周曉寧,方梅霞,何小梅,聶慶華*,張細權(quán)
(1.華南農(nóng)業(yè)大學 動物科學學院,廣東 廣州 510642;2.廣東省農(nóng)業(yè)動物基因組學與分子育種重點實驗室,廣東廣州 510642;3.暨南大學 醫(yī)學院,廣東 廣州 510632)
HoxA10是同源框基因(HomeoBox,Hox) 亞類腹 B(AbdB)基因成員之一[1],在生殖與胚胎著床、發(fā)育等方面有重要作用。HoxA10基因敲除小鼠的子宮輸卵管連接處消失,子宮近側(cè)25%部分呈輸卵管狀狹窄卷曲[2]。Satokata等[3]的研究證實了這一點,HoxA10(–/–) 小鼠可以存活,但由于子宮內(nèi)膜缺乏胚胎著床環(huán)境,子宮內(nèi)膜不能進入容受狀態(tài),導致胚胎死亡,表現(xiàn)為不孕。雄性動物的研究也顯示出生殖障礙。Benson 等[4]發(fā)現(xiàn),HoxA10(–/–) 突變雄鼠出現(xiàn)雙側(cè)隱睪和副性器官以及精子發(fā)育障礙等形態(tài)異常,可見,HoxA10基因在生殖器官的完整發(fā)育以及胚胎著床過程中有重要的調(diào)控作用,是動物繁殖性狀的重要候選基因。近年來,對HoxA基因的研究主要集中在對人和嚙齒類的研究中。人HoxA10基因定位于染色體7p15.3[2]。在成人子宮內(nèi)膜,HoxA10的表達依賴于月經(jīng)周期,是子宮蛻膜化過程的一個關鍵因素[5]。李紅等[6]發(fā)現(xiàn),HoxA10基因在正常育齡婦女和不明原因不孕患者的增殖早、晚期及分泌早期,子宮內(nèi)膜腺上皮和間質(zhì)均有表達,相互之間無顯著差異,但在分泌中、晚期,正常育齡婦女子宮內(nèi)膜的腺體和間質(zhì)HoxA10基因mRNA有顯著高表達。關于嚙齒類的研究[2]表明,小鼠HoxA10基因定位于6號染色體。在小鼠胚胎發(fā)育過程中,HoxA10基因在苗勒管和成熟子宮內(nèi)膜中均有表達[7]。桂耀庭等[8]發(fā)現(xiàn),在正常人和隱睪癥患者的睪丸組織中,HoxA10均有表達,但是與正常人相比,HoxA10基因在隱睪癥睪丸組織的表達顯著降低。HoxA10基因在生殖與胚胎著床、發(fā)育等方面有重要的作用, 對HoxA10基因的研究有利于了解豬的繁殖性狀,進而提高豬的繁殖性能。目前對豬HoxA10基因的研究較少[9],對豬HoxA10基因的序列、結(jié)構(gòu)等相關信息都還缺乏研究。筆者在對豬HoxA10基因生物信息學進行分析的基礎上,用RT-PCR、Real-Time PCR等方法,研究該基因的克隆及表達,現(xiàn)將結(jié)果報道如下。
于廣東省農(nóng)業(yè)科學院畜牧研究所隨機選取120日齡長白母豬1頭,放血屠宰后,立即采集垂體、大腦、小腦,丘腦、卵巢、肺、胃、背肌、大腸、腹脂、肝、后肌、淋巴、脾、前肌、腎、輸卵管、小腸、子宮、背膘等組織,-80 ℃保存。子宮組織用于HoxA10基因cDNA序列擴增,所有組織用于基因表達規(guī)律分析。
將人HoxA10基因 cDNA序列(GeneBank NM_153715.3)與豬全基因組序列比對,定位豬HoxA10基因。根據(jù)人HoxA10基因信息及外顯子-內(nèi)含子交接的GT-AG規(guī)則,對豬HoxA10基因進行預測,并對外顯子進行拼接,最終獲得豬HoxA10基因的預測cDNA序列及可能的基因結(jié)構(gòu)。
根據(jù)預測的豬HoxA10基因cDNA序列,共設計了3對引物(表1)。P1用于豬HoxA10基因cDNA序列擴增;qs-hoxa用于該基因各組織表達分析,qs-actin為內(nèi)參基因β-actin引物。所有引物均使用Genetool軟件設計,送由上海生工生物工程有限公司合成。
表1 各引物基本信息Table 1 Descriptions of the 3 primers used in this study
