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      金汁糞菌移植對濕熱型潰瘍性結(jié)腸炎小鼠疾病活動指數(shù)及炎癥反應(yīng)的影響

      2023-05-26 12:30:12楊蘇琴葛巍張磊昌
      藥品評價 2023年2期
      關(guān)鍵詞:濕熱型結(jié)腸腸道

      楊蘇琴,葛巍,張磊昌

      江西中醫(yī)藥大學(xué)附屬醫(yī)院,江西 南昌 330006

      潰瘍性結(jié)腸炎(UC)是一種多因素起源的慢性炎癥性腸病,其病因和發(fā)病機(jī)制尚不完全清楚。近幾十年來,UC 發(fā)病率在我國呈上升趨勢[1]。研究表明,UC 出現(xiàn)腹痛、血性腹瀉以及腸道炎癥可能與腸道微生物群與免疫系統(tǒng)間的相互作用相關(guān)[2],然而大多數(shù)治療UC 的藥物會干擾代謝和免疫反應(yīng),往往會引起一些嚴(yán)重的不良反應(yīng)。因此,調(diào)節(jié)腸道菌群紊亂,恢復(fù)腸道微生物穩(wěn)態(tài)成為治療UC 的新策略,例如Sznurkowska 等[3]發(fā)現(xiàn)UC 患兒腸道炎癥Treg細(xì)胞比例顯著增加,采用益生菌緩解UC 取得了較好的效果[3-4]。糞菌移植(FMT)是近年開發(fā)的新治療方式,該療法將人體糞便功能菌通過口服或灌腸等方式轉(zhuǎn)移到患者胃腸道,目的在于重塑腸道菌群結(jié)構(gòu),在多項(xiàng)大型研究中均表現(xiàn)出對UC 的積極作用[5]。中藥金汁是最早應(yīng)用于FMT 療法的藥物,具有清熱解毒涼血的作用,研究表明其對腸道感染、腸道炎癥、腸易激綜合征、代謝綜合征等具有一定的臨床應(yīng)用價值[6]。本研究的目的是探究金汁FMT 對濕熱型UC 小鼠疾病活動指數(shù)以及炎癥反應(yīng)的作用。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      1.1.1 實(shí)驗(yàn)動物 SPF 級C57BL/10 小鼠,6 周齡,體質(zhì)量范圍20±2 g,由江西中醫(yī)藥大學(xué)實(shí)驗(yàn)動物科技中心提供。

      1.1.2 主要藥品與試劑 葡萄糖硫酸鈉(DSS,翌圣生物科技股份有限公司),美沙拉秦腸溶片(葵花藥業(yè)集團(tuán)佳木斯鹿靈制藥有限公司,國藥準(zhǔn)字H19980148,規(guī)格:0.25 g),小鼠酶聯(lián)免疫吸附劑測定(ELISA)試劑盒(武漢博士德生物工程有限公司)。

      1.2 方法

      1.2.1 動物分組和造模 將49 只C57BL/10 小鼠隨機(jī)分為正常對照組和濕熱型模型組各13 只(每組隨機(jī)選取3 只進(jìn)行模型驗(yàn)證),濕熱型FMT 組和濕熱型5-ASA 組各10 只,模型驗(yàn)證組3 只。造模方法對周長琳等[7]的方法進(jìn)行了改良,除正常對照組小鼠和3 只模型驗(yàn)證小鼠外,其余小鼠飼養(yǎng)于獨(dú)立通氣籠盒系統(tǒng),溫度36℃,濕度80%,每天12 時給予高脂高糖飼料和2%DSS 蒸餾水溶液自由飲食;正常對照組小鼠普通環(huán)境飼養(yǎng),給予普通飼料和飲用水;3 只模型驗(yàn)證小鼠普通環(huán)境飼養(yǎng),給予普通飼料和2%DSS 蒸餾水溶液自由飲食。

      所有小鼠連續(xù)飼養(yǎng)10 d 后進(jìn)行模型驗(yàn)證,(1)觀察小鼠一般情況,包括是否出現(xiàn)體質(zhì)量降低、膿血便、腹瀉、背毛無光澤、拱背、懶動、嗜睡、食欲不振、大便腥臭、肛周紅腫、肛溫升高等情況。(2)計算疾病活動指數(shù)(DAI),從體質(zhì)量變化、大便性狀、便血程度三個方面進(jìn)行綜合評分。評分標(biāo)準(zhǔn):體質(zhì)量減少百分率0、1~5、6~10、11~15、大于15分別對應(yīng)0~4 分,大便性狀正常、松散、腹瀉分別對應(yīng)0、2、4 分,便血陰性、+、++、+++和大出血分別對應(yīng)0~4 分。DAI=(體質(zhì)量減少分?jǐn)?shù)+大便性狀分?jǐn)?shù)+便血分?jǐn)?shù))/3。(3)正常對照組和濕熱型模型組每組隨機(jī)選取3 只和3 只模型驗(yàn)證小鼠一同進(jìn)行組織學(xué)病理觀察,HE 染色觀察結(jié)腸病理變化并進(jìn)行組織病理評分。結(jié)合以上3 點(diǎn)進(jìn)行綜合分析判斷造模是否成功。

