDV E 基因、E-T1 基因、E-T2 基因和E-T3 的擴增Fig.1 Amplification of PEDV E gene，E-T1 gene，E-T2 gene and E-T3
2.2 E 基因、E-T1 基因、E-T2 基因、E-T3 基因及載體的雙酶切
利用對應(yīng)限制性內(nèi)切酶EcoR I/Not I 切割E 基因以及pCMV-Myc 載體片段，用EcoR I/Kpn I 切割E-T1 基因、E-T2 基因、E-T3 基因片段，通過常規(guī)PCR 電泳得到相對應(yīng)的基因和載體的雙酶切條帶，符合預(yù)期結(jié)果，結(jié)果如圖2。
圖2 PEDV E 基因、E-T1 基因、E-T2 基因和E-T3 基因雙酶切Fig.2 Double restriction digestion of PEDV E gene，E-T1 gene，E-T2 gene and E-T3 gene
2.3 重組質(zhì)粒的雙酶切鑒定
經(jīng)過雙酶切、連接、轉(zhuǎn)化、提取質(zhì)粒后，取重組質(zhì)粒pCMV-Myc-E 加入EcoR I/Not I 兩種限制性內(nèi)切酶、Myc-E-T1、Myc-E-T2 和Myc-E-T3 加入EcoR I/Kpn I 兩種限制性內(nèi)切酶，最后放入37 ℃水浴鍋酶切12 h 或過夜進行雙酶切鑒定。通過常規(guī)PCR 電泳得到基因和載體相對應(yīng)片段的雙酶切鑒定條帶，符合預(yù)期結(jié)果，結(jié)果如圖3。
圖3 PEDV E 基因、E-T1 基因、E-T2 基因和E-T3 基因雙酶切鑒定Fig.3 Identification of PEDV E gene，E-T1 gene，E-T2 gene and E-T3 gene by double restriction digestion
2.4 免疫熒光鑒定重組質(zhì)粒的表達情況
將pCMV-Myc-E 質(zhì)粒、Myc-E-T1、Myc-E-T2和Myc-E-T3 質(zhì)粒分別轉(zhuǎn)染HEK-293T、IPEC-J2 細胞系24 h 后，利用間接免疫熒光方法檢測其核分布情況，結(jié)果顯示，在HEK-293T 細胞系內(nèi)，轉(zhuǎn)染pCMV-Myc-E 質(zhì)粒的實驗組檢測到了PEDV E 蛋白定位在細胞質(zhì)上，并且發(fā)現(xiàn)Myc-E-T1 和Myc-E-T2分布在細胞質(zhì)中，與Myc-E 的分布極其相似；而Myc-E-T3 的細胞定位在整個細胞中，其中在細胞核的區(qū)域較多，在細胞質(zhì)的區(qū)域中較少，在IPEC-J2 細胞系內(nèi)有同樣的結(jié)果，結(jié)果如圖4。
圖4 PEDV E、T1、T2、T3 蛋白的間接免疫熒光檢查Fig.4 PEDV E，T1，T2，T3 protein indirect immunofluorescence（IFA）
2.5 亞細胞定位
轉(zhuǎn)染pCMV-Myc-E 質(zhì)粒、Myc-E-T1、Myc-E-T2和Myc-E-T3 質(zhì)粒到HEK-293T、IPEC-J2 細胞系24 h 后，利用間接免疫熒光的方法檢測其與內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的共定位情況，發(fā)現(xiàn)PEDV E 蛋白能夠定位于細胞內(nèi)質(zhì)網(wǎng)區(qū)域，而T1 和T2 能夠與內(nèi)質(zhì)網(wǎng)發(fā)生強烈的共定位現(xiàn)象，與E 蛋白相似，但T3 則未見此定位情況，結(jié)果如圖5。綜上結(jié)果說明T1 和T2 可能行使著與E 蛋白類似的功能，而T3 則沒有。
圖5 PEDV E、T1、T2、T3 蛋白亞細胞定位Fig.5 PEDV E，T1，T2，T3 protein subcellular localization
3 討論