用常規(guī)Trizol方法,抽提豬各組織中總RNA,用 TOYOBO公司的反轉(zhuǎn)錄試劑盒將各組織的總RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA,并以看家基因(β-actin)引物擴增,驗證反轉(zhuǎn)錄是否成功,將反轉(zhuǎn)錄產(chǎn)物-20 ℃保存?zhèn)溆谩R宰訉mcDNA為模板,RT-PCR 擴增HoxA10基因cDNA序列,10 μL反應體系中包括:0.4 μL cDNA、0.25UTaqDNA polymerase (東盛生物)、12.5 pmol P1或P2、5 μL 2×PCR Reaction Mix,其余用ddH2O補齊。PCR反應條件:94 ℃預變性3 min,94 ℃變性30 s,58 ℃退火30 s,32個循環(huán),最后72℃延伸5 min,4 ℃保存。
PCR產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測,并切膠純化后連接至pMD18-T載體,轉(zhuǎn)化至大腸桿菌感受態(tài)細胞,進行克隆測序。
1.5.1 物種間HoxA10基因CDS的同源性分析
登錄NCBI的BLAST程序[10],在GenBank數(shù)據(jù)庫選擇“Nucleotide blast”,將所得到的豬HoxA10基因CDS序列輸入NCBI/Blast軟件的序列輸入框內(nèi),選擇程序“Megablast”進行同源性檢索;采用DNAstar軟件中的MegAlign對豬HoxA10基因CDS序列與 BLAST得到的其他物種的HoxA10基因CDS序列(圖2)進行同源性比對。
1.5.2 蛋白質(zhì)功能預測
采用 ExPASY的 ComputepI/MW 程序和SAPS(statistical analysis of protein sequences),對HoxA10基因蛋白序列的相對分子質(zhì)量、氨基酸組成、等電點進行分析。
采用網(wǎng)上的motif數(shù)據(jù)庫進行motif、結(jié)構(gòu)位點、機構(gòu)功能域功能預測。
1.5.3 9個物種HoxA10基因的系統(tǒng)進化分析
利用MEGA3.1程序,對不同動物HoxA10或pHoxA10基因的核苷酸序列進行BLAST分析,再計算物種間的同源距離,并通過鄰近歸并法構(gòu)建物種間系統(tǒng)發(fā)生樹。
選用SYBR Green PCR Master Mix(TOYOBO,Japan)試劑盒,用 ABI PRISM?7500 Sequence Detection System(Applied Biosystems,F(xiàn)oster City,CA,USA)分析儀對各組織HoxA10基因mRNA豐度進行定量檢測。不同組織的HoxA10基因mRNA拷貝數(shù)使用β-actin作為內(nèi)參進行校正。目的基因熒光定量PCR引物為qs-hoxa,內(nèi)參基因的引物為qsactin。采用20 μL反應體系,其中包括5 μL cDNA模板,10 μL 2 × Q-PCR SYBR Green Mix,0.5 μL的上下游引物,其余用蒸餾水補齊。每個樣本設3個重復,分別使用引物qs-hoxa和qs-actin進行擴增。PCR按 ABI公司提供的程序和優(yōu)化后的退火溫度進行。PCR產(chǎn)物特異性使用溶解曲線判定。每個組織HoxA10基因 mRNA的相對表達量用 2-ΔΔCt表示,其中,ΔCt=目的基因Ct- 內(nèi)參Ct;ΔΔCt=待測樣品中目的基因ΔCt- 參照樣品中目的基因ΔCt(若無參照樣品則選擇ΔCt最大的樣品為參照進行計算,本試驗中以脾臟中目的基因ΔCt為參照) 。
對豬HoxA10基因預測的結(jié)果顯示,HoxA10基因位于豬18號染色體正鏈44195018—44204802,由2個外顯子和1個內(nèi)含子組成,cDNA序列長2 247 bp,預計編碼合成94個氨基酸殘基。RT-PCR結(jié)果顯示,從豬子宮組織中克隆獲得HoxA10基因cDNA長538 bp,包括1個285 bp的開放閱讀框,共編碼合成94個氨基酸殘基(圖1),與預測相同。
圖1 豬HoxA10基因cDNA序列Fig. 1 cDNA sequence of pig HoxA10 gene
2.2.1 物種間HoxA10基因CDS的同源性分析
從NCBI網(wǎng)站收集了9個物種HoxA10基因的CDS及氨基酸序列(表 2)。用 DNAstar軟件中的MegAlign對各序列間的同源性進行分析(表3),發(fā)現(xiàn)豬的CDS與牛的同源性最高,達到94.7%;豬的CDS與人和小鼠的同源性分別為90.9%和90.5%;氨基酸同源性比對顯示,豬與人、牛的氨基酸同源性達到了98.9%,與小鼠的同源性為97.9%。
