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      不同葡萄品種灰霉病抗性鑒定及褪黑素抗病機(jī)理初探

      2024-04-17 01:01:30王憲璞代瑛姿郭宏揚(yáng)楊志峰許麗麗
      核農(nóng)學(xué)報(bào) 2024年4期
      關(guān)鍵詞:巨峰灰霉病侵染

      王憲璞 代瑛姿 郭宏揚(yáng) 楊志峰 許麗麗

      (石河子大學(xué)農(nóng)學(xué)院,特色果蔬栽培生理與種質(zhì)資源利用兵團(tuán)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,新疆 石河子 832003)

      葡萄(VitisViniferaL.)是世界四大水果之一,也是重要的經(jīng)濟(jì)作物,栽培面積和產(chǎn)量逐年遞增,截至2022 年,我國(guó)葡萄栽培面積位居世界第三[1]。隨著栽培面積的不斷擴(kuò)大,葡萄病害日益嚴(yán)重,其中灰霉病是嚴(yán)重危害我國(guó)葡萄產(chǎn)業(yè)的主要病害之一,病原菌可侵染葡萄全株,造成大量減產(chǎn),嚴(yán)重威脅果農(nóng)收益[2]。

      葡萄種質(zhì)資源大致可分為東亞種群、美洲種群、歐洲種群和特殊類型的圓葉種群[3],其中東亞種群灰霉病抗性較強(qiáng),尤其以中國(guó)野生葡萄種質(zhì)資源抗性最高[4],其次是美洲種群和圓葉種群,歐洲種群抗性最低,歐亞雜交種抗性居于歐洲種群與美洲種群之間。Gabler 等[5]對(duì)102 個(gè)葡萄品種果實(shí)接種灰霉病病原菌(Botrytiscinerea)后發(fā)現(xiàn),僅11 個(gè)品種對(duì)灰霉菌表現(xiàn)為高抗,除皇帝和秋黑表現(xiàn)中等抗性外,其余歐洲葡萄品種均易感病。任志華等[6]對(duì)31 個(gè)葡萄品種葉片進(jìn)行灰霉病抗性鑒定,其中歐亞種左優(yōu)紅等抗性較強(qiáng),歐洲品種無(wú)核白雞心等抗性較差。Rahman 等[7]接種了81 個(gè)葡萄品種葉片,發(fā)現(xiàn)雷司令和黑比諾表現(xiàn)高感,火焰無(wú)核表現(xiàn)感病,刺葡萄紫秋和巨玫瑰表現(xiàn)高抗。

      目前,葡萄灰霉病防治多以化學(xué)手段為主,如噴施殺菌劑咯菌腈、唑醚·氟酰胺和寡雄腐霉等,具有操作簡(jiǎn)便和高效經(jīng)濟(jì)的特點(diǎn)。然而,長(zhǎng)期使用化學(xué)藥劑嚴(yán)重威脅著果園生態(tài)環(huán)境和食品安全,隨著病原菌發(fā)生耐藥性變異,殺菌劑濫用問(wèn)題也日益嚴(yán)峻。近年來(lái)有研究表明,果實(shí)內(nèi)源次生代謝活性物質(zhì)(如苯丙素、白藜蘆醇和木質(zhì)素)可以激活植物防御信號(hào)通路,抵抗病原菌侵染,但其防治效果受多方面因素影響,目前仍處于研究利用的初期階段[8]。褪黑素(melatonin,MT)于1958 年在牛松果腺中被發(fā)現(xiàn),又名美拉酮寧、抑黑素、松果腺素,化學(xué)名稱為N-乙酰基-5-甲氧基色胺(N-acetyl-5-methoxytryptamine)[9]。近年來(lái),MT 在生物脅迫中的作用受到廣泛關(guān)注。例如用不同濃度MT灌溉蘋(píng)果根系,提高了其抗褐斑病能力[10];MT 處理誘導(dǎo)了擬南芥(煙草)致病相關(guān)基因的表達(dá),暗示了MT是植物體防御病原體的信號(hào)分子[11-13]。此外,MT能誘導(dǎo)依賴水楊酸(salicylic acid,SA)和乙烯的相關(guān)基因的表達(dá)[14],通過(guò)茉莉酸(jasmonic acid,JA)、乙烯和一氧化氮信號(hào)途徑,協(xié)調(diào)合作抵抗病原菌[15-16]。但目前,有關(guān)MT 調(diào)控葡萄灰霉病抗性的研究報(bào)道較少,關(guān)鍵抗性機(jī)理尚不明確。

