郭兆寬,王益娜,李志遠(yuǎn),馮孝林,陳 庚,舒彥宇,張廣輝,郝 冰,楊生超*
1.云南農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)與生物技術(shù)學(xué)院,云南昆明 650201;2.云南農(nóng)業(yè)大學(xué)西南中藥材種質(zhì)創(chuàng)新與利用國家地方聯(lián)合工程研究中心,云南昆明 650201;3.云南特色植物提取實驗室,云南昆明,650106
葫蘆素(cucurbitacins)是一類以葫蘆烷為骨架的四環(huán)三萜類化合物,主要存在于葫蘆科植物中[1],具有顯著的抗癌活性[2-5]。葫蘆科植物羅漢果(Siraitia grosvenori)中的一些葫蘆烷糖苷(羅漢果苷)有很強的甜味,是糖尿病患者的潛在糖類替代品[6]。解析葫蘆素和葫蘆烷糖苷的生物合成途徑,對于瓜類作物育種、葫蘆素單體和羅漢果苷的生物合成具有重要意義。
葫蘆素與絕大多數(shù)植物三萜類化合物相似,植物體內(nèi)的三萜化合物骨架的生物合成始于甲羥戊酸途徑,代謝途徑是以乙酰輔酶A(acetyl-CoA)為起始原料合成異戊二烯焦磷酸(IPP)和二甲烯丙基焦磷酸(DMAPP)。這類代謝產(chǎn)物在一系列催化酶的催化作用下形成 2,3-氧化角鯊烯(2,3-oxidosqualene),即四環(huán)三萜化合物的前體物質(zhì)(圖1)。通常情況下大多數(shù)四環(huán)三萜化合物的基本碳骨架都由一類氧化鯊烯環(huán)化酶家族催化2,3-氧化角鯊烯的船式或椅式構(gòu)象形成[7]。研究表明,葫蘆素生物合成起始于 2,3-氧化鯊烯環(huán)化形成的葫蘆二烯醇(Cuol),是由氧化鯊烯環(huán)化酶(OSCs)家族的葫蘆二烯醇合酶(CBS)催化[8-10]。在大多數(shù)情況下,OSC催化形成的四環(huán)三萜骨架在細(xì)胞色素P450的催化下,通過引入羥基、羧基進(jìn)行特定部位的氧化修飾,從而衍生出更多的終產(chǎn)物和中間體。前人研究發(fā)現(xiàn)甜瓜中葫蘆素B和西瓜中葫蘆素E的多功能CYP87D20連續(xù)不斷地催化Cuol的C11氧化和C20位羥化,形成11-羰基-20β-羥基-Cuol(11-carbonyl-20β-hydroxy-Cuol),接下來CYP81Q59催化其C2位的β羥化,形成11-羰基-2,20β-二羥基-Cuol[8-9](11-carbonyl-2,20β-dihydroxy-Cuol)(圖1)。
圖1 葫蘆素中間體的生物合成路徑Fig.1 Biosynthetic pathway of cucurbitacin intermediates
雪膽中的雪膽素(包括葫蘆素 IIa和葫蘆素IIb)屬于典型的葫蘆素F(cucubitacin F),其葫蘆烷型骨架的 C3-羥基為 α型(圖2)[10],這是葫蘆素F的典型結(jié)構(gòu)特點之一。同時葫蘆素F與其他葫蘆素結(jié)構(gòu)中有許多相同修飾基團(tuán),比如葫蘆素B(cucubitacin B)和E(cucubitacin E)的C11氧化,C20位羥化以及C2位的β羥化與葫蘆素F共性;葫蘆素B、E與F在C25位羥基化修飾后,然后再?;?,還有C22的酮基化和C16的 α-羥基化。因此,亟待解析雪膽葫蘆素 B、E和F生物合成途徑過程以及挖掘其他CYP450基因,推進(jìn)葫蘆素全合成尤為重要。
圖2 葫蘆素F分子結(jié)構(gòu)(A)和六年生雪膽塊莖(B)Fig.2 Molecular structure of cucurbitacin F (A) and six-year-old Hemsleya chinensis Cogn.tuber (B)