表2 9個物種HoxA10的蛋白質(zhì)和cDNA序列Table 2 Protein and cDNA sequences of HoxA10 among 9 species
表3 不同物種HoxA10基因CDS序列及氨基酸序列的同源性比較Table 3 Homology of HoxA10 CDS and its amino acid sequences among different species
2.2.2 蛋白質(zhì)功能預測
豬HoxA10蛋白序列的相對分子質(zhì)量、氨基酸組成、等電點的分析結(jié)果顯示,HoxA10蛋白相對分子質(zhì)量為1.15×104,在94個氨基酸殘基中共包含22個強正極性氨基酸(如K、R),9個強負極性氨基酸(如D、E),等電點為10.60,推測為一個堿性氨基酸。
聚類分析顯示,9個物種被劃分為界線清晰的4個類群,狨猴、狒狒、人等靈長類聚為一類,狗和小鼠聚為一類,雞和斑馬魚各自成一類(圖2)。
圖2 9個動物種的系統(tǒng)進化樹Fig.2 Phylogenetic tree among 9 animal species
豬HoxA10基因在很多組織都有表達,其中,前肌的表達量最高,腹脂、后肌、腎、大腸、輸卵管、子宮也有較高的表達,脾、淋巴、肝、小腸的表達較低。另外,垂體、大腦、小腦、丘腦、卵巢、肺、胃、小腸、背肌、背膘等10種組織中,HoxA10的表達很低或無表達。
本試驗中從豬的子宮組織中克隆了HoxA10基因的cDNA,其序列長538 bp,包括一個285 bp的ORF(開放閱讀框),編碼94個氨基酸殘基;144 bp的5'UTR和109 bp的3'UTR;該基因在豬各組織中均有表達,以前肌的表達量最高;其次為腎、子宮、后肌、輸卵管等組織;脾、淋巴、肝、小腸的表達較低;在垂體、大腦、小腦、丘腦、卵巢、肺、胃、小腸、背肌、背膘等組織中基本無表達。HoxA10基因在生殖系統(tǒng)的發(fā)育以及胚胎著床等生殖過程中有重要作用。HoxA10基因敲除的雌性小鼠會出現(xiàn)胚胎著床障礙,雄性小鼠會出現(xiàn)雙側(cè)隱睪和副性器官以及精子發(fā)育障礙等;因此,推測HoxA10基因在胚胎形成過程中參與調(diào)節(jié)泌尿生殖管的發(fā)育,也是維持個體生殖力的重要因素[11]。通過對本試驗獲得的HoxA10序列進行分析,結(jié)果顯示,該基因的 CDS與牛的同源性最高,達到94.7%;與人和小鼠的同源性分別為90.9%、90.5%。聚類分析也顯示,豬與牛的親緣關系最近,與斑馬魚親緣關系較遠。9個物種的HoxA10氨基酸序列系統(tǒng)進化樹也與幾類動物(靈長類、低等哺乳動物、禽類、魚類)的分類學及人類對于動物進化的認識一致;因此,所獲序列為豬HoxA10基因序列,與預測的結(jié)果相同。據(jù)報道,在人和小鼠中,HoxA10基因均有2個轉(zhuǎn)錄本,本試驗中只利用人的其中一種轉(zhuǎn)錄本為參照進行豬HoxA10基因的序列預測。同樣,根據(jù)人HoxA10基因的另一種轉(zhuǎn)錄本進行預測,豬HoxA10基因也與人和小鼠一樣存在另一種轉(zhuǎn)錄本,本課題組擬對此預測結(jié)果進行驗證。
從基因的表達規(guī)律看,HoxA10基因在豬的各組織中分布不是很廣泛,以前肌的表達量最高,腎、子宮、后肌、輸卵管等組織也有較高的表達。Blitek等[12]用促性腺激素誘導豬動情,檢測豬早期妊娠在第10、11、12、15 d中HoxA10基因在子宮內(nèi)膜和孕體中的表達,發(fā)現(xiàn)HoxA10的表達在第12天和第15天均明顯上調(diào),表明HoxA10基因在成年豬的子宮內(nèi)膜是有表達的。Taylor等[7]也發(fā)現(xiàn),在小鼠胚胎發(fā)育過程中,HoxA10基因在苗勒管和成熟子宮內(nèi)膜中均有表達。本研究結(jié)果也顯示,豬HoxA10基因在子宮和輸卵管中也有較高的表達,與人和小鼠等類似。豬HoxA10基因在腎中表達較高,預示該基因參與調(diào)節(jié)泌尿生殖管的發(fā)育。豬HoxA10基因在子宮和輸卵管的較高表達,表明該基因與豬的繁殖性狀有顯著的相關性,可能是影響豬生殖調(diào)控以及與繁殖性狀相關的重要的候選基因。
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英文編輯:羅文翠