      因此,本研究以10 個(gè)新疆主栽葡萄品種為試材,分別在果實(shí)及葉片中接種葡萄灰霉病病原菌Botrytis cinerea,通過(guò)病情嚴(yán)重度與綜合指標(biāo)評(píng)價(jià)其灰霉病抗性;通過(guò)施用外源褪黑素研究總酚等次生代謝物在褪黑素誘導(dǎo)葡萄果實(shí)抗灰霉病中的作用。研究旨在揭示褪黑素提高葡萄對(duì)灰霉病菌抗性的生理機(jī)制,從而為褪黑素提高葡萄抗灰霉病的田間應(yīng)用提供數(shù)據(jù)支撐,也為發(fā)掘、利用優(yōu)質(zhì)抗病種質(zhì)提供理論依據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1 試驗(yàn)材料

      灰葡萄孢菌株為西北農(nóng)林科技大學(xué)葡萄酒學(xué)院惠贈(zèng)。供試材料取自新疆主栽葡萄品種。參試葉片來(lái)自兩年生盆栽葡萄扦插苗,待植株具20 片功能葉時(shí)噴施孢子懸浮液。參試果實(shí)取自5 年生露地籬架式葡萄,待果實(shí)完全成熟后噴施孢子懸浮液。參試葡萄品種及其遺傳背景見(jiàn)表1。

      表1 參試葡萄品種信息表Table 1 Information of grape variety tested

      1.2 材料處理

      將活化的B.cinerea接種在馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potato dextrose agar,PDA)培養(yǎng)皿中,22 ℃恒溫暗培養(yǎng)7 d,用無(wú)菌水沖洗培養(yǎng)基,無(wú)菌脫脂棉過(guò)濾后收集孢子懸浮液,室溫儲(chǔ)藏(當(dāng)天使用)。將孢子懸浮液均勻噴施在參試葡萄葉片上,直至葉片表面見(jiàn)水珠滴下,每個(gè)品種設(shè)置10 株重復(fù);對(duì)照為相同體積無(wú)菌水,處理方式同上。每隔5 d處理一次,15 d后采集葉片樣品進(jìn)行抗性理化指標(biāo)測(cè)定。

      采集距新梢頂端性狀一致、長(zhǎng)勢(shì)良好且無(wú)病蟲(chóng)害的3~5 片葉,無(wú)菌水沖洗后吸干多余水分,使用經(jīng)B.cinerea孢子懸浮液濕潤(rùn)的脫脂棉處理葉片陽(yáng)面。各參試品種試驗(yàn)組及對(duì)照組均隨機(jī)選取2片性狀一致的葉片,每2 d處理一次,采用十字交叉法測(cè)量病斑直徑并計(jì)算病斑面積大小。每個(gè)處理組設(shè)置3個(gè)生物學(xué)重復(fù)。

      隨機(jī)采集成熟期葡萄果穗進(jìn)行室內(nèi)離體侵染試驗(yàn),處理方式同上。每個(gè)品種設(shè)置10穗重復(fù)。

      1.3 測(cè)定方法

      1.3.1 葉片指標(biāo)測(cè)定 目視法觀察葉片絨毛覆蓋率;YMJ-A型葉面積儀(山東恒美電子科技有限公司)測(cè)定葉片葉面積;480-505D型數(shù)顯外徑千分尺(桂林量具刃具有限責(zé)任公司)測(cè)量葉片厚度;稱重法計(jì)算葉片相對(duì)含水量:樣品相對(duì)含水量=(鮮重-干重)/鮮重×100%;HM-YA型葉綠素測(cè)定儀(山東恒美電子科技有限公司)測(cè)定葉片葉綠素含量;蠟質(zhì)含量測(cè)定參考Jetter 等[17]的方法;葉片電導(dǎo)率測(cè)定參照趙世杰等[18]的方法;丙二醛含量測(cè)定采用試劑盒法(索萊寶,北京)。

