文 玉(綜述),李曉燕(審校)
(昆明醫(yī)學(xué)院第一附屬醫(yī)院消化內(nèi)科,昆明 650032)
結(jié)直腸癌是較為常見的惡性腫瘤,發(fā)病率呈逐年上升趨勢。據(jù)統(tǒng)計,世界范圍內(nèi)2007年新增結(jié)直腸癌病例數(shù)為120萬,當(dāng)年因結(jié)直腸癌致死人數(shù)達(dá)60萬[1]。在美國,2010年可能約有569 490人死于癌癥,即每日約有1500人死于癌癥;男性和女性的腫瘤患者在結(jié)直腸癌的發(fā)病率和病死率均位列第三位[2,3]。結(jié)直腸癌在中國也是最常見的惡性腫瘤之一。結(jié)直腸癌發(fā)病率居高不下的原因之一就是缺乏行之有效的早期檢測方法。隨著表觀遺傳學(xué)的發(fā)展,DNA甲基化與腫瘤的關(guān)系是目前研究的熱點。腫瘤的發(fā)生及發(fā)展中存在一系列甲基化水平的改變,因此,對于某些特異性的異常甲基化的檢測,可成為早期診斷腫瘤的特異分子指標(biāo)。
表觀遺傳學(xué)的概念是1942年由Waddington提出的。表觀遺傳學(xué)是指DNA序列不發(fā)生變化,但基因表達(dá)卻發(fā)生了可遺傳的改變。換言之,這種可遺傳的變化是指細(xì)胞內(nèi)除可遺傳信息外的其他可遺傳物質(zhì)的改變,且這種改變在發(fā)育和細(xì)胞增殖中能穩(wěn)定地傳遞下去,如DNA甲基化、組蛋白修飾、染色質(zhì)重塑和RNA干擾等。表觀遺傳學(xué)是從DNA水平、蛋白質(zhì)水平、染色質(zhì)水平及RNA水平等多個水平調(diào)控基因的表達(dá)[4],而上述幾個水平之間是相互關(guān)聯(lián)的。
DNA甲基化是目前研究最多、最清楚的一種原核和真核生物普遍存在的表觀遺傳學(xué)調(diào)控機(jī)制。DNA甲基化一般與基因的沉默相關(guān),非甲基化則一般與基因的活化相關(guān),而去甲基化往往是與一個沉默基因的重新激活相關(guān)[5]。DNA甲基化是在DNA甲基轉(zhuǎn)移酶(DNA methyltransferase,DNMT)的催化下,將作為甲基供體的S-腺苷甲硫氨酸結(jié)合到胞嘧啶5位碳原子上,生成5-甲基胞嘧啶的過程[6]。研究表明,DNA甲基化是抑制基因活性的一個重要機(jī)制,DNA甲基化是從堿基突變、抑制轉(zhuǎn)錄水平基因表達(dá)及染色體的不穩(wěn)定性等方面影響基因表達(dá),而轉(zhuǎn)錄水平抑制基因表達(dá)的作用目前研究得較多。
DNA甲基化抑制基因轉(zhuǎn)錄的機(jī)制有:①DNA的胞嘧啶發(fā)生甲基化后,DNA的空間構(gòu)象發(fā)生改變,從而影響了轉(zhuǎn)錄因子與DNA的結(jié)合;②甲基化的DNA與 CpG結(jié)合蛋白(methyl-CpG binding proteins,MeCPs)結(jié)合,改變了染色質(zhì)的結(jié)構(gòu),從而抑制了基因的轉(zhuǎn)錄;③序列特異性甲基化連接蛋白與啟動子區(qū)甲基化CpG島結(jié)合,組織轉(zhuǎn)錄因子與啟動子區(qū)靶序列的結(jié)合,從而影響了基因的轉(zhuǎn)錄[7]。
DNMT在甲基化中的作用也不容忽視。目前所知的DNMT有3類(5種),分別是 DNMT1、DNMT2和 DNMT3(DNMT3a、DNMT3b 和 DNMT3L)。DNMT1主要維持甲基化狀態(tài),是非CpG位點從頭甲基化所必需,并參與甲基化狀態(tài)的延伸,即是復(fù)制后維持甲基化的關(guān)鍵酶[8]。目前對于DNMT2的認(rèn)識尚少,DNMT2在組織內(nèi)主要分布于肌肉、發(fā)育中的胚胎內(nèi)臟、卵巢囊腫及增殖中的睪丸細(xì)胞[9],研究認(rèn)為其DNA甲基化酶活性非常弱,且識別位點并非CpG,因此在體外實驗中常常難以觀測到其DNA甲基化酶 活 性[10]。DNMT3 包 括 DNMT3a、DNMT3b 和DNMT3L,主要參與從頭甲基化,是從頭甲基化酶,對CpG位點的側(cè)翼序列有一定的傾向性,研究顯示其3種亞型間具有相互影響及協(xié)同作用[11,12]。
