鄧小果
(海南開放大學(xué)農(nóng)業(yè)農(nóng)村學(xué)院,海南 海口 570208)
黃花美冠蘭(Eulophia flava(lindley)Hookerf.)是一種觀賞價(jià)值很高的野生蘭科植物,其花葶側(cè)生,粗壯,高可達(dá)1m;總狀花序直立,長(zhǎng)28~32cm,疏生10余朵花;單花輪生,每節(jié)著生3朵小花,節(jié)間距1.5cm左右;花大,黃色,直徑達(dá)4cm以上;花期5—6月。早在1987年,中國熱帶農(nóng)業(yè)科學(xué)院在海南島花卉種質(zhì)資源考察中,就將黃花美冠蘭列為重點(diǎn)推薦的野生蘭種類[1],引入海南熱帶植物園馴化栽培。黃花美冠蘭的組織培養(yǎng)[2]、核型分析[3]、切花保鮮[4]都有相關(guān)的研究。
化學(xué)誘變育種是用化學(xué)誘變劑處理植物材料,以誘發(fā)遺傳物質(zhì)的突變,從而引起形態(tài)特征的變異,然后根據(jù)育種目標(biāo),對(duì)這些變異進(jìn)行鑒定、培育和選擇,最終育成新品種,成本低、操作簡(jiǎn)單,能夠產(chǎn)生常規(guī)育種方法難以獲得的新基因和新性狀[5,6]。目前化學(xué)誘變主要應(yīng)用于對(duì)農(nóng)作物的處理,再通過多世代對(duì)突變體進(jìn)行選擇和鑒定,直接或間接地培育成生產(chǎn)上能利用的農(nóng)作物品種[7-9]。
觀賞植物在化學(xué)誘變中大多采用秋水仙素誘導(dǎo)多倍體[10-13],蝴蝶蘭[14]、文心蘭[15]EMS離體化學(xué)誘變技術(shù)有相關(guān)報(bào)道,黃花美冠蘭EMS的離體化學(xué)誘變研究尚未見報(bào)道。本試驗(yàn)采用組織培養(yǎng)與化學(xué)誘變技術(shù)相結(jié)合,通過液體浸泡法將不同濃度的EMS對(duì)黃花美冠蘭原球莖作不同時(shí)間處理,經(jīng)EMS處理后的原球莖再分化成苗。與傳統(tǒng)雜交育種選育,大大減輕了工作量,加快了選育進(jìn)程,拓寬了黃花美冠蘭新品種選育的思路。
試驗(yàn)材料為海南大學(xué)提供的健壯的黃花美冠蘭原球莖。
1.2.1 誘變劑
EMS(甲基磺酸乙酯)為瑞士生產(chǎn),將帶有刻度的燒杯和無菌水在121℃(1.1kg·cm-1)下滅菌30min,在超凈工作臺(tái)上用過濾滅菌器將EMS原液配成濃度分別為0.2%、0.4%、0.6%、0.8%、1.0% 5種濃度的溶液,隨用隨配。
1.2.2 培養(yǎng)基
增殖培養(yǎng)基:MS加BA 3.0mg·L-1加NAA 0.1mg·L-1加10%CM加AC 1g·L-1加蔗糖30g·L-1加瓊脂6g·L-1;分化培養(yǎng)基:MS加BA 3.0mg·L-1加NAA 0.1mg·L-1加土豆50g·L-1加AC 1g·L-1加蔗糖30g·L-1加瓊脂6g·L-1。
1.3.1 EMS處理
選取生長(zhǎng)旺盛,大小基本均勻的黃花美冠蘭原球莖,在超凈工作臺(tái)上用鑷子將其單個(gè)剝離,用不同濃度EMS的進(jìn)行處理。EMS處理濃度為0.2%、0.4%、0.6%、0.8%、1.0%。處理時(shí)間為4h、6h、8h,處理后用無菌水沖液沖洗3~5次;以無菌水處理作為對(duì)照。
1.3.2 處理材料的培養(yǎng)
將處理后的原球莖接到增殖培養(yǎng)基中,每個(gè)處理接種40個(gè)原球莖,每個(gè)處理重復(fù)3次,所有材料均在同一條件下培養(yǎng)。培養(yǎng)溫度26±1℃,每天光照12h,30d后統(tǒng)計(jì)死亡率。培養(yǎng)過程中觀察原球莖的生長(zhǎng)情況。
死亡率(%)=死亡原球莖數(shù)/接種原球莖數(shù)×100%
1.3.3 原球莖分化
將繼代后存活的原球莖繼續(xù)轉(zhuǎn)入分化培養(yǎng)基中,培養(yǎng)溫度26±1℃,每天光照12h,30d后觀察生長(zhǎng)情況并統(tǒng)計(jì)分化率。
分化率(%)=分化成芽原球莖數(shù)/接種原球莖數(shù)×100%
1.3.4 EMS對(duì)黃花美冠蘭微核的影響
1.3.4.1 試驗(yàn)方法
濃度分別為0.2%、0.4%、0.6%、0.8%、1.0%的EMS溶液;時(shí)間為4h、8h。對(duì)照(CK)不含EMS。
取接種3d后正處于生長(zhǎng)旺盛期的原球莖,于4℃冰箱中,用卡諾氏固定劑(無水乙醇∶冰醋酸=3∶1v/v)固定24h。置70%乙醇中保存。
1.3.4.2 染色制片
在室溫中用改良石灰酸品紅染液染色,常規(guī)壓片法制片。統(tǒng)計(jì)微核率。
MCN(%)=觀察到的MCN數(shù)/觀察的細(xì)胞總數(shù)×100
