謝華松,魏愛紅,鄒玉冰,李龍輝,龍昊邦,張聲源,2△
(1.嘉應學院醫(yī)學院,廣東 梅州 514031;2.廣東省山區(qū)特色農(nóng)業(yè)資源保護與精準利用重點實驗室,廣東 梅州 514031)
自由基的化學性質活潑,其引發(fā)的氧化損傷可導致如糖尿病、癌癥、心腦血管疾病、動脈粥樣硬化等許多疾病發(fā)生[1-2]。研究表明,天然植物中含有豐富的抗氧化活性物質(黃酮類、多糖、有機酸以及酚類等)[3],且其中的黃酮類、酚類等成分均具有良好的降血糖作用[4],部分天然產(chǎn)物中含有降血糖活性的有效成分[5-6]。鈍藥野木瓜Stauntonia leucanthaDiels ex Y.C.Wu 屬木通科野木瓜屬植物,俗稱繞繞藤、五葉木通、八月瓜,主要分布于貴州、四川、安徽、江浙和兩廣等地,其入藥部位主要為藤莖、葉,味甘性溫,具有除濕消痹、活血散瘀、祛風止痛、利水通經(jīng)等功效[7-9]。近年來,野木瓜屬植物被發(fā)現(xiàn)含有三萜苷元、苷類、木脂素類、黃酮類、酚類、脂肪酸類、甾醇類等成分,具有鎮(zhèn)痛抗炎、抗腫瘤、抗病毒、促進神經(jīng)細胞生長、抗氧化、放射增敏和驅蟲等作用。民間習慣食用鈍藥野木瓜果實,但國內(nèi)外對此研究報道較少。為進一步深入挖掘鈍藥野木瓜果實的食用和藥用價值,本研究中擬對廣東省梅州山區(qū)該果實的果皮、果肉、種子的抗氧化及降血糖作用進行探討,為其在食藥領域的綜合開發(fā)利用提供科學依據(jù)。現(xiàn)報道如下。
儀器:UV - 1800 型紫外- 可見分光光度計(日本Shimadzu公司);Q-Gard A2型超純水儀(德國Millipore公司);BT125D 型電子分析天平、BS110s 型電子分析天平(德國Sartorius 公司);GL-25M 型高速離心機(上海趙迪生物科技有限公司);JP - 100S 型超聲波清洗器(深圳市潔盟清洗設備有限公司);WJX-A1000型高速多功能粉碎機(浙江省永康市紅太陽機電有限公司);pHSJ - 3F 型pH 計(上海精科儀器有限公司);DHP -9052型電熱恒溫培養(yǎng)箱(上海一恒科學儀器有限公司);Spark型Tecan酶標儀(上海帝肯貿(mào)易有限公司)。
試藥:1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH,批號為D141336)、2,2-聯(lián)氮-二(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸)二銨鹽(ABTS,批號為P112193)、無水檸檬酸(批號為H1827027)、鐵氰化鉀(批號為I1814108)、對氨基苯磺酸(批號為E1929192)、4 - 硝基苯基-β-D- 吡喃葡萄糖苷(pNPG,批號為D1717029)、沒食子酸(批號為K1805015)、蘆丁(批號為L2010248),均購自上海阿拉丁生化科技股份有限公司;磷酸二氫鈉(批號為20190301)、可溶性淀粉(批號為20180501),均購自天津市大茂化學試劑廠;十二水磷酸氫二鈉(西隴科學股份有限公司,批號為2110141);3,5 - 二硝基水楊酸(DNS,國藥集團化學試劑有限公司,批號為20170904);α- 淀粉酶(批號為SLCF5282)、α - 葡萄糖苷酶(批號為SLCG0041),均購自美國Sigma 公司;牛血清蛋白(上海百研生物科技有限公司,批號為WXBC2003V);維生素C(VitC,批 號 為C10701117)、福 林 酚(批 號 為C10496226)、硝酸鋁(批號為C10373927),均購自上海麥克林生化科技有限公司;其余試劑均為分析純。鈍藥野木瓜果實于2020 年10 月采自廣東省梅州市平遠縣,經(jīng)嘉應學院醫(yī)學院張聲源副教授鑒定為正品。