正常的DNA甲基化對于維持機(jī)體的功能是必需的,如基因印跡、X染色體失活、細(xì)胞分化和胚胎發(fā)育等[12],而異常的DNA甲基化則會引發(fā)疾病甚至腫瘤的發(fā)生,異常CpG的重新甲基化常被認(rèn)為是人類腫瘤發(fā)生的一個早期特征[13]。結(jié)直腸癌中,基因不穩(wěn)定性主要分為:微衛(wèi)星不穩(wěn)定、CpG島甲基化表型和癌基因突變[14]。而DNA甲基化多表現(xiàn)為甲基化水平降低(包括整個基因組的廣泛低甲基化、癌基因的低甲基化及未甲基化CpG島的重新甲基化)和某些特定區(qū)域發(fā)生的高甲基化(即區(qū)域性高甲基化)。
2.1 低甲基化 低甲基化通過以下途徑誘發(fā)腫瘤:①低甲基化誘導(dǎo)產(chǎn)生內(nèi)源性反轉(zhuǎn)錄病毒物質(zhì),這些物質(zhì)可插入激活原癌基因;②低甲基化可通過表觀遺傳效應(yīng)激活原癌基因;③低甲基化可導(dǎo)致基因組不穩(wěn)定性。有研究表明,在許多腫瘤中,細(xì)胞整體呈現(xiàn)低甲基化水平,隨著病情的惡化,低甲基化程度則會逐漸加強(qiáng)[13]。
2.2 高甲基化 區(qū)域性高甲基化發(fā)生的特定區(qū)域一般為跨越管家基因和腫瘤抑制基因啟動子的CpG島區(qū),由于其能誘導(dǎo)基因編碼區(qū)突變或使基因失活而利于腫瘤的發(fā)展。目前已經(jīng)鑒定出的在不同腫瘤中易發(fā)生高甲基化的基因包括參與細(xì)胞周期調(diào)控、信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路、凋亡、DNA錯配修復(fù)、血管生成抑制、腫瘤轉(zhuǎn)移及浸潤、耐藥性形成等基因。而這種基因水平的改變與基因剔除和基因突變等不同,可以被DNMT抑制因子逆轉(zhuǎn),從而恢復(fù)正常甲基化狀態(tài)[15]。
2.3 結(jié)直腸癌中甲基化異常的基因 1999年,Toyota等[16]在結(jié)直腸癌中發(fā)現(xiàn)了一組高甲基化聚集的特殊CpG島甲基化表型,是多個基因同時發(fā)生轉(zhuǎn)錄失活,引起基因外不穩(wěn)定的一種通路,在結(jié)直腸癌形成的后期起著重要作用。一系列研究表明,結(jié)直腸癌中的5-甲基胞嘧啶較正常組織水平低,而對于p16(即 MTS,multiple tumor suppressor 1)、錯配修復(fù)基因 1(human mutL homolog 1,hMLH1)和 MINT(Msx2 interacting nuclear target protein)位點甲基化水平的檢測發(fā)現(xiàn),其廣泛低甲基化主要發(fā)生于結(jié)直腸癌早期。廣泛低甲基化可以增加某些基因的表達(dá)水平,如癌基因c-myc、K-ras以及結(jié)直腸癌中S100鈣調(diào)蛋白 A4 基因等[17]。Liu 等[18]報道,在 78% 的結(jié)直腸癌組織中和13%的癌旁組織中檢測出A激酶錨定蛋白 12(A-kinase anchoring protein12,AKAP12)啟動子的甲基化,而近來的一些研究表明,在收集到的結(jié)直腸癌患者和正常人血液中檢測出 AKAP12,各占48%和8%[19]。Okada 等[20]研究認(rèn)為,在結(jié)直腸癌中TWIST1(twist homolog 1)基因超甲基化是較為常見的,而且它的高表達(dá)會進(jìn)一步造成結(jié)直腸癌的惡化。