      1.3.2 果實(shí)指標(biāo)測(cè)定 DS-303P型電子天平(廈門(mén)金河源科技有限公司)測(cè)量葡萄果實(shí)單果重;AK002B 型手持式糖度儀(深圳測(cè)友科技有限公司)測(cè)定可溶性固形物(total soluble solid,TSS)含量;LX-A 型水果硬度計(jì)(溫州韋度量具儀器有限公司)測(cè)定果實(shí)硬度;果實(shí)果膠含量測(cè)定參考馬麗等[19]的方法;總酚含量和活性氧清除酶類活性測(cè)定采用試劑盒法(索萊寶,北京)。

      1.3.3 基因表達(dá)水平鑒定 采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR(quantitative real-time PCR,qRT-PCR)鑒定基因表達(dá)水平。使用FastPure Plant Total RNA Isolation Kit 試劑盒(RC401,諾唯贊,南京)提取葡萄總RNA;使用HiScriptⅢ RT SuperMix for qPCR(R323,諾唯贊,南京)合成cDNA 第一鏈;利用Primer 5.0 軟件設(shè)計(jì)特異性定量引物,以β-Actin作為內(nèi)參基因;數(shù)據(jù)分析采用2-ΔΔCT法。qRT-PCR引物序列見(jiàn)表2。

      表2 抗氧化酶基因引物序列Table2 Primers of the related genes of antioxidants enzymes

      1.3.4 灰霉病抗性綜合評(píng)價(jià) 利用模糊數(shù)學(xué)中隸屬函數(shù)的方法,采用公式(1)進(jìn)行原始數(shù)據(jù)轉(zhuǎn)化[20],使用SPSS 27.0 軟件進(jìn)行因子分析;采用公式(2)計(jì)算各綜合指標(biāo)的權(quán)重;采用公式(3)計(jì)算各葡萄品種綜合抗病能力得分:

      Uij表示i品種j指標(biāo)的灰霉病抗性隸屬函數(shù)值,Xij表示i品種j指標(biāo)的綜合系數(shù),Xjmax表示所有品種中j指標(biāo)的最大值,Xjmin表示所有品種中j指標(biāo)的最小值,i表示某個(gè)葡萄品種,j表示某個(gè)抗性指標(biāo)[21]。

      Wj表示第j個(gè)綜合指標(biāo)在所有綜合指標(biāo)中的重要程度,Pj為各品種第j個(gè)綜合指標(biāo)的貢獻(xiàn)率。

      D為各品種灰霉病抗性綜合評(píng)價(jià)值。

      1.4 數(shù)據(jù)處理

      參考Tantasawat 等[22]的方法,利用公式(4)計(jì)算病情嚴(yán)重度(disease severity,DS):

      依據(jù)DS 水平設(shè)定葡萄灰霉病抗性分級(jí)標(biāo)準(zhǔn):DS=0 代表免疫;0<DS≤5%代表高抗類型(high resistance,HR);5%<DS≤15%代表抗病類型(resistance,R);15%<DS≤45%代表中抗類型(moderate resistance,MR);45%<DS≤75%代表感病類型(susceptible,S);75%<DS 代表高感類型(high susceptible,HS)。

      設(shè)置3 次生物學(xué)重復(fù)。利用SPSS 24.0 進(jìn)行相關(guān)性分析、隸屬函數(shù)分析和單因素方差分析(analysis of variance,ANOVA),顯著性水平為0.05,使用Origin 2021軟件作圖。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 不同葡萄品種葉片與果實(shí)性狀指標(biāo)測(cè)定