葫蘆素這類化合物高度被氧化,在植物中的含量較低同時其利用也受到限制,提取純化工藝復(fù)雜且耗時,需投入大量的人力、物力等資源,如前人曾從375 kg黃瓜葉片中分離到480 mg缺乙酰基葫蘆素 C,用于體外實驗來研究葫蘆素生物合成的關(guān)鍵酶基因功能,巨大的材料投入和工作量令人望而生畏[11]。目前,相關(guān)藥物的開發(fā)中,主要通過從植物中提取的方式來制備。要實現(xiàn)對葫蘆素的化學(xué)合成仍存在諸多挑戰(zhàn),特別是葫蘆素關(guān)鍵中間體化合物。隨著合成生物學(xué)和代謝工程的發(fā)展,為葫蘆素中間體高效異源合成提供了新的契機,農(nóng)桿菌滲入法(agro-infiltration)即根癌農(nóng)桿菌(Agrobacterium tumefaciens)介導(dǎo)的瞬時表達(dá)是一種高效的生產(chǎn)植物三萜的合成生物平臺[12-14],也是一種快速鑒定和發(fā)現(xiàn)三萜生物合成相關(guān)基因并驗證功能的有效方法[15-18]。本研究嘗試將前期鑒定的雪膽(Hemsleya chinensisCogn.)的CBS同源基因(HcOSC6)和HcCYP87D20基因表達(dá)于本氏煙草(Nicotiana benthamiana)中,獲得葫蘆素生物合成中間體11-羰基-20β-羥基-葫蘆二烯醇,本研究結(jié)果將為葫蘆素B、E、F的合成奠定基礎(chǔ)。
1.1.1 植物材料和菌種 本氏煙草種子由本實驗室保存。攜帶綠色熒光蛋白(GFP)基因的質(zhì)粒pAN580(pAN580-GFP)購自武漢天問生物科技有限公司。瞬時表達(dá)載體pEAQ-HT-DEST1由東北林業(yè)大學(xué)薛哲勇教授惠贈。大腸桿菌 DH5α、根癌農(nóng)桿菌菌株 GV3101、EHA105和 LAB4404感受態(tài)細(xì)胞購自上海唯地生物技術(shù)有限公司。
1.1.2 儀器與試劑 RNAprep Pure多糖多酚植物總RNA提取試劑盒和反轉(zhuǎn)錄試劑盒購自天根生化科技有限公司(北京),Q5?High-Fidelity DNA Polymerase購自NEB有限公司,EasyPure Quick Gel Extraction Kit,2×EasTaqPCR Mix 購自北京全式金生物技術(shù)股份有限公司,2-(N-嗎啡啉)乙磺酸(MES)、卡那霉素(Kan)、利福平(Rif)購自昆明傲雪商貿(mào)有限公司,Gateway entry clone(ALH328)試劑盒購自北京百奧萊博科技有限公司。
凝膠成像系統(tǒng)儀(Protein Simple);帶有藍(lán)色激發(fā)光的 LSM710共聚焦激光顯微鏡(Carl Zeiss, Inc., Jena,德國);NanoReady超微量紫外可見分光光度計,安捷倫1260高效液相色譜儀,真空滲透儀(DGG-9000B系列),氮吹儀(MD200-1A)。
1.2.1 培養(yǎng)煙草 本氏煙草種子用 2%次氯酸鈉表面消毒后,播種于1/2MS培養(yǎng)基上。待出芽后,室溫放置1~2 d,移栽到填充腐殖土的蔬菜育苗穴盤上。置于人工氣候室(25℃,相對濕度80%,18 h光照,6 h黑暗),生長5周后用于農(nóng)桿菌滲入。
1.2.2 載體構(gòu)建 為快速判斷外源基因是否在本氏煙草葉片中表達(dá)及細(xì)胞中的表達(dá)部位,構(gòu)建了攜帶GFP基因的pEAQ-HT-DEST1-GFP載體,同時以pAN580-GFP載體[19]作為外源基因表達(dá)的亞細(xì)胞定位的陽性對照。利用引物GFP-F和GFP-R,從pAN580-GFP上擴增出GFP的編碼序列并克隆雪膽的HcOSC6和HcCYP87D20基因。前人研究表明,截短的 3-羥基-3-甲基-戊二酰輔酶 A還原酶基因(tHMGR)與 β-香樹脂醇(SAD1)和CYP51H10共表達(dá),能夠顯著提高煙草瞬時表達(dá)系統(tǒng)的三萜產(chǎn)量[12],因此也克隆了糙伏毛燕麥(Avena strigosa)HMGR基因(GenBank登錄號:KY284573)截短的417個核苷酸的部分(tHMGR)。