1.2.1 醇提物制備
取樣品果實,將其果皮、果肉、種子曬干,粉碎,按料液比1∶2(g/mL)分別加入95%乙醇浸泡12 h,40 ℃超聲(功率200 W,頻率40 kHz)提取40 min,濾過,重復3次,合并濾液后減壓濃縮,得到種子、果肉、果皮乙醇提取物分別為65.11,16.40,23.60 g,于5 ℃貯存,備用。
1.2.2 總酚、總黃酮含量測定
以沒食子酸為對照品,采用福林酚法測定總酚含量[10-11]。以沒食子酸當量(每1 g 樣品中酚類化合物的沒食子酸當量mg GA/g)為橫坐標、吸光度為縱坐標進行線性回歸。以蘆丁為對照品,采用硝酸鋁法測定總黃酮含量[12-13]。以蘆丁當量(每1 g 樣品中黃酮類化合物的蘆丁當量mg RT/g)為橫坐標、吸光度為縱坐標進行線性回歸。
1.2.3 抗氧化活性測定
DPPH 法:取3 種醇提物各適量,分別制成醇提液。各取1.0 mL及VitC溶液(陽性對照,下同)1 mL,分別加入1.0 mL 0.1 mmol/ L DPPH 無水乙醇溶液,置于暗處,室溫下反應20 min,分別計算醇提液和VitC 溶液對DPPH自由基的清除率[14-15]。
ABTS 法:精密移取不同質量濃度的醇提液及VitC溶液各100μL,ABTS+溶液3.9 mL,置同一試管中,室溫放置10 min,以100 μL 無水乙醇和3.9 mL 磷酸鹽緩沖液(PBS)的混合溶液調(diào)零,分別計算醇提液及VitC 溶液對ABTS+的清除率[16-17]。
鐵還原能力法:分別精密移取2.5 mL 的PBS 和K3Fe(CN)6溶液于10 mL 試管中,搖勻,50 ℃恒溫水浴反應20 min,急速冷卻,加入2.5 mL 三氯乙酸溶液,搖勻,6 000 r/ min 離心10 min,取上清液2.5 mL 于試管中,依次加入2.0 mL 蒸餾水與0.5 mL FeCl3溶液混勻,于700 nm 波長處測定吸光度(Ai)。以與待測溶液等量的無水乙醇為對照,以與K3Fe(CN)6溶液、三氯乙酸溶液和FeCl3溶液等量的蒸餾水為空白,同法測定對照的吸光度(A0)和空白的吸光度(Aj)。以VitC 的質量濃度為橫坐標、吸光度為縱坐標進行線性回歸,以3 種醇提液的吸光度與VitC相比,計算鐵還原能力[18-19]。
1.2.4 降血糖活性測定
α-葡萄糖苷酶活性:取0.067 mol/L PBS 110μL、醇提液10μL、α-葡萄糖苷酶溶液(1 U/mL)20μL,混勻,37 ℃孵育15 min,加入4.0 mmol/L pNPG 20μL,混勻,37 ℃反應15 min,加入0.2 mol/L無水碳酸鈉80μL終止反應,混勻,測定吸光度,并分別計算醇提液及阿卡波糖溶液(陽性對照,下同)對酶活性的抑制率[20-21]。
α-淀粉酶活性:制備系列質量濃度的3 種醇提液和阿卡波糖溶液,分別加入120μLα-淀粉酶溶液,混合,37 ℃孵育5 min,取出,加入1%淀粉底物緩沖液120 μL,混勻,37 ℃反應15 min,取出后加DNS 溶液200μL,置沸水浴5 min,取出,冷卻至室溫,加入1 040μL PBS;測定吸光度,并分別計算醇提液和阿卡波糖溶液對酶活性的抑制率[21-22]。