      10 個(gè)葡萄品種基本性狀測(cè)定結(jié)果表明,除巨峰、葡之夢(mèng)和陽(yáng)光玫瑰葉片有絨毛之外,其他均無(wú)絨毛覆蓋;參試葡萄品種葉片面積為51.00~116.87 cm2,其中黃金蜜葉面積最大,巨盛一號(hào)最??;葉片相對(duì)含水量、蠟質(zhì)含量及葉綠素含量分別為66.97%~71.73%、1.31~2.32 mg·g-1和1.00~2.46 mg·g-1,其中葉片含水量種間差異不顯著,巨峰葡萄葉片蠟質(zhì)含量顯著高于黃金蜜,為2.32 mg·g-1,黃金蜜葡萄葉片蠟質(zhì)與葉綠素含量均低于其他品種;果實(shí)單果重種間差異較大,其中巨盛一號(hào)、巨峰、美人指葡萄單果重達(dá)12.13、11.76和11.40 g,顯著高于其他品種;巨峰葡萄果實(shí)可溶性固形物、硬度與果膠含量低于其他品種,為16.81%、3.17 kg·cm-1和0.57 mg·g-1(表3)。

      表3 不同葡萄品種葉片與果實(shí)基本性狀Table 3 Trait index of leaves and fruits in different grape cultivars

      2.2 不同葡萄品種灰霉病抗性水平鑒定

      接種B.Cinerea10 d 后,多數(shù)參試品種果實(shí)和葉片均發(fā)生不同程度褐變,抗性水平差異顯著(表4、5)。巨峰和巨盛一號(hào)葡萄病情嚴(yán)重度均未達(dá)15%,接種10 d 后,果實(shí)病情嚴(yán)重度分別為12.68%和8.94%,葉片病情嚴(yán)重度分別為6.00%和12.00%,均屬抗病類型;黃金蜜、葡之夢(mèng)、夏黑、美人指、維多利亞接種后表現(xiàn)較穩(wěn)定,第10 天果實(shí)病情嚴(yán)重度分別為31.12%、32.16%、24.80%、34.37%、32.71%,葉片病情嚴(yán)重度分別為30.00%、14.00%、25.33%、24.00%、25.33%,除葡之夢(mèng)葉片表現(xiàn)為抗病類型外其他均表現(xiàn)為中抗類型;陽(yáng)光玫瑰、克瑞森和藍(lán)寶石在灰霉菌孢子懸浮液處理10 d 后,除藍(lán)寶石果實(shí)病情嚴(yán)重度為36.17%,表現(xiàn)為中抗類型外,其葉片和其他品種的果實(shí)、葉片的病情嚴(yán)重度均大于50%,表現(xiàn)為感病類型。

      表5 不同品種葡萄果實(shí)灰霉病抗性類型Table 5 Resistance classification of different grape varieties to Botrytis cinerea

      2.3 不同葡萄品種灰霉病抗性綜合評(píng)價(jià)

      為探究不同葡萄品種葉片和果實(shí)基本性狀及接種10 d 后病情嚴(yán)重度(采用數(shù)值的相反數(shù)表示抗性)之間的相關(guān)性,采用隸屬函數(shù)對(duì)參試葡萄品種綜合抗性賦分,綜合評(píng)價(jià)其灰霉病抗性。對(duì)不同葡萄品種12個(gè)相互關(guān)聯(lián)的單項(xiàng)指標(biāo)進(jìn)行主成分分析和變量因子分析,結(jié)果表明,葉片面積與葉片蠟質(zhì)含量和單果重顯著負(fù)相關(guān);葉片絨毛覆蓋率與蠟質(zhì)含量顯著正相關(guān),與葡萄果實(shí)果膠含量顯著負(fù)相關(guān);葉片厚度與蠟質(zhì)含量及葉綠素含量顯著正相關(guān);葉片蠟質(zhì)含量與葉綠素含量呈顯著正相關(guān),而與果膠含量顯著負(fù)相關(guān);葉片病情嚴(yán)重度負(fù)數(shù)與果實(shí)病情嚴(yán)重度負(fù)數(shù)顯著正相關(guān)(表6)。前4 個(gè)綜合評(píng)價(jià)指標(biāo)的累計(jì)貢獻(xiàn)率高達(dá)87.895%,綜合指標(biāo)貢獻(xiàn)率分別為48.326%、16.989%、12.834%和9.746%(表7);計(jì)算各葡萄品種綜合指標(biāo)隸屬函數(shù)值、權(quán)重及綜合得分,其中巨峰的D值最大,而白色葡萄黃金蜜與紅色葡萄克瑞森的D值僅為0.10 和0.14,說(shuō)明兩者綜合抗性最弱(表8)。