將擴增到的GFP、HcOSC6、HcCYP87D20和tHMGR基因切膠回收,使用 Gateway entry clone試劑盒BP克隆酶II混合物(Invitrogen)將膠回收產(chǎn)物克隆到pDONR207載體中。所構(gòu)建體均在 Entry載體中測序,以驗證克隆的完整性,根據(jù)制造商的說明,使用 LR克隆酶 II將相關(guān)的Entry載體中的基因克隆到pEAQ-HT-DEST1中。構(gòu)建成功的 pEAQ-HT-DEST1-GFP、pEAQ-HTDEST1-HcOSC6、pEAQ-HT-DEST1-HcCYP87D20和 pEAQ-HT-DEST1-tHMGR重組質(zhì)粒以及載體pAN580-GFP通過凍融法轉(zhuǎn)化到農(nóng)桿菌感受態(tài)細(xì)胞里。
1.2.3 本氏煙草的農(nóng)桿菌滲入 挑取構(gòu)建好的工程菌單菌落在添加LB(50 mg/mL Kan+ 50 mg/mL Rif)液體培養(yǎng)基中,28℃ 220 r/min培養(yǎng)24 h。從中吸取200 μL加入含有上述新鮮培養(yǎng)基50 mL中,繼代培養(yǎng)至OD600達(dá)2.0左右時以5000 r/min離心5 min,收集菌體,用含10 mmol/L MgCl2、10 mmol/L MES和100 μmol/L乙酰丁香酮的緩沖液重懸菌體,于 250 mL配置成不同濃度菌液(OD600分別為 0.4、0.6、0.8、1.0),放置在滲透槽中,將整株煙草浸沒在農(nóng)桿菌液中,在不同真空壓力(40、60、80、100 kPa),以5周齡的煙草作為植物材料,真空滲透時間為 3 min,4 d后采收煙草葉片,取 100 mg煙草葉片提取總RNA,反轉(zhuǎn)錄合成cDNA,并稀釋至200 ng/μL,以此為模板進(jìn)行半定量PCR以評價各因素對轉(zhuǎn)化效率的影響。半定量PCR使用編碼GFP基因上的特異引物P-GFP-F和P-GFP-R,使用延伸因子1a(EF1a)[20]作為煙草內(nèi)參基因,使用 Image J軟件對核酸凝膠GFP目的條帶進(jìn)行灰度值分析。使用特異性引物見表1。
表1 本研究所用引物Tab.1 Primers used in this study
1.2.4 煙草中的葫蘆二烯醇的提取分析 溫室培養(yǎng)4 d后收獲煙草葉片,提取代謝物進(jìn)行GC-MS分析。取1.0 g干燥葉片于液氮中冷凍后研磨成細(xì)粉,用5 mL正己烷重復(fù)提取3次,37℃下孵育1 h,之后超聲提取20 min。再用正己烷∶乙酸乙酯混合液(4∶1,V/V)提取一次,提取物短暫渦旋后以5000 r/min離心10 min,取60 μL上清液到玻璃小瓶中,用氮吹儀吹干濃縮。濃縮的提取物置于玻璃小瓶中,加40 μL三甲基甲硅烷基氰化物(TMSCN)衍生化。加入TMSCN后,將樣品轉(zhuǎn)移到MPS的攪拌器中,并在40℃下孵育40 min。衍生化后的干燥樣品重懸于200 μL萃取溶劑中,即用 1 mL正己烷重新溶解,然后吸取每個樣品1 μL直接進(jìn)樣到ISQ型質(zhì)譜聯(lián)用的GC超氣相色譜儀安捷倫中檢測。以不分流模式(脈沖壓力30 psi)注入1 μL樣品(進(jìn)樣口250℃),該程序涉及2 min的柱箱溫度170℃,以20℃/min的速度升至300℃。在300℃下保持11.5 min。溶劑延遲8 min后,以掃描模式(60~800質(zhì)量單位)進(jìn)行檢測。使用MassHunter工作站(Agilent)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。