      1.2.2 藥物干預(yù)方法 以正常對照組10 只非模型驗(yàn)證小鼠作為糞菌移植供體來源,提前制備糞菌液,收集正常對照組小鼠新鮮糞便,按1∶2 比例(g/mL)溶解于無菌磷酸緩沖鹽溶液(PBS)中,經(jīng)多次網(wǎng)篩過濾(10 目、20 目、32 目、50 目)所得濾液以6 000 r/min 離心15 min 獲得菌體,無菌PBS 清洗菌體3 次后,25 mL 無菌PBS 重懸菌體制成糞菌液,-4 ℃保存。

      模型驗(yàn)證后開始藥物干預(yù),各組均改為普通環(huán)境普通飼料飼養(yǎng),正常對照組不做任何處理,濕熱型模型組予以0.2 mL 無菌PBS 灌腸,濕熱型FMT 組小鼠予以0.2 mL 糞菌液灌腸,濕熱型5-ASA 組予以美沙拉秦PBS 溶液(0.26 g/kg)灌腸。小鼠乙醚麻醉后,用預(yù)先涂抹液狀石蠟的塑膠軟管插入小鼠肛門至結(jié)腸,倒置小鼠并灌腸,灌腸后拔出塑膠管用棉簽輕壓肛門促進(jìn)閉合,小鼠保持倒置狀態(tài)60 s,2次/d,治療10 d,進(jìn)行DAI 評價后處死,沿腹正中線打開腹腔,分離結(jié)腸段并分為兩部分,分別用作組織病理檢測和細(xì)胞因子檢測。

      1.2.3 療效指數(shù)計算 末次治療1 h 后計算各組小鼠療效指數(shù),評估治療后各組小鼠DAI 得分并根據(jù)尼莫地平法計算FMT 和5-ASA 的療效指數(shù),療效指數(shù)=(DAI 治療前-DAI 治療后)/DAI 治療前×100%。

      1.2.4 HE 染色觀察病理變化 將結(jié)腸組織固定于4%多聚甲醛中48 h 后修整組織塊(1 cm2),常規(guī)脫水透明后采用石蠟包埋,制作3 μm 厚連續(xù)切片,用蘇木精和伊紅染色,再進(jìn)行梯度乙醇水化和透明后,用樹脂封片,顯微鏡下觀察結(jié)腸組織病理變化并進(jìn)行組織病理評分。評分標(biāo)準(zhǔn):無炎性浸潤為0 分;輕度炎性浸潤為1 分;中度炎性浸潤,輕微出血為2 分;高度炎性浸潤,存在出血性潰瘍,結(jié)腸壁增厚,杯狀細(xì)胞減少,隱窩部分性破壞為3 分;出現(xiàn)跨壁炎性浸潤,杯狀細(xì)胞大量減少,組織大面積纖維化,隱窩大量破壞為4 分。

      1.2.5 ELISA 檢測結(jié)腸組織細(xì)胞因子 將結(jié)腸組織進(jìn)行勻漿,檢測結(jié)腸組織INF-γ、IL-2、IL-4、IL-17、TGF-β、IL-10 水平,操作方法嚴(yán)格按照試劑盒要求進(jìn)行,設(shè)置3 復(fù)孔取平均值,最后在酶標(biāo)儀上檢測450 nm 波長吸光度并計算細(xì)胞因子水平。