豬流行性腹瀉（PED）是由豬流行性腹瀉病毒（PEDV）引起的傳染性腸疾病，以嘔吐，腹瀉和脫水為病癥基本特征。20 世紀(jì)80 年代后該病在中國廣泛傳播，從那時起，PEDV 成為引起腹瀉最常見的病毒之一。2010 年10 月，由PEDV 變異毒株引起的PED大規(guī)模暴發(fā)，給全國養(yǎng)豬業(yè)帶來了巨大的經(jīng)濟損失[17]。目前，PED 是中國養(yǎng)豬行業(yè)最大威脅之一。PEDV 的高變異性越加復(fù)雜異構(gòu)，對高效疫苗的發(fā)展構(gòu)成了重大挑戰(zhàn)，PEDV 的研究也將會越來越廣泛和深入。
E 蛋白是構(gòu)成PEDV 的結(jié)構(gòu)蛋白之一，能夠參與病毒囊膜的形成并且在病毒復(fù)制與出芽過程中發(fā)揮重要作用[18]。Xu 等[19]發(fā)現(xiàn)PEDV E 蛋白能夠在IEC細胞中表達，亞細胞定位于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)區(qū)域，產(chǎn)生非折疊蛋白，激活細胞中GRP78 的蛋白表達；同時，PEDV E蛋白對p65 蛋白表達呈現(xiàn)出上調(diào)的趨勢。PEDV E 蛋白跨膜區(qū)16-20AA 缺失和L25P 突變的新變異進一步上調(diào)了內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激指標(biāo)的產(chǎn)生，改善了IL-6 和IL-8 的表達，并在體外促進了細胞凋亡[20]。余麗蕓等[21]通過把PEDV 的E 基因?qū)爰撞《据d體系統(tǒng)，構(gòu)建成攜帶PEDV 的E 基因的重組SFV 病毒顆粒。
通過生物信息學(xué)軟件分析發(fā)現(xiàn)[22]，PEDV E 蛋白是一個具有一個跨膜區(qū)的跨膜蛋白，推測跨膜區(qū)可能在蛋白行使功能中占有重要的地位。以PEDV E蛋白作為研究對象，發(fā)現(xiàn)通過其跨膜結(jié)構(gòu)域構(gòu)建三個不同的截短基因，經(jīng)通過克隆技術(shù)后得到相應(yīng)的重組質(zhì)粒，將其轉(zhuǎn)染細胞，發(fā)現(xiàn)重組質(zhì)粒Myc-E-T1、Myc-E-T2 與pCMV-Myc-E 蛋白類似，定位在細胞質(zhì)上并與內(nèi)質(zhì)網(wǎng)發(fā)生共定位，而Myc-E-T3 則沒有。說明T1 與T2 行使著與E 蛋白相同的功能。后續(xù)研究會更加深入地了解PEDV 生物學(xué)以及致病機制，并為開發(fā)有效疫苗和控制策略提供理論基礎(chǔ)。
猜你喜歡
解放軍醫(yī)學(xué)雜志(2021年12期)2022-01-18 03:53:24
煤氣與熱力(2021年4期)2021-06-09 06:16:56
現(xiàn)代臨床醫(yī)學(xué)(2021年1期)2021-01-26 00:55:52
山西醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(2017年11期)2017-12-01 07:22:37
安徽醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(2016年12期)2017-01-15 14:21:55
食品研究與開發(fā)(2016年9期)2016-06-13 08:26:16
哈爾濱商業(yè)大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版)(2016年1期)2016-04-22 07:04:42
農(nóng)村百事通(2015年8期)2015-05-19 08:07:27
中國當(dāng)代醫(yī)藥(2015年33期)2015-03-01 02:09:08
西安建筑科技大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版)(2014年1期)2014-11-12 13:03:42