      表6 不同葡萄品種各個(gè)指標(biāo)之間的相關(guān)性分析Table 6 Correlation analysis of various indicators of different grape varieties

      表7 不同葡萄品種主要指標(biāo)特征值、貢獻(xiàn)率及綜合權(quán)重分析Table 7 Analysis of characteristic value,contribution rate and comprehensive weight of main indexes of different grape varieties

      表8 不同葡萄品種的綜合系數(shù)、隸屬函數(shù)值、D值Table 8 Comprehensive index,membership funcition value,D value of different grape varieties

      2.4 B.cinerea侵染對(duì)不同葡萄品種葉片相對(duì)電導(dǎo)率的影響

      由以上隸屬函數(shù)分析可知,10個(gè)葡萄品種主要指標(biāo)特征值均為葉片的性狀指標(biāo),因此測(cè)定B.cinerea侵染前后葡萄葉片中滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)含量的變化可為進(jìn)一步反映B.cinerea對(duì)葡萄生理功能的影響。由圖1-A可知,B.cinerea未侵染葉片時(shí),所有葡萄品種葉片相對(duì)電導(dǎo)率最高為0.78,最低為0.70,B.cinerea侵染葉片后,不同抗性品種的葉片相對(duì)電導(dǎo)率均出現(xiàn)了不同程度的增長(zhǎng),其中維多利亞葡萄葉片相對(duì)電導(dǎo)率增加了16.21%,差異達(dá)極顯著水平,陽(yáng)光玫瑰、葡之夢(mèng)、克瑞森差異達(dá)顯著水平,其他參試品種差異不顯著。B.cinerea侵染葡萄葉片,造成所有葡萄品種葉片中超氧陰離子產(chǎn)生速率程現(xiàn)不同程度的增加(圖1-B)。僅葡之夢(mèng)、陽(yáng)光玫瑰、克瑞森和藍(lán)寶石在灰葡萄孢侵染后表現(xiàn)出與對(duì)照組相比差異極顯著,其葉片中產(chǎn)生速率分別為30.43、34.47、34.48和33.82 nmol·min-1·g-1,而巨峰葡萄葉片中產(chǎn)生速率無(wú)顯著差異。同樣在B.cinerea侵染葡萄葉片后,所有葡萄品種葉片中丙二醛含量均增加,其中,陽(yáng)光玫瑰和克瑞森葡萄葉片丙二醛含量分別增加了146.09%和172.45%,而巨峰、夏黑和維多利亞葡萄葉片丙二醛含量分別增加了22.28%、22.24%和30.02%,與對(duì)照組相比無(wú)顯著差異,其余參試品種與對(duì)照組相比,葉片丙二醛含量差異均達(dá)極顯著水平(圖1-C)。

      圖1 不同品種葡萄品種葉片電導(dǎo)率等含量測(cè)定Fig.1 Determination of electrical conductivity and other contents in grape leaves of different varieties

      B.cinerea未侵染葡萄葉片時(shí),巨峰葡萄葉片中游離脯氨酸含量為49.77 μg·g-1,在所有品種葉片中含量最高,且在B.cinerea侵染后,其含量增加至57.28 μg·g-1,同樣高于其他品種。除維多利亞葡萄葉片中游離脯氨酸含量侵染前后無(wú)顯著差異外,其他所有品種葉片均有顯著或極顯著性差異(圖1-D)。