將原球莖放入0.2%、0.4%、0.6%、0.8%、1.0%不同濃度的EMS濃度中浸泡4h、6h、8h后,接種到增殖培養(yǎng)基中,結(jié)果如表1。
各處理所得的原球莖死亡率在經(jīng)過反正弦角度代換在SAS系統(tǒng)上進(jìn)行鄧肯比較。得出,F(xiàn)=442.86,P<0.01,表明處理間的差異達(dá)極顯著。由表1可知,不同EMS濃度及處理時(shí)間對(duì)原球莖的存活有很大的影響。在EMS處理黃花美冠蘭原球莖過程中,隨著EMS處理濃度增大,處理的材料生理損傷較大,材料出現(xiàn)褐化,白化現(xiàn)象。經(jīng)過EMS處理的原球莖早期生長(zhǎng)緩慢,14d后部分原球莖逐漸出現(xiàn)白化或褐化現(xiàn)象,并逐漸死亡。對(duì)照原球莖無白化現(xiàn)象,經(jīng)EMS誘變后的死亡率明顯高于對(duì)照組,在相同的處理時(shí)間內(nèi),隨EMS濃度升高原球莖的死亡率升高明顯。相同濃度的長(zhǎng)時(shí)間處理,死亡率明顯增加。在濃度為1.0%,處理時(shí)間為8h時(shí),原球莖全部死亡。高濃度需要較短處理時(shí)間就可使原球莖致死,低濃度需要較長(zhǎng)處理時(shí)間。
表1 黃花美冠蘭經(jīng)EMS處理后死亡率的方差分析
圖1 經(jīng)EMS處理后受損傷的原球莖
將EMS處理過的原球莖轉(zhuǎn)接到分化培養(yǎng)基中繼續(xù)培養(yǎng),15d后,原球莖分化出芽,EMS對(duì)芽的誘導(dǎo)產(chǎn)生較大的影響。各處理所得的原球莖分化率在經(jīng)過反正弦角度代換在SAS系統(tǒng)上進(jìn)行鄧肯比較。得出,F(xiàn)=669.24,P<0.01,表明處理間的差異達(dá)極顯著。
由表2可知,處理時(shí)間長(zhǎng)的分化率低于處理時(shí)間短的分化率。在相同的處理時(shí)間內(nèi),隨著EMS濃度的增加,原球莖的分化率普遍呈現(xiàn)下降趨勢(shì)。在EMS處理相同的濃度下,所有處理組合的原球莖分化率都是隨著EMS處理時(shí)間的升高而降低。除了在處理濃度為0.4%時(shí),時(shí)間為4h和6h下的原球莖分化率比EMS濃度為0.2%時(shí)的高。
表2 黃花美冠蘭原球莖經(jīng)EMS處理后分化率的方差分析
EMS誘發(fā)黃花美冠蘭原球莖的細(xì)胞微核率及其統(tǒng)計(jì)結(jié)果如表3。各組所得微核百分率在經(jīng)過反正弦角度代換在SAS系統(tǒng)上進(jìn)行鄧肯比較。得出F=165.55,P<0.01。處理間的差異達(dá)到極顯著。從表3可以看出,對(duì)照沒有出現(xiàn)微核,用EMS處理過的原球莖都能產(chǎn)生微核,當(dāng)處理時(shí)間相同時(shí),在0%~1.0%范圍內(nèi),隨著濃度升高,原球莖細(xì)胞微核率提高,當(dāng)濃度相同時(shí),隨著時(shí)間的延長(zhǎng),原球莖細(xì)胞微核率也提高,最高微核率出現(xiàn)在濃度為0.8%,處理時(shí)間為8h中,最低微核率出現(xiàn)在對(duì)照組中。本試驗(yàn)中觀察到的微核主要以單微核居多,也出現(xiàn)雙微核。微核的出現(xiàn)是由于上次有絲分裂過程中染色體受損形成的斷片或染色體活動(dòng)異常而造成的。
表3 EMS對(duì)黃花美冠蘭原球莖細(xì)胞微核數(shù)的誘變效應(yīng)
圖2 EMS處理原球莖后產(chǎn)生的細(xì)胞微核
本試驗(yàn)將原球莖放入0.2%、0.4%、0.6%、0.8%、1.0%等不同濃度的EMS濃度中浸泡4h、6h、8h后,接種到增殖培養(yǎng)基中,觀察原球莖的生長(zhǎng)情況和分化率。在培養(yǎng)過程中,原球莖的死亡率隨著濃度和時(shí)間的增加而增加,在濃度為0.4%處理時(shí)間為4h、6h,原球莖的分化率較好,說明原球莖在受損傷后,又恢復(fù)生長(zhǎng),其中可能包含較多的突變細(xì)胞。濃度為0.4%處理時(shí)間為8h和濃度為0.6%處理時(shí)間為6h時(shí),原球莖的死亡率分別為52.91%和57.77%,約為對(duì)照50%,可作為創(chuàng)造黃花美冠蘭PLB突變體的參考濃度。通過對(duì)處理過的原球莖進(jìn)行細(xì)胞學(xué)上的觀察,發(fā)現(xiàn)處理后的細(xì)胞都出現(xiàn)了微核。
目前誘變的主要目的是獲得變異體,對(duì)于組培誘變體系的控制方向和定性、定量研究方面,目前開展的試驗(yàn)較少;變異性狀是否有利尚有待于后期的檢驗(yàn)和鑒定,變異體有效鑒定方法的研究也有待于進(jìn)一步研究和完善。因此,如何控制誘變方式和技巧以實(shí)現(xiàn)變異性狀的定向控制還需要深層次的研究。