3.1 結(jié)直腸癌早期診斷 提高結(jié)直腸癌的早期診斷率可以明顯改善臨床整體治療效果,對于患者預(yù)后具有重要意義。很多CpG島甲基化事件已成為腫瘤早期診斷的分子靶標(biāo),而CpG島超甲基化可能會是一個很有前景的早期診斷腫瘤的指標(biāo)。Esteller等[21]報道,在48例平坦型結(jié)直腸癌患者中的39例檢測到RAS相關(guān)區(qū)域家族1A基因(Ras association domain family 1A gene,RASSF1A)的啟動子超甲基化,結(jié)果顯示RASSF1A的啟動子超甲基化是一個在平坦型結(jié)直腸癌發(fā)病早期的頻發(fā)分子事件,并且隨后一系列RAS基因(Ras gene)轉(zhuǎn)導(dǎo)路徑的異常與平坦型結(jié)直腸癌的形態(tài)和侵襲性有關(guān)。Nishio等[22]認(rèn)為,人類Runt相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子3(human runt related transcription factor 3,RUNX3)可作為診斷結(jié)直腸癌的一種新的血清標(biāo)志物。Liu等[23]也發(fā)現(xiàn)鼻咽癌細(xì)胞相關(guān)基因6(nasopharyngeal carcinoma associated gene 6,NGX6)介導(dǎo)的啟動子甲基化是一個潛在的結(jié)直腸癌分子標(biāo)志。Model等[24]運(yùn)用微陣列分析和反轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈反應(yīng)分析等技術(shù),篩選出高度甲基化結(jié)直腸癌序列,其中的TMEFF2基因(transmembrane protein with EGF-like and two follistatin domain gene)、表皮生長因子受體基因和ZDHHC22基因(zinc finger,DHHC domain containing 22)等標(biāo)志物具有高度特異性,并且可用于檢測血液或糞便樣本,可作為結(jié)直腸癌的非侵入性診斷方法[24]。deVos等[25]指出,檢測血漿中的SEPT9基因(septin 9 gene)可用于診斷結(jié)直腸癌,而Huang等[26]在結(jié)直腸癌患者糞便標(biāo)本中檢測出分泌型卷曲相關(guān)蛋白2的超甲基化,認(rèn)為其可作為早期診斷結(jié)直腸癌的一種方法[26]。隨著深入研究,DNA甲基化將會在結(jié)直腸癌早期診斷中發(fā)揮重要作用。
3.2 DNA甲基化的檢測方法 檢測DNA甲基化的主要途徑有:①用于甲基化敏感的限制性內(nèi)切酶來鑒別是否甲基化;②因亞硫酸氫鈉可轉(zhuǎn)換未甲基化的胞嘧啶為尿嘧啶,故可用亞硫酸氫鈉處理DNA,則發(fā)生甲基化DNA的胞嘧啶將不被替代。主要的實驗方法有:甲基化敏感的限制性內(nèi)切酶聯(lián)用Southern印跡雜交(Southern blotting)、限制性內(nèi)切酶消化后進(jìn)行聚合酶鏈反應(yīng)、亞硫酸氫鈉處理DNA后測序、甲基化特異聚合酶鏈反應(yīng)、甲基化敏感單核苷酸引物延長法和亞硫酸氫鈉聯(lián)合限制性內(nèi)切酶分析法等。
3.3 DNA甲基化與結(jié)直腸癌的治療 DNA甲基化是可逆的動力學(xué)過程,因此,抑制DNMT成為治療腫瘤的一種研究思路,使用DNMT抑制劑,可使腫瘤中甲基化的基因被重新激活[27]。Xiong 等[28]報道,DNMT的作用機(jī)制在于通過酪氨酸蛋白激酶/信號轉(zhuǎn)導(dǎo)和轉(zhuǎn)錄活化因子3/信號轉(zhuǎn)導(dǎo)和轉(zhuǎn)錄活化因子5等信號通路誘導(dǎo)結(jié)直腸癌細(xì)胞停滯于細(xì)胞周期的G2期,繼而發(fā)生凋亡,從而抑制了腫瘤細(xì)胞的生長。Deng等[29]用5-脫氧氮胞苷處理結(jié)直腸癌的LoVo細(xì)胞株,發(fā)現(xiàn)其可重新激活RUNX3的表達(dá)而進(jìn)一步導(dǎo)致腫瘤細(xì)胞的凋亡。Hiraki等[30]研究發(fā)現(xiàn),BNIP3基因(BCL2/adenovirus E1B 19 kDa interacting protein 3)的CpG島甲基化表型可以用于評價聯(lián)合運(yùn)用替吉奧膠囊(S-1)和鹽酸伊立替康(CPT-11)治療結(jié)直腸癌患者的療效。