      2.5 外源MT 對(duì)巨峰和克瑞森葡萄B.cinerea 抗性的影響

      為了探索B.cinerea感染后,巨峰和克瑞森葡萄果實(shí)多酚等氧化物質(zhì)代謝的變化及外源MT 抵御B.cinerea侵染的作用,測(cè)定了葡萄總酚含量、總抗氧化能力、苯丙氨酸淀粉酶和多酚氧化酶活性(表9)。結(jié)果表明,接種B.cinerea10 d 后,巨峰和克瑞森葡萄果實(shí)4 項(xiàng)指標(biāo)分別降低了60.27%、47.20%、54.00%、62.43%和15.83%、51.24%、17.04%、48.94%,且指標(biāo)水平在接種B.cinerea前后差異顯著。

      表9 葡萄果實(shí)總酚含量、總抗氧化能力、多酚氧化酶、苯丙氨酸解胺酶活性測(cè)定Table 9 Content of total phenols,total antioxidant capacity,phenylalanine amylase and polyphenol oxidase activity in grapes

      與B.cinerea侵染10 d 的果實(shí)相比,外源MT 總體上提高了B.cinerea侵染10天后果實(shí)的總抗氧化能力、苯丙氨酸淀粉酶和多酚氧化酶活性。與對(duì)照相比,MT緩解了B.cinerea對(duì)果實(shí)的傷害,巨峰葡萄果實(shí)總酚、總抗氧化能力、苯丙氨酸淀粉酶活性分別增加了11.11%、23.73%和39.39%,呈顯著差異,克瑞森果實(shí)經(jīng)MT 處理后,總酚、多酚氧化酶、苯丙氨酸淀粉酶活性分別增加了195.32%、89.03%和34.55%(表9)。

      2.6 外源MT對(duì)B.cinerea侵染后葡萄果實(shí)VvCu/Zn-SOD1a等基因表達(dá)量的影響

      為進(jìn)一步探究外源MT 對(duì)受B.cinerea侵染果實(shí)活性氧清除相關(guān)基因表達(dá)水平的影響,通過(guò)qRT-PCR技術(shù)并分別檢測(cè)了B.cinerea處理0 d、10 d 及MT+B.cinerea處理10 d 后果實(shí)VvCu/Zn-SOD1a等基因的表達(dá)水平。

      巨峰和克瑞森葡萄在受B.cinerea侵染10 d后,果實(shí)VvCu/Zn-SOD1a等基因表達(dá)量均顯著或極顯著降低,而在外源MT+B.cinerea處理后,所有基因表達(dá)水平又有所升高(圖2)。其中B.cinerea處理10 d后,巨峰和克瑞森葡萄果實(shí)中VvCu/Zn-SOD1a基因表達(dá)量下降幅度最大,分別降低96.86%和97.02%;B.cinerea浸染的巨峰和克瑞森葡萄果實(shí)經(jīng)外源MT 處理后,VvCu/Zn-SOD1a基因表達(dá)量顯著上調(diào),分別升高了378.85%和1 383.60%,與B.cinerea處理差異顯著。B.cinerea處理10 d后,兩個(gè)葡萄果實(shí)中VvPPO和VvPAL1的表達(dá)量分別降低81.75%、68.45%和83.28%、94.58%,MT+B.cinerea處理下VvPAL1基因表達(dá)量較前處理差異顯著,分別升高134.83%和82.22%。葡萄花青素合成通路中關(guān)鍵酶合成基因VvCHS3基因表達(dá)量下降幅度最小,在兩個(gè)葡萄品種中分別降低26.59%和59.18%,添加MT 后其表達(dá)量又分別升高12.65%和46.39%,除巨峰果實(shí)中VvCHS3 和VvPPO在B.cinerea浸染下后經(jīng)MT處理的表達(dá)量差異不顯著外,其他均差異顯著或極顯著。

      圖2 外源MT對(duì)B.cinerea感染10 d后巨峰和克瑞森葡萄活性氧清除相關(guān)基因表達(dá)水平的影響Fig.2 Effect of exogenous MT on the expression of active oxygen removing related genes in Kyoho and Crimson grape which infected with B.cinerea for 10 days