采用Origin 8.5 軟件分析,結果以X±s表示;采用SPSS 25.0 統(tǒng)計學軟件進行單因素差異顯著性分析和Pearson相關性分析。P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
沒食子酸回歸方程為Y1= 95.577X1+ 0.032 1(r=0.996 5)、蘆丁回歸方程為Y2=12.823X2-0.003 2(r=0.999 4)。結果表明,沒食子酸、蘆丁分別在2.00~10.00 μg/ mL、8.00~72.00 μg/ mL 質量濃度范圍內(nèi)與相應吸光度線性關系良好。結果果肉的總酚含量(6.40 mg GA/ g)最高,其次為果皮(4.40 mg GA/ g),最低為種子(0.04 mg GA/g)。果皮的總黃酮含量最高(6.84 mg RT/g),其次為果肉(2.14 mg RT/g),最低為種子(0.28 mg RT/g)。
DPPH 自由基清除能力:DPPH 自由基的清除能力見圖1。3 種醇提液對DPPH 自由基均有一定清除能力,且種子在0.62~20.00 mg/ mL,果皮和果肉在0.16~20.00 mg/ mL 范圍內(nèi),清除能力隨質量濃度的增加而增強。對DPPH 自由基清除能力,VitC[半數(shù)抑制濃度(IC50)=(0.007 ± 0.000 01)mg/ mL]>果皮[IC50=(0.586 ± 0.016)mg/ mL]>果 肉[IC50=(1.177 ±0.029)mg/mL]>種子[IC50=(4.603±0.281)mg/mL];且兩兩之間差異顯著(P<0.05)。
圖1 DPPH自由基清除能力Fig.1 DPPH free radical scavenging ability
ABTS 自由基清除能力:ABTS 自由基清除能力見圖2。3 種醇提液對ABTS 自由基均有一定清除能力,且種子在2.34~75.00 mg/ mL,果皮和果肉在0.59~75.00 mg/mL 范圍內(nèi)清除能力隨質量濃度的增加而增強。ABTS 自由基清除能力大小為,VitC[IC50=(0.023±0.000 47)mg/mL]>果皮[IC50=(2.850±0.08)mg/mL]>果肉[IC50=(3.403 ± 0.11)mg/ mL]>種子[IC50=(15.984 ± 0.19)mg/ mL];且 兩 兩 之 間 差 異 顯 著(P<0.05)。
圖2 ABTS+清除能力Fig.2 ABTS+ radical scavenging ability
鐵還原能力:VitC 回歸方程為Y= 14.109X+0.488 3(R2= 0.993 2),同法得3 種醇提液的回歸方程。結果見圖3。果肉的鐵還原能力為(164.530 ±3.78)μmol VitC/g,顯著強于果皮的(147.330±1.51)μmol VitC/g和種子的(75.010±3.73)μmol VitC/g(P <0.05);且單因素方差分析和Duncan法分析顯示,果皮、果肉及種子與VitC的鐵還原能力存在顯著差異(P <0.05)。
圖3 鐵還原能力Fig.3 Iron reduction ability
總酚、總黃酮含量與抗氧化能力的相關性分析:結果見表1。果肉、種子中的總酚、總黃酮含量與清除ABTS+、DPPH 自由基能力及鐵還原能力均呈極顯著正相關(P <0.01);果皮的總酚、總黃酮含量與清除ABTS+能力呈極顯著正相關(P <0.01)。
表1 抗氧化活性與總酚、總黃酮含量的相關性考察Tab.1 Correlation between the antioxidant activity and the content of total phenols and flavonoids