隨著基因組測序的完成,表觀基因組學(xué)將成為一個全球性研究熱點。結(jié)直腸癌的病因及發(fā)病機(jī)制復(fù)雜,而深入研究結(jié)直腸癌DNA甲基化模式可從另一角度反映其基因表達(dá)狀態(tài),解釋腫瘤的形成和發(fā)展機(jī)制,對早期診斷及治療提供新的思路。近年來,在DNA甲基化與結(jié)直腸癌的關(guān)系方面的研究也取得了較多的成果,并隨之出現(xiàn)了很多敏感的檢測甲基化的方法和手段,使得DNA甲基化標(biāo)志物在臨床的應(yīng)用成為可能,而且以表觀遺傳改變?yōu)榘袠?biāo)的治療有望在不久的將來用于臨床,為結(jié)直腸癌的分子治療提供廣闊的前景。
[1]Jemal A,Siegel R,Ward E,et al.Cancer statistics,2007[J].CA Cancer J Clin,2007,57(1):43-66.
[2]Jemal A,Siegel R,Ward E,et al.Cancer statistics,2009[J].CA Cancer J Clin,2009,59(4):225-249.
[3]Jemal A,Siegel R,Xu J,et al.Cancer statistics,2010[J].CA Cancer J Clin,2010,60(5):277-300.
[4]Bird A.Perceptions of epigenetics[J].Nature,2007,447(7143):396-398.
[5]Fuks F.DNA methylation and histone modifications:teaming up to silence genes[J].Curr Opin Genet Dev,2005,15(5):490-495.
[6]Jones PA,Takai D.The rote of DNA methylation in mammalian epigenetics[J].Science,2001,293(5532):1068-1070.
[7]Momparler RL,Bovenzi V.DNA methylation and cancer[J].Cell Physiology,2000,183(2):145-154.
[8]Hsieh CL.The de novo methylation activity of Dnmt3a is distinctly different than that of Dnmt1[J].BMC Biochem,2005(6):6.
[9]Schaefer M,Steringer JP,Lyko F.The Drosophila cytosine-5 methyltransferase Dnmt2 is associated with the nuclear matrix and can access DNA during mitosis[J].PLoS One,2008,3(1):e1414.
[10]Margot JB,Cardoso MC,Leonhardt H.Mammalian DNA methyltransferases show different subnuclear distributions[J].J Cell Biochem,2001,83(3):373-379.
[11]Hu YG,Hirasawa R,Hu JL,et al.Regulation of DNA methylation activity through Dnmt3L promoter methylation by Dnmt3 enzymes in embryonic development[J].Hum Mol Genet,2008,17(17):2654-2664.
[12]Robertson KD.DNA methylation and human diseases[J].Nat Rev Genet,2005,6(8):597-610.