      3 討論

      3.1 葡萄種間灰霉病抗性差異

      葡萄灰霉病抗性多受遺傳因素影響,屬多基因控制的數(shù)量性狀,群體間差異顯著。本研究發(fā)現(xiàn),部分新疆主栽品種灰霉病抗性差異顯著,結(jié)合隸屬函數(shù)進(jìn)行多表型綜合評(píng)價(jià)發(fā)現(xiàn),歐美種葡萄抗性強(qiáng)于歐亞種,并以巨峰葡萄抗性最強(qiáng),黃金蜜葡萄抗性最弱。田園園[23]結(jié)合病原菌侵染前后葉片、果實(shí)灰霉病抗性鑒定及防御酶活性、信號(hào)分子含量變化趨勢(shì),分別對(duì)23 份葡萄品種(優(yōu)系)進(jìn)行了灰霉病抗性評(píng)價(jià),其中以歐美種的巨峰優(yōu)系葡萄抗性最強(qiáng),感病品種以克瑞森、紅地球葡萄等歐亞種居多;任志華[24]通過(guò)葉片接種表型鑒定和顯微結(jié)構(gòu)觀察,對(duì)31 個(gè)葡萄品種以及雜交后代群體進(jìn)行了灰霉病抗性鑒定,發(fā)現(xiàn)歐美種葡萄對(duì)灰霉病抗性表現(xiàn)抗病,而歐亞種葡萄普遍表現(xiàn)感病,與本研究觀點(diǎn)基本一致。Hou等[25]研究發(fā)現(xiàn)葡萄品種雙優(yōu)對(duì)葡萄灰霉病的抗性較高,而紅地球葡萄對(duì)葡萄灰霉病的抗性較低,提出不同葡萄品種對(duì)灰霉病菌感染的抵抗力受不同的基因型影響。

      3.2 灰霉病誘導(dǎo)植物細(xì)胞膜透性升高,滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)積累

      細(xì)胞膜透性是反映細(xì)胞膜損傷的主要指標(biāo)之一[26],而植株電導(dǎo)率在一定程度上反映了植物細(xì)胞膜透性受逆境傷害的程度[27],可作為葡萄品種抗灰霉病特性的重要指標(biāo)之一。本研究中葡之夢(mèng)、陽(yáng)光玫瑰、克瑞森和維多利亞經(jīng)過(guò)灰霉病菌處理之后,植物葉片電導(dǎo)率出現(xiàn)顯著或極顯著變化,細(xì)胞膜透性顯著提高,而巨峰、夏黑、巨盛一號(hào)在處理前后膜透性變化不顯著,由此說(shuō)明葡萄品種抗病性越弱,植物電導(dǎo)率變化越顯著。丙二醛(MDA)是植物細(xì)胞膜脂過(guò)氧化的重要產(chǎn)物,逆境脅迫導(dǎo)致植物活性氧水平升高,引起膜脂過(guò)氧化,造成MDA 積累,MDA 水平可直接反映逆境傷害的程度[28]。本研究發(fā)現(xiàn),經(jīng)過(guò)病菌接種試驗(yàn),所有葡萄品種葉片中MDA 含量全部增加,其中陽(yáng)光玫瑰和克瑞森等葡萄葉片MDA 含量顯著增加,而巨峰、夏黑、維多利亞等抗病葡萄葉片MDA 含量與對(duì)照組相比無(wú)顯著差異。這可能是病害脅迫下細(xì)胞膜破壞產(chǎn)生,從而導(dǎo)致葉片MDA 積累所致。B.cinerea侵染導(dǎo)致植物葉片組織內(nèi)活性氧水平升高,其產(chǎn)生速率受病害脅迫程度和時(shí)間的影響。以上3 個(gè)指標(biāo)均與抗性程負(fù)相關(guān)性,而在逆境條件下,植物體內(nèi)滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)游離脯氨酸含量顯著增加,抗性強(qiáng)的品種往往積累較多的脯氨酸。由圖1 可知,B.cinerea侵染后,大部分葡萄品種葉片MDA 和游離脯氨酸含量顯著或極顯著上調(diào),而相對(duì)電導(dǎo)率及產(chǎn)生速率僅在個(gè)別葡萄品種葉片中出現(xiàn)差異。Govrin 等[29]指出,病害和許多其他脅迫都會(huì)導(dǎo)致活性氧生產(chǎn),對(duì)植物葉片細(xì)胞膜產(chǎn)生傷害。這意味著B(niǎo).cinerea在侵染感病葡萄如陽(yáng)光玫瑰、克瑞森葉片時(shí),極易破壞其細(xì)胞膜透性,造成離子失衡、MDA 迅速積累、產(chǎn)生速率升高,打破細(xì)胞內(nèi)部氧化還原平衡狀態(tài),加快細(xì)胞死亡,而抗病葡萄葉片如巨峰等則在細(xì)胞組織中積累較多的游離脯氨酸,可以很好地緩沖由B.cinerea侵染引起的細(xì)胞內(nèi)外滲透壓不平衡。