1.2.5 HPLC檢測方法 測定定量葫蘆二烯醇的含量,在不同濃度下分別注入配好的葫蘆二烯醇標(biāo)準(zhǔn)品溶液,采用 Agilent ZORBAX SB-C18(4.6 mm×250 mm, 2.7 μm)色譜柱,流動相為2%純水(A),98%乙腈溶液(B),等度洗脫 0~26 min,98% B;檢測波長為200 nm,進(jìn)樣體積10 μL,流速0.8 mL/min,柱溫為40℃。以5個濃度不同的對照品為橫坐標(biāo),所對應(yīng)的峰面積為縱坐標(biāo)繪制對照品標(biāo)準(zhǔn)曲線,用于含量測定。
1.2.6 UPLC-ESI-qTOF-MS 分析 11-羰基-20β-羥基-Cuol 取 200 mg煙草葉片于液氮中冷凍后研磨成細(xì)粉,用1 mL乙酸乙酯重復(fù)提取3次,37℃下孵育1 h,合并萃取液,用氮吹儀濃縮干。濃縮物加入200 μL色譜甲醇溶解,并用0.22 μm微孔濾膜過濾,然后采用UPLC-ESI-qTOF-MS(Agilent 1290,四級桿串聯(lián)飛行時間質(zhì)譜Agilent 6540)進(jìn)行檢測,檢測條件:色譜柱Agilent Poroshell 120 EC-C18(4.6 mm×100 mm, 2.7 μm),進(jìn)樣量 2 μL,流速0.8 mL/min。流動相是0.1%甲酸(A相)和乙腈(B相),采用線性梯度洗脫程序,時間及B相的比例如下:0 min,30%;16 min,100%;23 min,100%;28 min,100%。質(zhì)譜條件:離子源采用是正離子模式,氣體溫度 350℃,噴霧電壓500 V;碎裂電壓140 V;錐孔電壓60 V;射頻電壓750 V,掃描范圍50~1000m/z。
攜帶pEAQ-HT-DEST1-GFP載體和pAN580-GFP農(nóng)桿菌菌液,在OD600=0.8,真空壓力80 kPa條件下,農(nóng)桿菌滲入5周齡煙草幼苗,96 h后激光共聚焦顯微鏡觀察葉片中報告基因GFP的表達(dá)部位。發(fā)現(xiàn)2個載體農(nóng)桿菌菌液滲入處理后,細(xì)胞質(zhì)、細(xì)胞核、細(xì)胞膜中均能觀察到GFP的表達(dá)(圖3),表明構(gòu)建的pEAQ-HT-DEST1-GFP瞬時表達(dá)載體在煙草葉片中穩(wěn)定工作。
圖3 重組表達(dá)載體滲入后煙草葉片后GFP的表達(dá)情況Fig.3 GFP expression in tobacco leaves after infection with recombinant expression vector
研究發(fā)現(xiàn),攜帶pEAQ-HT-DEST1-GFP載體的不同農(nóng)桿菌菌株(GV3101、EHA105和LBA4404)滲入煙草后,GFP表達(dá)量均在處理后第4天達(dá)到最高,而且EHA105滲入植株的GFP表達(dá)量最高(圖4A),說明EHA105是最適宜瞬時轉(zhuǎn)化的菌株,而外源基因在滲入后第4天表達(dá)最高,然后表達(dá)下降。EHA105滲入本氏煙草的GFP表達(dá)效果(圖4B)。比較不同濃度(OD600為0.4、0.6、0.8、1.0)的農(nóng)桿菌EHA105菌液滲入效果,農(nóng)桿菌滲透液濃度OD600=0.8時,GFP的表達(dá)效率最高(圖4C);比較不同的真空滲透壓力(40~100 kPa)發(fā)現(xiàn),真空壓力為80 kPa時,GFP的表達(dá)效率最高,達(dá)到80%(圖4D)。
圖4 農(nóng)桿菌滲入的不同因素對GFP瞬時表達(dá)效率的影響Fig.4 Effects of different factors of agro-infiltration on transient expression efficiency of GFP