      1.3 統(tǒng)計學(xué)方法

      2 結(jié)果

      2.1 濕熱環(huán)境和高脂高糖飲食促進(jìn)UC 進(jìn)展

      造模后,模型驗(yàn)證組和濕熱型模型組小鼠均出現(xiàn)了明顯體質(zhì)量降低、大便不成形甚至腹瀉、活動度降低、食欲不振、背毛無光澤等情況,其中濕熱型模型組小鼠有2 只有明顯膿血便、大便腥臭和肛溫升高的情況。比較3 組小鼠的結(jié)腸組織病理損傷情況,正常對照組小鼠結(jié)腸組織無明顯異常,模型驗(yàn)證組小鼠出現(xiàn)明顯炎性浸潤,以單核細(xì)胞為主,局部黏膜出現(xiàn)水腫、潰瘍、腸壁增厚和隱窩損傷,而濕熱型模型組小鼠上述表現(xiàn)進(jìn)一步加重。與正常對照組比較,模型驗(yàn)證組小鼠DAI 指數(shù)和HPS 評分均升高(P<0.05),體質(zhì)量顯著降低(P<0.05),與模型驗(yàn)證組比較,濕熱型模型組小鼠DAI 指數(shù)和組織病理評分均升高(P<0.05),體質(zhì)量顯著降低(P<0.05)。見圖1、表1。

      圖1 小鼠結(jié)腸組織病理HE染色圖(×400)和體質(zhì)量變化(n=3)

      表1 小鼠DAI指數(shù)和組織病理評分比較()

      表1 小鼠DAI指數(shù)和組織病理評分比較()

      注:與正常對照組比較,aP<0.05;與模型驗(yàn)證組比較,bP<0.05。

      2.2 金汁FMT 減輕DSS 誘導(dǎo)的UC 小鼠癥狀

      實(shí)驗(yàn)過程中各組均無小鼠死亡。治療期間,與正常對照組比較,濕熱型模型組小鼠體質(zhì)量顯著降低(P<0.05),DAI 指數(shù)升高(P<0.05);與濕熱型模型組比較,濕熱型FMT 組和濕熱型5-ASA 組小鼠體質(zhì)量呈先緩慢降低后升高趨勢(P<0.05),DAI指數(shù)降低(P<0.05);濕熱型FMT 組療效指數(shù)顯著高于濕熱型5-ASA 組(P<0.05)。見圖2、表2。

      圖2 各組小鼠治療期間體質(zhì)量變化情況

      表2 各組小鼠DAI指數(shù)和療效指數(shù)比較()

      表2 各組小鼠DAI指數(shù)和療效指數(shù)比較()

      注:與同時間正常對照組比較,aP<0.05;與治療前同組比較,bP<0.05;與同時間濕熱型模型組比較,cP<0.05。

      2.3 金汁FMT 減輕DSS 誘導(dǎo)的UC 小鼠結(jié)腸病理損傷

      治療后觀察各組小鼠結(jié)腸組織病理情況。正常對照組腸壁結(jié)構(gòu)完好無異常,隱窩無破壞;濕熱型模型組炎性浸潤加重,腸壁黏膜層增厚并出現(xiàn)潰瘍出血點(diǎn);濕熱型FMT 組和濕熱型5-ASA 組炎性浸潤有明顯改善,隱窩破壞程度減輕。見圖3。

      圖3 各組小鼠結(jié)腸組織病理變化(×200)

      2.4 各組小鼠結(jié)腸組織細(xì)胞因子水平比較

      治療后,與正常對照組比較,濕熱型模型組小鼠結(jié)腸組織INF-γ、IL-2、IL-4 和IL-17 水平均上升(P<0.05),TGF-β 和IL-10 水平降低(P<0.05);與濕熱型模型組比較,濕熱型FMT 組和濕熱型5-ASA 組小鼠結(jié)腸組織INF-γ、IL-2、IL-4 和IL-17 水平均降低(P<0.05),TGF-β 和IL-10 水平升高(P<0.05)。見表3。

      表3 各組小鼠結(jié)腸組織細(xì)胞因子水平比較() pg/mL

      表3 各組小鼠結(jié)腸組織細(xì)胞因子水平比較() pg/mL

      注:與正常對照組比較,aP<0.05;與濕熱型模型組比較,bP<0.05。

      3 討論

      UC 相關(guān)大腸癌的發(fā)病率逐年上升,是UC 患者死亡的主要原因。UC 的臨床表現(xiàn)為腹瀉、咳痰、膿血便、腹痛等,多見于青壯年。近年來,隨著生活方式和飲食習(xí)慣的改變,我國UC 發(fā)病率逐年上升,主要與遺傳、感染、環(huán)境和免疫有關(guān)[8-9]。中醫(yī)認(rèn)為UC 屬“久痢”范疇,大腸濕熱內(nèi)蘊(yùn),氣血搏結(jié)壅滯,熱灼腸絡(luò),可見便膿血;氣血升降不利,大腸傳導(dǎo)失司,可見腹痛、腹瀉。濕熱型UC 是最常見的UC 證型,但目前相關(guān)的動物模型研究較少。因此本研究在DSS 誘導(dǎo)UC 小鼠模型的基礎(chǔ)上,加以濕熱環(huán)境以及高脂高糖飲食等飼養(yǎng)條件共同建立濕熱型UC 小鼠模型,結(jié)果發(fā)現(xiàn)濕熱型UC 小鼠模型比常規(guī)DSS 誘導(dǎo)UC 模型小鼠DAI 評分更高,且出現(xiàn)明顯膿血便、大便腥臭和肛溫升高等濕熱表現(xiàn),表明濕熱型UC 小鼠模型建立成功。