抑制α-葡萄糖苷酶活性:3 種醇提液及阿卡波糖溶液對α- 葡萄糖苷酶活性的抑制率見圖4。3 種醇提液對α- 葡萄糖苷酶活性均具一定抑制作用,且在3.12~200.00 mg/mL范圍內(nèi)時抑制率均隨質量濃度的增加而升高。當果肉質量濃度大于50 mg/mL 時,對α-葡萄糖苷酶活性的抑制作用趨于飽和。對α-葡萄糖苷酶活性的抑制作用大小為,阿卡波糖[IC50=(3.08±0.27)mg/mL]>果肉[IC50=(15.85±0.70)mg/mL]>果皮[IC50=(30.16 ± 1.30)mg/ mL]>種子[IC50=(119.89 ± 0.98)mg/ mL];且 兩 兩 之 間 差 異 顯 著(P<0.05)。
圖4 α-葡萄糖苷酶活性抑制率Fig.4 Inhibitory rate of α-glucosidase activity
抑制α- 淀粉酶活性:3 種醇提液及阿卡波糖溶液對α-淀粉酶活性的抑制率見圖5。3 種醇提液對α-淀粉酶活性均具一定抑制作用,且種子、果皮在6.25~200.00 mg / mL,果肉在15.00~45.00 mg / mL 范圍內(nèi)抑制率隨質量濃度的增加而升高。當質量濃度小于30 mg/mL 時,果肉對α-淀粉酶活性的抑制作用小于阿卡波糖,當超過30 mg/ mL 時前者抑制作用大于后者。對α- 淀粉酶活性抑制作用的大小為,阿卡波糖[IC50=(0.34±0.016)mg/mL]>果肉[IC50=(20.35±0.021)mg/mL]>果皮[IC50=(37.11±1.12)mg/mL];且兩兩之間差異顯著(P<0.05)。種子未測出。
圖5 α-淀粉酶活性抑制率Fig.5 Inhibitory rate of α-amylase activity
崔霖蕓[12]對野木瓜的抗氧化研究發(fā)現(xiàn),醇提物中總黃酮含量及抗氧化活性均強于水提物,黃酮是野木瓜抗氧化活性的物質基礎。由此可知,醇溶劑能有效提取野木瓜的抗氧化有效成分。本研究結果表明,果皮、果肉及種子對DPPH 自由基及ABTS+清除能力的強弱順序一致,均為果皮>果肉>種子,而鐵還原力法的強弱順序卻為果肉>果皮>種子,其原因可能為,3 種評價方法的作用機制不同[23],DPPH 法和ABTS 法是基于自由基機制,鐵還原力法基于鐵離子的價態(tài)改變反映抗氧化能力;種子、果皮及果肉中的抗氧化有效成分和含量不同,如本研究中發(fā)現(xiàn)3 個部位的總酚、總黃酮含量及其與不同抗氧化方法的相關性不一致。結果顯示,總黃酮與總酚是鈍藥野木瓜發(fā)揮抗氧化活性的物質基礎,該結果豐富了鈍藥野木瓜食用藥用的科學內(nèi)涵。
陳瑛等[24]研究發(fā)現(xiàn),野木瓜具有良好的降血糖作用。本研究結果表明,果皮、果肉對α- 葡萄糖苷酶和α-淀粉酶活性均有明顯的抑制作用,其中果肉的抑制能力最強,表明果肉中富含降血糖活性成分,后續(xù)可對其活性成分進行富集和分離純化,以評估其單體化合物的降血糖能力。
鈍藥野木瓜果實中的果皮、果肉具有良好的抗氧化及降血糖作用,后續(xù)可研究測定果皮、果肉不同溶劑提取物的總酚、總黃酮含量并進一步對提取物中的總酚、總黃酮分離純化,明確活性物質基礎;也可對果肉中的降血糖活性成分進行富集和分離純化,評估其單體化合物的降血糖能力,以分析構效關系,闡明其藥用科學內(nèi)涵。
綜上所述,鈍藥野木瓜果實具有開發(fā)成降血糖、抗腫瘤等功效保健食品或藥品的潛力,本研究結果可為其在食藥領域的綜合開發(fā)利用提供依據(jù)。