提取瞬時表達(dá) pEAQ-HT-DEST1-HcOSC6的本氏煙草葉片,進(jìn)行 GC-MS分析,采用 HPLC法測定其含量。在煙草葉片提取物出現(xiàn)新的分子離子峰 21.18 min(圖5A),與葫蘆二烯醇標(biāo)準(zhǔn)品的出峰時間一致,且分子峰碎片吻合(圖5C,圖5D),確定該峰為葫蘆二烯醇。對照組中pEAQ-HT-DEST1-GFP滲透的煙草提取物中未發(fā)現(xiàn)葫蘆二烯醇峰。由HPLC定量分析葫蘆二烯醇(圖5B),繪制標(biāo)準(zhǔn)品標(biāo)準(zhǔn)曲線(Y=1663.56953X-21.224813,r=0.98567;Y為峰面積,X為葫蘆二烯醇含量),測定葫蘆二烯醇含量為2.832 mg/g(干重),當(dāng)pEAQ-HT-DEST1-HcOSC6和pEAQHT-DEST1-tHMGR在煙草共滲透時,葫蘆二烯醇含量達(dá)到9.48 mg/g(干重),提高了234.75%,實現(xiàn)了葫蘆二烯醇在本氏煙草中的高效生產(chǎn)。
圖5 煙草中葫蘆二烯醇產(chǎn)物的GC-MS和HPLC分析Fig.5 GC-MS and HPLC analysis of cucurbitadienol tobacco products
由于農(nóng)桿菌滲入法能夠共表達(dá)多個目的基因,異源合成不同單體化合物,而無需逐步構(gòu)建多個不同表達(dá)載體。大多數(shù)的 CYP450氧化酶在催化過程中都需要還原蛋白(CPR)的參與,利用本氏煙草本身的特性,一方面評估了農(nóng)桿菌滲入本氏煙草內(nèi)表達(dá) CYP450氧化酶的潛力,另一方面在煙草中驗證雪膽參與葫蘆素生物合成的CYP同源基因HcCYP87D20。結(jié)果顯示,在tHMGR、HcOSC6和HcCYP87D20共滲入煙草葉片中,在22.75 min提取出1個特異代謝產(chǎn)物(m/z457.3746 [M+H]+)(圖6A),與 11-羰基-20β-羥基-Cuol標(biāo)準(zhǔn)品出峰時間一致,且質(zhì)譜圖一致(圖6B)。空白對照組 pEAQ-HT-DEST1-GFP滲透的煙草中未發(fā)現(xiàn)11-羰基-20β-羥基-Cuol。
圖6 Hc87D20在本氏煙草表達(dá)11-羰基-20β-羥基-Cuol產(chǎn)物的LC-qTOF-MS分析Fig.6 LC-qTOF-MS analysis of 11-carbonyl-20β-hydroxyl-Cuol products expressed by Hc87D20 in N.benthamiana
隨著合成生物學(xué)領(lǐng)域的飛速發(fā)展,已闡明越來越多的天然藥物的生物合成途經(jīng)并實現(xiàn)高效異源合成,煙草作為重要的植物異源生產(chǎn)平臺受到人們的廣泛關(guān)注。目前,新冠肺炎COVID-19抗原已在煙草中實現(xiàn)了高效生產(chǎn),用于制備新冠疫苗。農(nóng)桿菌滲入本氏煙草為高效、快速表達(dá)疫苗抗原或單體藥物提供了一個新的平臺,然而,如何提高植物體內(nèi)蛋白質(zhì)和單體化合物產(chǎn)量是目前農(nóng)桿菌滲入研究的重點和難點之一[21]。為了最大限度地提高基因表達(dá)水平,研究人員試圖在多個水平上優(yōu)化該過程,例如通過提高農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化率和改造特定載體包含增加轉(zhuǎn)基因轉(zhuǎn)錄,翻譯衍生的元件[22]。農(nóng)桿菌的遺傳背景極大地影響植物病原體T-DNA轉(zhuǎn)移載體的能力。因此,本研究測試了3種常見的農(nóng)桿菌攜帶pEAQ-HT-DEST1-GFP載體在本氏煙草中的GFP表達(dá)的能力,高活力菌株EHA105在4 d時GFP表達(dá)量最高,與其他2種菌株相比,EHA105可能更有效地編碼農(nóng)桿菌T-DNA轉(zhuǎn)運。