[13]Wilson AS,Power BE,Molloy PL.DNA hypomethylation and human diseases[J].Biochim BiophysActa,2007,1775(1):138-162.
[14]Sanchez JA,Krumroy L,Plummer S,et al.Genetic and epigenetic classifications define clinical phenotypes and determine patient outcomes in colorectal cancer[J].Br J Surg,2009,96(10):1196-1204.
[15]Egger G,Liang G,Aparicio A,et al.Epigenetics in human disease and prospectsforepigenetic therapy[J].Nature,2004,429(6990):457-463.
[16]Toyota M,Ahuja N,Ohe-Toyota M,et al.CpG island methylator phenotype in colorectal cancer[J].Proc Natl Acad Sci U S A.,1999,96(15):8681-8686.
[17]Sato N,Maitra A,F(xiàn)ukushima N,et al.Frequent hypomethylation of multiple genes overexpressed in pancreatic ductal adenocarcinoma[J].Cancer Res,2003,63(14):4158-4166.
[18]Liu W,Guan M,Su B,et al.Quantitative assessment of AKAP12 promoter methylation in colorectal cancer using methylation-sensitive high resolution melting:correlation with Duke's stage[J].Cancer Biol Ther,2010,9(11):862-871.
[19]Liu W,Guan M,Su B,et al.Rapid determination of AKAP12 promoter methylation levels in peripheral blood using methylation-sensitive high resolution melting(MS-HRM)analysis:application in colorectal cancer[J].ClinChim Acta,2010,411(13/14):940-946.
[20]Okada T,Suehiro Y,Ueno K,et al.TWIST1 hypermethylation is observed frequently in colorectal tumors and its overexpression is associated with unfavorable outcomes in patients with colorectal cancer[J].Genes Chromosomes Cancer,2010,49(5):452-462.
[21]Esteller M,Herman JG.Generating mutations but providing chemosensitivity:the role of O6-methylguanine DNA methyltransferase in human cancer[J].Oncogene,2004,23(1):1-8.
[22]Nishio M,Sakakura C,Nagata T,et al.RUNX3 promoter methylation in colorectal cancer:its relationship with microsatellite instability and its suitability as a novel serum tumor marker[J].Anticancer Res,2010,30(7):2673-2682.
[23]Liu M,Peng Y,Wang X,et al.NGX6 gene mediated by promoter methylation as a potential molecular marker in colorectal cancer[J].BMC Cancer,2010,10:160.
[24]Model F,Osborn N,Ahlquist D,et al.Identification and validation of colorectal neoplasia-specific methylation markers for accurate classification of disease[J].Mol Cancer Res,2007,5(2):153-163.
[25]deVos T,Tetzner R,Model F,et al.Ciculating methylated SEPT9 DNA in plasma is a biomarker for colorectal cancer[J].Clin Chem,2009,55(7):1337-1346.
[26]Huang Z,Li L,Wang J.Hypermethylation of SFRP2 as a potential marker for stool-based detection of colorectal cancer and precancerous lesion[J].Dig Dis Sci,2007,52(9):2287-2291.
[27]Wong JJ,Hawkins NJ,Ward RL.Colorectal cancer:a model for epigenetic tumorigenesis[J].Gut,2007,56(1):140-148.
[28]Xiong H,Chen ZF,Liang QC,et al.Inhibition of DNA methyltransferase induces G2cell cycle arrest and apoptosis in human colorectal cancer via inhibition of JAK2/STAT3/STAT5 signalling[J].J Cell Mol Med,2009,13(9B):3668-3679.
[29]Deng T,Zhang Y.5-Aza-2'-deoxycytidine reactivates expression of RUNX3 by deletion of DNA methyltransferases leading to caspase independent apoptosis in colorectal cancer LoVo cells[J].Biomed Pharmacother,2009,63(7):492-500.
[30]Hiraki M,Kitajima Y,Nakafusa Y,et al.CpG island methylation of BNIP3 predicts resistance against S-1/CPT-11 combined therapy in colorectal cancer patients[J].Oncol Rep,2010,23(1):191-197.