      3.3 MT通過(guò)調(diào)控活性氧平衡緩解B.cinerea對(duì)葡萄的危害

      病原菌侵染后通過(guò)激活宿主細(xì)胞免疫抗性響應(yīng),誘導(dǎo)活性氧(ROS)大量積累,ROS 代謝失衡則對(duì)細(xì)胞膜系統(tǒng)造成嚴(yán)重?fù)p傷,MT的重要的特性是它的抗氧化活性,即通過(guò)清除細(xì)胞產(chǎn)生的多余自由基,增強(qiáng)抗氧化能力,從而提高植株的抗逆性[30-31]。本研究表明,MT可緩解B.cinerea對(duì)葡萄果實(shí)的脅迫:B.cinerea侵染后,葡萄果實(shí)總酚含量驟減,且抗氧化酶相關(guān)基因Cu/Zn-SOD1a、VvPPO等表達(dá)量也顯著或極顯著下調(diào),而外源MT處理后,除巨峰葡萄VvCH3和VvPPO表達(dá)量無(wú)顯著差異,其他活性氧清除相關(guān)基因表達(dá)量均有不同程度上調(diào)(圖2),表明外源MT 可以降低生物脅迫下植物體內(nèi)過(guò)氧化物含量的積累,緩解細(xì)胞膜脂過(guò)氧化。Mirshekari 等[21]也證實(shí)MT 處理可以調(diào)控超氧化物酶等抗氧化酶活性,進(jìn)而降低ROS 的積累。上述研究均表明,MT可以提高葡萄植株內(nèi)總酚含量、抗氧化酶,從而清除植物體內(nèi)由生物脅迫產(chǎn)生的自由基,提高葡萄對(duì)灰霉病的抗性。

      葡萄防御關(guān)鍵基因VvPAL1、VvPPO可通過(guò)誘導(dǎo)苯丙烷代謝相關(guān)酶的活性,促進(jìn)類黃酮,酚類和木質(zhì)素等抗真菌化合物的積累,提高果實(shí)病抗性水平。Xu等[32]研究表明,葡萄受病原菌TalaromycesrugulosusO1侵染后PPO 和PAL 活性上升,提高了對(duì)病原菌的抗性。盡管本研究發(fā)現(xiàn)B.cinerea侵染10 d 后,VvPAL1、VvPPO活性顯著降低、表達(dá)水平顯著或極顯著降低,經(jīng)外源MT 處理后兩種防御酶活性有一定程度提高,增強(qiáng)了葡萄對(duì)病原菌的抗性。T.rugulosus與B.cinerea侵染前后,VvPPO 和VvPAL 活性變化趨勢(shì)存在差異,這可能與兩種病原菌致病機(jī)理和侵染時(shí)期有關(guān)。

      4 結(jié)論

      本研究明確了10 個(gè)新疆主栽葡萄品種的灰霉病抗性水平,揭示了MT 調(diào)控葡萄灰霉病抗性的生理基礎(chǔ)。部分葡萄品種灰霉病抗性差異顯著,其中以巨峰葡萄抗性最強(qiáng),黃金蜜葡萄抗性最弱。B.cinerea誘導(dǎo)葡萄細(xì)胞膜透性升高,滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)積累。MT可通過(guò)抑制植物體內(nèi)過(guò)氧化物含量的積累,緩解細(xì)胞膜脂過(guò)氧化,進(jìn)而提高葡萄灰霉病抗性。

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