農(nóng)桿菌滲入過程中的菌滲透液濃度會影響基因表達(dá)效率,過于稀釋的菌滲透液可能會導(dǎo)致農(nóng)桿菌細(xì)胞比例降低,從而降低外源基因表達(dá)效率,而濃度大的菌滲透液會導(dǎo)致農(nóng)桿菌過度生長并損傷煙草葉片組織,影響本氏煙草細(xì)胞的轉(zhuǎn)錄或翻譯能力,進(jìn)而影響外源基因的表達(dá)效率[23-24]。此外,通過比較不同真空滲透壓力發(fā)現(xiàn),真空滲透壓力過低,農(nóng)桿菌不能有效地滲入,壓力過高可能嚴(yán)重影響植物的生理狀態(tài)。因此,本研究通過測試不同的農(nóng)桿菌滲透條件,探索最佳的滲透條件以期為下一步的基因異源表達(dá)奠定基礎(chǔ)。
目前,葫蘆素B、E和F的生物合成尚未報道,本研究選擇了特異性地含有葫蘆素F的雪膽為研究對象,同時葫蘆素F與其他葫蘆素結(jié)構(gòu)有許多相同修飾基團(tuán)。本研究在本氏煙草驗證雪膽的HcCYP87D20基因,以葫蘆二烯醇為底物下連續(xù)催化C11位和C20位生成了11-羰基-20β-羥基-Cuol,但葫蘆素F依然有多個位點的氧化修飾機理和基因未知,特別是C-22酮基和C-16α羥基位點等[8,25]。C-22酮基是所有葫蘆素分子的另一共同結(jié)構(gòu)特征,酮基一般為羥基氧化而來。目前報道的CYP90B家族催化C-22位羥化,例如參與油菜素內(nèi)酯生物合成的DWF4基因(CYP90B1),能夠催化菜油甾醇或 6-oxo-菜油甾醇的 C-22羥化[26-27],在北美山藜蘆(Veratrum californicum)甾體生物堿環(huán)巴胺的生物合成中,CYP90B27則編碼膽固醇 22-羥化酶,催化膽固醇轉(zhuǎn)化為22(R)-OH-膽固醇,CYP90G1能夠轉(zhuǎn)化22-OH-22-氨基-膽固醇為 22-酮基-22-氨基-膽固醇[28]。催化C-16α羥基方面,目前已報道有兩類基因可以催化形成三萜類化合物的 C-16α羥化。一類屬于CYP基因,分別是CYP716Y1和CYP716A141,編碼C16α-羥化酶,能夠催化香樹脂骨架的C-16α羥化[25];一類是馬鈴薯(Solanum tuberosum)2-酮戊二酸依賴型加雙氧酶(2-ODD,St16-DOX),編碼類固醇 16α-羥化酶催化(22S)-22,26-二羥基膽固醇的 C-16α-羥化[26]。
在本研究中,將雪膽CBS基因(HcOSC6)、截短的燕麥tHMGR和HcCYP87D20共滲入煙草葉片中表達(dá),雖然UPLC-ESI-qTOF-MS檢測到了11-羰基-20β-羥基-Cuol,但未檢測到 11-羰基-Cuol,這可能是CYP87D20氧化酶催化效率低,導(dǎo)致 11-羰基-20β-羥基-Cuol前提物質(zhì) 11-羰基-Cuol不足,因此,下一步將利用酶工程手段提高CYP87D20活性,提高細(xì)胞色素P450氧化酶的催化效率,以實現(xiàn)葫蘆素植物工廠的高效生產(chǎn)。
本研究將pEAQ-HT-DEST1-GFP與pAN580-GFP載體轉(zhuǎn)化到農(nóng)桿菌感受態(tài)細(xì)胞中滲透本氏煙草,確定在煙草細(xì)胞內(nèi)定位結(jié)果一致。將雪膽CBS基因(HcOSC6)與截短的燕麥tHMGR共表達(dá),不斷優(yōu)化煙草共表達(dá)體系,將煙草葉片中的葫蘆二烯醇產(chǎn)量從2.832 mg/g(干重)提高到9.48 mg/g(干重)。同時,將雪膽的HcCYP87D20共滲入煙草葉片,獲得了葫蘆素生物合成的重要中間體11-羰基-20β-羥基-Cuol,實現(xiàn)了葫蘆素中間體在本氏煙草中的異源生產(chǎn),為葫蘆素的生物合成奠定了堅實的基礎(chǔ)。