      目前UC 的一線臨床用藥主要為5-氨基水楊酸(5-ASA)類藥物,但存在治療效果有限以及治療周期長等問題,若加用激素治療則在激素依賴性風(fēng)險的同時造成腸道菌群紊亂[10],而平衡腸道菌群正是UC 近年來的研究熱點(diǎn)。FMT 是對中藥金汁繼承和創(chuàng)新而來,研究表明FMT 是一種有效的腸道微生物穩(wěn)態(tài)干預(yù)手段,可改善腸道炎癥,且鮮少有不良反應(yīng)的報道[11]。Costello 等[12]研究發(fā)現(xiàn),采用厭氧制備供體FMT 灌腸治療8 周可明顯在不使用激素藥物的情況下緩解UC,不良反應(yīng)的總發(fā)生率為6.85%。本研究初步評估了金汁FMT 對濕熱型UC 小鼠模型腸道炎癥的作用,發(fā)現(xiàn)金汁FMT 干預(yù)后,小鼠體質(zhì)量、大便性狀以及便血程度有了明顯好轉(zhuǎn),這與周瑞等[13]的研究結(jié)果一致,表明金汁FMT 對濕熱型UC 有較好療效。同時本研究發(fā)現(xiàn)金汁FMT 的療效指數(shù)約為50.61%,顯著高于5-ASA 治療組,過去的研究表明金汁FMT 與5-ASA 類藥物在降低UC 小鼠的DAI 指數(shù)方面無明顯差距[14],這可能與金汁性苦寒,清熱涼血效力較強(qiáng),治療濕熱型UC 符合中醫(yī)辨證論治的原則,因而比5-ASA 類藥物療效更佳。

      UC 的病理學(xué)特征為炎性CD4+細(xì)胞浸潤腸道,主要為輔助性T 細(xì)胞Th1 和Th17 細(xì)胞,且伴隨著Th2 細(xì)胞數(shù)量增加和調(diào)節(jié)T 細(xì)胞(Treg)等免疫抑制細(xì)胞數(shù)量的減少[15]。CD4+T 細(xì)胞介導(dǎo)的遲發(fā)性超敏反應(yīng),導(dǎo)致Th1 和Th2 細(xì)胞亞群免疫調(diào)節(jié)失衡,促進(jìn)UC 發(fā)生發(fā)展[16]。INF-γ 和IL-2 由Th1 細(xì)胞分泌,IL-4 由Th2 細(xì)胞分泌,其血清水平與UC 病情程度成正比[17-18]。Th17 細(xì)胞和Treg 細(xì)胞與UC 發(fā)展也有關(guān)聯(lián),其中Th17 細(xì)胞分泌IL-17,而UC 患者血清和腸黏膜中IL-17A 水平顯著升高,Treg 細(xì)胞則起關(guān)鍵性抗炎和免疫調(diào)節(jié)作用[19]。本研究中濕熱型UC小鼠結(jié)腸組織INF-γ、IL-2、IL-4 和IL-17 水平上升,TGF-β 和IL-10 水平降低,而經(jīng)金汁FMT 治療后這些炎性細(xì)胞因子表達(dá)水平趨于正常,這與翁劍鋒等[20]的研究結(jié)果類似,表明金汁FMT 能夠調(diào)節(jié)CD4+T 細(xì)胞相關(guān)促炎、抗炎因子水平,降低UC 小鼠結(jié)腸組織炎性反應(yīng),推測可能與調(diào)控平衡Th1/Th2以及Th17/Treg 比例,介導(dǎo)機(jī)體免疫反應(yīng)相關(guān)。

      綜上所述,金汁FMT 對濕熱型UC 小鼠治療效果優(yōu)于5-ASA 藥物,可改善其結(jié)腸病理狀況,降低濕熱型UC 小鼠DAI 評分,調(diào)控結(jié)腸組織INF-γ、IL-2、IL-4 和IL-17、TGF-β 和IL-10 水平,改善結(jié)腸組織炎性反應(yīng),推測可能與調(diào)控平衡Th1/Th2以及Th17/Treg 比例,介導(dǎo)機(jī)體免疫反應(yīng)相關(guān)。

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